2013年8月26日
我们描述了用于实现BMP-2的有效固定化在表面上的方法。我们的方法是基于一个自组装单层实现共价通过其游离胺残基的BMP-2的结合的形成。这个方法是研究信令在细胞膜的有用工具。
该程序的总体目标是将 BMP 两个分子共价结合到表面而不会失去其生物活性。这是通过首先通过物理气相沉积在衬底上形成金层来实现的。第二步是创建自组装的 mu NHSA 双功能 NHS 硫醇接头单层。
接下来,RH BMP 2 与接头共价结合。最后一步是通过超声处理去除未结合的 BMP 2。最终,使用抗体结合测定法显示 BMP 2 成功结合到表面,并通过分析 SMA 1 5 8 磷酸化来确定表面结合的 BMP 2 在细胞中的生物活性。
这种方法可以帮助回答生长因子生物学领域的关键问题,例如生长因子与细胞表面受体的初始结合是否足以触发信号反应。演示该程序的是我实验室的两名成员 Teresa Paul 和 Elizabeth Schwab。要开始此过程,请用精密湿巾清洁玻璃盖玻片,并在乙酸乙酯和甲醇的一对一混合物中对其进行超声处理 5 分钟。
超声处理后,用甲醇冲洗底物,并在氮气流下干燥。将干净的基板放入溅射镀膜装置中,然后抽空腔室。通过溅射 60 秒从铬靶材上去除最上面的氧化铬层。
然后在基材上涂上 10 纳米的铬层,然后涂上 40 纳米的金层。完成后,从腔室中取出金基板并将其放在一边。将金底物转移到一个双颈圆底烧瓶中,并在室温下在 DMF 中的一毫摩尔 M-U-N-H-S 中在氮气气氛下孵育 4 小时。
孵育后,在 DMF 中对底物进行超声处理 2 分钟。用 DMF 和甲醇冲洗,并在氮气流下干燥。用 PBS 中的一摩尔氯化钠稀释 RHB MP 双储备液,得到 3.5 μg/mL 的最终浓度。
使用前立即用无菌 10 毫摩尔氢氧化钾将此工作溶液调节至 pH 8.5。将 A-P-D-M-S 环放在样品顶部。将底物转移到 6 孔板中,以确保只有底物表面暴露在孵育溶液中。
然后将功能化的 M-U-N-H-S 底物与 RHB MP two 工作溶液在 4 摄氏度下孵育过夜。去除孵育上清液后,在 PBS 中加入 1 摩尔氯化钠,并对底物进行超声处理 2 分钟。完成后,用无菌的 1 摩尔氯化钠 PBS 溶液洗涤底物 3 次,以阻止抗体的非特异性吸收。
将底物在 PBS 中的 5% BSA 中在室温下孵育 1 小时。完成后,在室温下将底物与抗 BMP 二抗体溶液孵育 1 小时,用 PBS 洗涤底物两次,并超声处理 30 秒。接下来,在室温下将底物在 HRP 偶联的二抗溶液中孵育 30 分钟,然后用 PBS 洗涤两次。
使用 amply flu red 测定法测量 570 纳米处的 HRP 酶活性,读板器种子 10 次到第五口 C,每孔 2 个 C 12 成肌细胞,在生长培养基中的 6 个孔板中,并在 37 摄氏度和 5% CO2 下孵育 24 小时。从培养箱中取出板后,从孔中吸出培养基,在无血清 DMEM 中使细胞饥饿 3 至 5 小时,然后接种到功能化的 BMP 两个底物表面,以研究短期信号诱导。在 37 摄氏度和 5%CO2 下孵育后,用 200 微升新鲜的无血清 DMEM 替换培养基,并使用细尖镊子将固定的 BMP 两个底物放在细胞上方。
轻轻去除底物并用移液管吸出培养基。然后用 PBS 洗涤细胞两次,并使用凝胶电泳和蛋白质印迹进行细胞反应分析,以分析长期生物活性。如前所述将细胞接种到表面上,并在 37 摄氏度和 5% CO2 的 2% FBS 中培养 6 天。
孵化后。通过荧光显微镜对细胞进行成像以验证 RH BMP,两个结合表面呈现固定的 RH BMP,两个与 BMP、两种特异性抗体和一种与 HRP 偶联的二抗一起孵育。在细胞刺激前后检测到表面固定的 RH BMP 2 或 I BMP 2。
此处显示的是 RH BMP 2 与表面的成功结合,这是抗 BMP 2 IgG 识别的确认。使用 amli 流感红胆测定法对表面固定的 RH BMP two 进行定量,数据显示,在细胞刺激后,蛋白质仍然在表面检测到,评估细胞对呈现固定化 RHB MP two 的表面的反应,并与未处理的金底物的效果进行比较。在这里,C 两个 C 12 细胞被从顶部接近的两个功能化表面刺激 C 两个 C 12 细胞 30 分钟。
在该模型中,BMP 2 抑制细胞分化为多核肌管并诱导成骨细胞表型。SMAD 1 5 8 的激活是 BMP 两个信号通路的下游报告基因,通过蛋白质印迹分析,如下所示。I BMP 2 刺激 30 分钟后观察到 SM 磷酸化,而在暴露于未经处理的金样品的细胞中未发生 SMAD 1 58 磷酸化。
该结果表明,固定化过程不会改变 BMP two 的短期活性,并触发 smad 信号传导的早期步骤,以确定 I BM P two 是否影响长期成骨分化。通过 chole metric 测定法检测碱性磷酸酶的表达水平。在纯金和 IBP 两个表面上孵育细胞 6 天后,测量 C 两个 C 12 细胞的碱性磷酸酶活性。
与对照相比,在 I BM P 两个表面上培养的细胞裂解物中的碱性磷酸酶活性显示出显着更高的吸收。这一结果揭示了 IBMP 2 诱导 C 2 C 12 细胞中碱性磷酸酶的表达,以研究 IBP 2 的作用。在 Myogenesis C 中,将两个 C 12 细胞直接接种在金或功能化表面上,并在低血清条件下培养。
6 天后,如图所示进行肌球蛋白重链染色。与金底物上的细胞相比,C 两个 C 12 细胞在 I BM P 2 存在下未能形成肌球蛋白重链阳性肌管。按照此程序,可以执行其他方法,例如将 BMP 2 固定在金纳米颗粒上来回答其他问题。
例如,局部需要多少固定的 BMP 2 才能有效触发信号反应。
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本文描述了一种通过共价结合有效固定表面上BMP-2的方法。该技术利用自组装单层以确保过程中BMP-2的生物活性得以保留。
Covalent immobilization of BMP-2 on surfaces enables controlled presentation of growth factors for mechanistic studies of osteogenic signaling pathways. This approach supports target validation by reducing experimental variability from soluble factor diffusion and degradation, thereby improving predictive confidence in early discovery assays. The method facilitates reproducible quantification of BMP-2-dependent cellular responses, which is critical for de-risking therapeutic hypotheses in bone regeneration programs.
The method integrates into early discovery workflows by providing a reusable surface preparation step that precedes cellular assay execution and signal readout.