2012年10月31日
多个候选生物标志物的高吞吐量的验证可以通过顺序ELISA进行,以尽量减少冷冻/解冻循环和使用珍贵的血浆样品。在这里,我们演示了如何依次进行验证六种不同的血浆生物标志物的酶联免疫吸附 1-3
以下实验的总体目标是使用高通量顺序 Eliza,以便有效分析蛋白质组学发现的大量新型生物标志物。这是通过首先将样品添加到源板中来实现的,源板用于为每个生物标志物产生稀释并在测试之间储存回收的血浆。接下来,对每种蛋白质运行 Eliza's,以确定它们在患者样本中的浓度。
最终,可以评估急性移植物抗宿主病临床表现开始时这些生物标志物的蛋白质水平升高。与现有方法相比,该技术的主要优点是顺序分析仪可以分析多种新型蛋白质,而这些蛋白质在多重分析平台上并不总是可用的。该技术的意义延伸到急性移植物抗宿主病的诊断。
由于通过这种方法验证的生物标志物现在正在研究用于临床护理。尽管这种方法可以深入了解创伤后诗意干细胞移植的并发症。它还可用于其他疾病的生物标志物发现和验证,例如肺移植、并发症、肺癌,或者可能用于诊断性血液测试的任何疾病。
该方法的目视演示至关重要,因为必须始终如一地完成多个步骤,以确保可重复性和低批次变异性。在实验前一天,将血浆等分试样在 15, 300 RCF 和 4 摄氏度下离心 10 分钟,以将底部的凝块和顶部的脂质与血浆分离。然后根据预定义的映射通过手动移液将每个样品中的 150 微升未稀释血浆接种到 96 孔 V 底板上。用 Paraform 包裹板,并将其置于 4 摄氏度的人体腔室中长达 72 小时。
接下来,根据制造商的规格将 IL 两种受体 α 和人生长因子或 HGF 捕获抗体重组和稀释后,将每种抗体的 50 微升等分试样放入相应的 96 孔高结合半孔板的每个孔中。然后用板密封机密封这些板,并在 4 摄氏度下孵育过夜。现在根据制造商的方案用制造商的包被缓冲液稀释 reg three alpha,并将 25 微升溶液接种到 3 84 孔无 maxor 板的每个孔中。
然后在实验的第一天将此板密封在 4 摄氏度下。首先洗涤 IL 双受体 α 测试板并在 TBS 中用 blotto 封闭它。重新构建标准品后,根据制造商的方案设置八点标准曲线。
下一个板,50 微升未稀释的血浆和 50 微升每个标准品,一式两份从源板到 ELIZA 测试板。然后在室温下在设置为 300 RPM 的板旋转器上孵育密封板。两小时后,从 IL 双受体 α ELIZA 测试板中回收血浆,并将其放回未稀释的血浆源板中。
然后,在根据制造商的方案完成 EIA 后,使用设置为 450 至 570 纳米的读板器读取每个孔的光密度,对于丰富的三个 alpha Eliza,首先将 10 微升未稀释的血浆转移到单独的视图底部源板中,然后向每个孔中加入 90 微升制造商提供的稀释缓冲液,以创建 1 至 10 稀释的源板。完成 Reg 3 alpha Eliza 后,根据制造商的方案,将终止溶液添加到 384 孔板中,并使用设置为 450 至 620 纳米的读板器读取每个孔的光密度。在重构和稀释 elephant 和 tn FFR one 捕获抗体后,根据制造商规格,用 50 μL 捕获抗体编码相应的 96 孔高结合半孔板的每个孔。
然后将密封的测试板在室温下孵育过夜(大象板)和 4 摄氏度(TN FFR 单板)。完成 IL 双受体 α 后,Eliza 将 60 μL 未稀释的血浆转移到新的源板中。然后以 60 微升 1% BSA 的 PBS 溶液向每个孔中加入,制成 1 至 2 稀释的血浆源板。
接下来,在 TBS 中用 BLOTTO 洗涤并封闭 HGF 测试板,然后设置八点标准曲线稀释。洗涤板后,按照封闭步骤板 50 微升,在 EISA 测试板上重复一到两个稀释血浆和每个标准品的等分试样。然后将密封板在室温下在设置为 300 RPM 的板旋转器上孵育过夜。
第二天早上,从 HGF Eliza 测试板中回收 1 到 2 稀释的血浆,并将其放回 1 到 2 稀释的血浆源板中。完成 EIA 后,根据制造商的方案,在实验的第二天使用设置为 450 至 570 纳米的读板器读取每个孔的光密度。首先将 10 微升未稀释的血浆转移到新的源板中,然后用 190 微升 1% BSA 的 PBS 溶液制备 200 微升 1 至 20 稀释血浆。
然后在完成大象后,Eliza 根据制造商的协议,使用设置为 450 至 570 纳米的读板器读取光密度。对于 TN FFR 1,Eliza 首先向 1 至 20 源板中加入 25 微升 1% BSA 和 PBS,每孔产生 125 微升 1 至 25 稀释血浆。然后,在根据制造商的方案完成 TN FFR 一个 EIA 后,使用设置为 450 至 570 纳米的读板器读取每个孔的光密度,以进行 I-L-H-E-I-A 第一次转移,将 60 微升 1 至 2 稀释的血浆加入新的源板中,然后向每个孔中加入 180 微升 IL 8 稀释剂,制成 1 至 6 稀释的血浆源板。
然后,在按照制造商的方案完成 ILH Eliza 后,使用设置为 450 至 570 纳米的读板器读取每个孔的光密度。最后,完成所有 Eliza 后,将未使用的 talk plasma 替换为 thought Eloqua 并冻结以备将来使用。在该图中,七个不同的 ELIZA 板的标准曲线的光密度测量 reg 3 α 浓度,对应于 1084 名接受初始 reg 3 alpha 胃肠道移植物生物标志物报告测试的患者,板之间一致的光密度确保了实验之间的蛋白质浓度测量一致。
通过将样品光密度与标准曲线光密度进行比较来计算血浆样品中蛋白质的浓度。机器人清洁处理平台可用于进一步提高可重复性,同时减少运行 Eliza 和 Creative Form 孔板使用的血浆量。在计划此程序时,重要的是先运行未稀释的血浆 EIS,以便开发后可以回收并在以后的实验中使用。
这项技术为蛋白质组学领域的研究人员铺平了道路,通过普遍使用序贯 Eliza s,探索任何感兴趣的疾病中的候选生物标志物。观看本视频后,您应该对如何使用序列 E 验证多个生物标志物有很好的了解,同时使用少量血浆并最大限度地减少自由循环。
本研究展示了一种高通量连续性ELISA方法,用于验证与移植物抗宿主病(GVHD)相关的多个血浆生物标志物。通过最小化冻融循环,该技术可以高效分析珍贵的血浆样本。
Validating multiple plasma biomarkers from limited, irreplaceable patient samples is a critical bottleneck in translational biomarker discovery for acute graft-versus-host disease (GVHD). A high throughput sequential ELISA approach enables efficient, reproducible quantification of candidate biomarkers while conserving precious plasma volume and minimizing pre-analytical variability. This supports early-phase target validation and mechanistic de-risking by providing reliable, multiplex-compatible data from clinically relevant sample types.
The sequential ELISA method fits within the biomarker validation continuum, moving from discovery proteomics through targeted verification to preclinical and clinical correlation, particularly when sample volume and stability are limiting factors.