2011年9月28日
本文介绍了一种从鼠类盲肠中回收的Pseudomonas aeruginosa中可靠提取RNA的方法。所获得的RNA在数量和质量上均足以用于后续的qPCR、转录谱分析和RNA测序实验。该技术可适用于其他肠道微生物的RNA提取。
本实验的总体目标是从鼠源性 ECM 中回收的产气克雷伯菌中分离总 RNA。首先收集管腔内容物,然后分离细菌 RNA。
然后进行D'S处理和RNA纯化。最后,通过生物分析仪和分光光度分析对RNA进行定量,并检测其纯度。最终可获得足够质量和数量的细菌RNA,用于后续实验分析,如定量PCR(QPCR)、转录谱分析或RNA测序实验。
与现有的三醇提取等方法相比,该技术的主要优势在于其结合了多个裂解步骤,并采用极为严格的酸性条件和氯仿抽提步骤,以确保获得高质量的RNA。对该方法进行可视化演示至关重要,因为裂解和抽提步骤难以掌握,而书面方案往往省略了对成功至关重要的细微操作细节。本实验操作将由我实验室的博士后研究员Eduardo Lopez Medina和实验室主管Megan Neubauer进行演示。在开始收获样品前,IMSA会在液氮浴中清洗不锈钢研钵。
然后,在处死一只定植了产气假单胞菌的6至8周龄C3 HHEN小鼠后,将动物仰卧置于泡沫板上,并用95%乙醇冲洗腹部。接着,从胸骨至会阴部沿中线纵向切开皮肤。然后拉开皮肤和腹膜,暴露腹腔。
现在使用镊子切除整个盲肠。将盲肠悬置于不锈钢研钵上方,然后用解剖剪剪断盲肠的两端。用P1000移液器吸头吸取1 mL的Sequel Flush 8缓冲液,随后将吸头插入盲肠的近端。
将测序冲洗液八号缓冲液和测序管腔内容物冲入不锈钢研钵中。现在研磨测序样品。用无菌研杵冲洗八号内容物。
然后将乙醇倒入盛有干冰的容器中,并将一个50毫升聚丙烯圆锥形管放入干冰-乙醇浴中。将研磨后的冷冻结肠内容物转移至该圆锥形管中,并将管子置于-80摄氏度保存。接下来的这一系列步骤是整个实验过程中最难的部分。
鉴于从MI盲肠中提取的材料性质复杂,必须进行多次冷丝状提取,才能获得可接受的均一性和完整性,通常需要进行三到五次提取,直至水相与有机相之间的宽界面完全消失。将一份体积的酸性酚-氯仿转移至一个50毫升的橡树岭离心管中。用封口膜密封管盖,然后将离心管置于65°C水浴中温育。
取一半体积的裂解缓冲液加入50毫升聚丙烯圆锥管中,然后将缓冲液煮沸五分钟。从-80摄氏度冰箱中取出结肠腔内容物后,用手快速搓拭管壁使其短暂升温,随后将煮沸的裂解缓冲液加入该管中。振荡混合物,以充分混匀裂解缓冲液与结肠腔内容物溶液。
将裂解缓冲液和SQL管腔内容物煮沸五分钟。期间定期涡旋混合,打开含有苯酚-氯仿溶液的橡树岭离心管,将SQL内容物的裂解样品转移至该管中。然后用封口膜重新密封管盖,并将离心管放回65°C水浴中孵育10分钟,每隔两分钟轻轻摇动一次。
在4°C条件下,以2,500 × g离心15分钟洗涤样品。随后小心地将水相转移至一个新的50毫升Oak Ridge离心管中,避免接触任何白色界面。然后向新管中加入等体积的酸性酚-氯仿。
用封口膜密封管盖,并通过高速涡旋振荡充分混匀管内物质。继续离心样品,并将水相转移至离心管中。若上层水相体积过小,可将其转移至直径较小的离心管中。
继续此操作,直至水相与有机相之间无可见的白色界面。当白色界面消失后,小心地将水相转移至新的离心管中。然后向管中加入等体积的氯仿-异戊醇,盖紧管盖,并通过涡旋充分混匀内容物。
接下来,再次离心样品后,将水相转移至一个15毫升聚丙烯圆锥形离心管中,并加入等体积的异丙醇。然后在-20摄氏度下孵育溶液至少2小时或过夜。孵育完成后,将离心管以45分钟离心。
在确认管底出现凝胶状沉淀后,移除上清液。随后,加入1毫升冰浴预冷的70%乙醇,通过涡旋振荡管体清洗沉淀,然后在4°C条件下以10,000 × g离心5分钟。最后,移除上清液并将管子倒置,使沉淀在室温下静置干燥10分钟。
然后将RNA沉淀重悬于200微升无RNA酶的水中。首先,向微量离心管中加入20微升10× Turbo DNase缓冲液和2微升Turbo DNase,轻轻混匀溶液。随后将管子在37摄氏度孵育20分钟,然后向管中加入20微升重悬的DNA灭活试剂,充分混匀。
室温下轻轻混匀,继续孵育5分钟。接着,在微型离心机中以10,000 × g离心1.5分钟,使沉淀聚集,然后将上清液转移至新的微量离心管中。向沉淀中加入等体积的冷酸性酚-氯仿溶液,再通过涡旋振荡1分钟,充分混匀。
在12,500 ×g条件下离心溶液2分钟后,将水相转移至新管中,并加入等体积的氯仿-异戊醇。然后在相同条件下再次离心溶液,之后通过涡旋振荡混合溶液。将水相转移至新的微量离心管中。
然后加入0.1倍体积的3摩尔醋酸钠和2.5倍体积的冰冻100%乙醇。涡旋混匀管内溶液。将样品在-80摄氏度孵育30分钟。
然后在4 °C条件下,以12,000 × g离心30分钟,弃去上清液。最后用1 mL冰冷的70%乙醇洗涤沉淀。弃去上清液,并将沉淀在空气中干燥10分钟。
然后将沉淀重悬于100微升无RNA酶的水中。Agilent Bioanalyzer是一种基于微流控技术的平台,用于DNA、RNA、蛋白质和细胞的片段大小分析、定量及质量控制,其利用一种称为RNA完整性指数(RNA integrity number,RIN)的指标来评估RNA质量。采用本方案提取的RNA,其260/280比值范围为1.7至2.0,RIN值大于或等于7.0。
左侧显示的是细菌RNA的安捷伦生物分析仪电泳图谱示例,右侧显示的是从小鼠小肠液内容物中回收的假单胞菌(Pseudomonas arosa)的凝胶样图像。通过本实验流程后,可进一步采用其他方法,如定量PCR或RNA测序,以回答更深入的问题,例如精细的基因表达谱分析。
本文介绍了一种从鼠类盲肠中回收的铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)中分离RNA的可靠方法。该技术所获得的RNA质量足以用于qPCR、转录谱分析和RNA测序。
从定植于胃肠道的病原体中分离高质量RNA,可实现对临床前模型中毒力靶点的机制性风险评估。该方法通过将细菌基因表达与宿主免疫状态变化相联系,支持靶点的验证,并在先导化合物确定之前为优先筛选抗感染候选物提供预测信心。
该方法适用于从早期发现阶段的假设验证到临床前研究中的机制确证这一连续过程,能够实现基于RNA的检测以确认靶点。