November 21st, 2013
本文描述了通过自组装的自发过程中形成高度有序的基于肽的结构。该方法利用市售的肽和普通的实验室设备。这一技术可以应用到大量的各种肽,并可能导致新的基于肽的装配体的发现。
该程序的总体目标是以生物分子项链的形式生成基于肽的组装体。这是通过首先制备储备液来实现的,方法是将二苯基丙氨酸及其 Bach 保护类似物分别溶解在适量的 HFP 中,直至最终浓度为 100 毫克/毫升。第二步是将 10 微升二苯丙氨酸肽溶液与 6 微升 Bach 保护二苯丙氨酸肽溶液混合,以 5:3 的比例混合肽储备液。
接下来,将混合肽储备液添加到新鲜制备的 50% 乙醇中,得到二苯丙氨酸的最终浓度分别为每毫升 5 毫克和 Bach 保护的二苯丙氨酸每毫升 3 毫克。实际上,最终使用扫描电子显微镜来显示由两种肽共组装的生物分子项链。使用如此处演示的自组装过程的主要优点是,通过自发进展,可以生成复杂的结构。
在体外,这里代表肽的自组装,具体来说,证明这个过程的二肽的共组装将是 nuran,一个研究生以前的实验室。为了开始将二苯丙氨酸自组装成管状结构的程序,通过将二苯丙氨酸肽溶解在 HFP 中来制备 100 毫克/毫升的肽储备溶液。为确保溶液的均匀性,请将其与涡旋混合器混合几秒钟,然后将其放在工作台上几分钟,直到肽完全溶解且溶液澄清。
在三重蒸馏水中将肽储备液稀释至终浓度为 2 毫克/毫升。将溶液在室温下保存 24 小时。对于共组装程序,将 2 毫克二苯基丙氨酸肽和 1 毫克 Bach 保护的二苯基丙氨酸肽分别溶解在 HFP 中,浓度为 100 毫克/毫升。
然后用涡旋混合器混合溶液几秒钟,并将其放在工作台上几分钟,直到肽完全溶解并且溶液澄清。将 10 微升二苯基丙氨酸肽溶液与 6 微升 Bach 保护二苯基丙氨酸肽溶液混合,以 5 比 3 的比例混合肽储备液。然后使用涡旋混合器混合溶液。
然后,将 8 微升混合肽储备液加入 92 微升新鲜制备的 50% 乙醇中,得到二苯丙氨酸的最终浓度为每毫升 5 毫克,每毫升的最终浓度为 3 毫克。对于 Bach 保护的二苯丙氨酸。使用移液管轻轻混合溶液。
在室温下孵育 24 小时后,将 10 微升肽溶液滴在玻璃盖玻片上,并使其在室温下干燥。使用溅射镀锌剂在玻璃盖玻片上涂上一层薄薄的金,持续 90 秒。完成后,使用在 10 到 20 KB 下运行的 SEM 对组件进行成像。
对于 TEM 分析,将 10 微升肽溶液滴在 200 目铜网格上,该铜网格覆盖有碳,并由聚合物膜支撑物稳定。一分钟后,使用滤纸去除多余的液体。接下来,将 2% 小便池醋酸盐溶液转移到注射器中,并使用零点 22 微米过滤装置过滤。
为了留在样品中,将 10 微升小便池醋酸盐溶液滴在网格上。30 秒后,使用滤纸去除多余的液体,通过以 120 KB 电压运行的 TEM 对网格上的样品进行成像。对于 FTIR 分析,将 30 μL 肽溶液滴到氟化钙窗口上。
让溶液在室温下干燥,以抑制 FTIR 光谱中的水信号。将一滴氧化氘滴在干燥的肽样品上。在真空下干燥样品后,重复前面的步骤两次,以确保最大的氢到氘交换。
最后,使用氘代硫酸三甘氨酸检测器记录 FTIR 光谱。使用仪器随附的软件确定透射率最小值,以证明通过肽的自组装形成有序结构。制备了两种简单芳香族肽的共组装,并使用 SEM 和 TEM 分析进行了表征。
混合肽形成了直径为几微米的球形组装结构,由于形态高度相似,由直径为几百纳米的细长结构连接,以敲打其琴弦。这些结构被称为分子项链。对这些结构的 FM 分析清楚地证明了它们的三维排列。
此外,对各种样品的不同区域的 SEM 分析表明,这个过程的发生产量很高。FTIR 分析提供有关肽组装体二级结构的信息。酰胺的吸收光谱。
由 Bach 保护的二苯丙氨酸肽在乙醇中形成的球形组装体的一个带在 1, 657 平方厘米处显示单个酰胺峰,表明 α 螺旋确认。乙醇中二苯基丙氨酸肽形成的管状结构在 1, 613 平方厘米和 1, 682 平方厘米处显示出两个独特的峰,这与 β 折叠二级结构相关。由两种肽的共组装形成的生物分子项链的 FTIR 谱图,与每个单独肽的峰分配相延。
1, 653 倒数厘米处的第一个峰对应于 α 螺旋结构,1, 684 倒数厘米处的第二个峰对应于 β 转角确认。各种光谱之间的差异表明生物分子项链的独特结构。看完这个视频后,您应该对如何通过染料肽生成基于肽的组装有一个很好的了解。
该方法可以很容易地应用于其他生物分子,以形成复杂的结构。不要忘记,带着有机溶剂行走可能非常危险。手套。执行此程序时应始终佩戴实验室外套和安全眼镜。
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本研究聚焦于使用市售肽质的基于肽的结构自组装,特别是生物分子项链。该方法简单直接,可以引领发现新的肽组装。
Peptide self-assembly enables the formation of complex biomolecular structures under mild conditions, offering a scalable and accessible route to biomaterials for drug delivery and nanomedicine. This method supports early-stage target validation by providing reproducible, quantifiable assemblies that can be characterized via microscopy and spectroscopy. The approach reduces mechanistic ambiguity in peptide-based system design, accelerating translational continuity from discovery to preclinical evaluation.
The method fits within early discovery to lead optimization, where peptide assembly behavior informs structure-function relationships and material properties.