0 次观看 • 3:58 分钟 • June 17th, 2025
将一只已麻醉的转基因小鼠固定在立体定位仪框架中,并暴露其颅骨。
该小鼠在胶质细胞中表达 Cre 重组酶。
将固定毛细管的立体定位臂置于颅骨上方,并对准前囟位置。
调整立体定位轴以实现精确定位。
在目标位置钻孔,确保硬脑膜保持完整。清除骨碎片。
用缓冲液冲洗毛细管。吸入一个气泡,然后加入携带失活神经元重编程基因和荧光蛋白基因的腺相关病毒。
将毛细管降至目标深度,并将病毒溶液注射到富含胶质细胞的区域。
小心回撤导管,以防止反流。
缝合切口并让其恢复。
内化的病毒将两侧带有 loxP 位点的失活基因递送至胶质细胞核内。Cre 重组酶使这些基因发生翻转,从而激活神经元重编程基因并驱动细胞向神经元转化。重编程后的中间神经元在神经元特异性启动子的驱动下表达荧光蛋白。
为了注射重编程因子,将麻醉后的小鼠置于立体定位仪框架中,在手术开始时给予适当的镇痛处理,然后将注射针玻璃毛细管的尖端移至前囟上方。确保毛细管尖端在前后(A-P)和内侧-外侧(M-L)两个平面上均完全垂直。将数字坐标计数器上的 M-L 和 A-P 值均重置为 0.0。
为确保动物头部处于完全水平的位置,当A-P臂位于+2.0和-2.0时,以及当M-L臂位于+2.0和-2.0时,使用数字坐标计数器测量D-V坐标值,并相应调整门齿杆和耳杆的高度。随后,轻微抬高注射器,并在注射坐标处使用牙科钻头钻孔。
从目标位置开始以环形且轻柔的方式进行钻孔。然后,在开放的切口上放置一块棉纱布,并用生理盐水冲洗注射器。冲洗后,先吸入一个气泡,再吸入1 µL含有病毒载体的溶液。确保病毒溶液在气泡下方清晰可见。
接下来,缓慢降低注射器至目标深度,并确保进针路径避开骨碎片。随后,以每分钟0.4微升的速度注入1微升病毒溶液。注射完成后,留针2分钟以使溶液充分扩散,然后撤出注射器。
扩散后,缓慢回撤注射器,直至毛细管尖端完全退出脑组织。然后,仔细缝合切口,并将动物从立体定位仪上取下。将动物置于术后观察区进行监测,直至其恢复意识。
动物在病毒注射后最长饲养12周,以使原位胶质细胞重编程为成熟神经元。
本文介绍了一种在转基因小鼠模型中利用腺相关病毒将胶质细胞重编程为神经元的方法。该操作流程包括精确的立体定位注射,以递送可激活神经元重编程基因的病毒载体。
该方法能够将胶质细胞直接原位转化为功能性神经元,为神经退行性疾病模型中的靶点验证提供了一种机制性研究手段。通过在特定细胞环境中实现重编程因子的精确递送与激活,该技术有助于降低以细胞命运调控为基础的治疗假说所面临的风险。该技术为临床前发现流程中靶点结合效应及表型结果的评估提供了可重复的实验平台。
该方法通过在完整的神经系统中实现以假设为驱动的细胞身份调控,适用于从早期发现到临床前研究的连续过程,支持基于靶点验证和表型转化的决策判断。
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最后更新:29 八月 2026