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DOI: 10.3791/52854-v
Savannah E. Sanchez1, Daniel A. Cuevas2, Jason E. Rostron1, Tiffany Y. Liang3, Cullen G. Pivaroff1, Matthew R. Haynes1, Jim Nulton4, Ben Felts4, Barbara A. Bailey4, Peter Salamon4, Robert A. Edwards1,5,6, Alex B. Burgin7, Anca M. Segall1, Forest Rohwer1
1Department of Biology,San Diego State University, 2Computational Science Research Center,San Diego State University, 3Bioinformatics and Medical Informatics Research Center,San Diego State University, 4Department of Mathematics and Statistics,San Diego State University, 5Department of Computer Science,San Diego State University, 6Mathematics and Computer Science Division,Argonne National Laboratory, 7SPARC Committee,Broad Institute
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
在这里,我们提出了推定噬菌体基因功能表征的表型方法。技术包括一种能够监测宿主合成代谢代谢的已开发检测方法、多表型检测板 (MAP),以及能够测量对分解代谢影响的既定代谢组学方法。
以下实验的总体目标是筛选和表征功能未知的噬菌体基因。首先,推定的噬菌体。称为 ORF 的病毒开放阅读框在大肠杆菌中表达。
噬菌体的克隆。将表达 Orff 的大肠杆菌接种到多表型测定板或图谱中,其中包含生长、培养基和各种底物。然后通过光谱法监测细菌随时间的生长,作为第二种分析方法,表达大肠杆菌的噬菌体基因在连续培养或连续批量培养中生长。
然后收集所得生长代谢物并送去通过气相色谱、飞行时间质谱法进行代谢组学分析。所得数据提供了与单个假定噬菌体开放阅读框的表达相关的表型谱。该方法最初是为了阐明未知小瓶蛋白的功能而开发的。
它还可以应用于研究基因型和表型之间联系的研究,以及检查细菌噬菌体和宿主之间跨生物群落的相互作用。通过用大肠杆菌克隆识别号和映射示意图类型标记无菌 96 孔微量滴定板来开始此过程,该示意图类型表示在测定中正在测试的底物。无菌地将无菌水转移到储液器中。
然后使用多通道移液器将 60 μL 水转移到微量滴定板的每个孔中。接下来,在无菌条件下将 3 个 X 基础培养基转移到储液器中。然后使用多通道移液器将 50 μL 转移到微量滴定板的每个孔中。
使用相同的技术,移液 50 微升图示中使用的每种基础培养基。接下来,将 30 μL 的每种底物转移到适当的物质中。然后,使用多通道移液器将 10 μL 细菌细胞转移到每个孔中。
在将移液器重新引入培养液原液之前,请务必更换吸头。用粘板膜覆盖每个板。用力按压板孔顶部和边缘的薄膜,以形成均匀和紧密的密封。
使用无菌剃须刀片,去除微量滴定板边缘的任何多余薄膜。将准备好的图放入 multipl 分光光度计的输入套管中。打开读板器软件并创建一个方案,每 30 分钟测量一次吸光度,总共 32 小时。
在两次读数之间摇晃 60 秒,将设备中的温度设置为 37 摄氏度。一旦图谱平衡到设定温度,32 小时后开始方案,从读板器的输出套管中取出图谱。使用 e coone 标识号、日期和地图逻辑示意图类型标记每个数据文件。
按照随附文件中的描述分析数据,以评估生长和生物学相关的生长。来自代谢物分析的参数 细胞可以通过连续或连续传代批次 Turing 培养。保持稳定状态。
在这里,我们将演示一种持续的文化。如随附文件所述,对 75 毫升连续培养反应器和 2 升奶瓶的组件进行消毒灭菌后,将所有高压灭菌器材料放入生物安全柜中,并在培养基冷却时打开紫外线灯。培养基冷却后,加入 0.1% L 阿拉伯糖,每毫升 100 μg。
将氨苄青霉素加入 75 毫升 0.5 XLB 肉汤中,然后将其转移到连续反应器中。解开连续培养反应器盖并将其拧到反应器上。避免接触采样管,解开奶瓶盖并将其拧到奶瓶上。
避免接触采样管,保持连接到 epsilon 端口的 18 英寸管路无菌。解开 18 英寸管路和蠕动泵管路。适配器 将 18 英寸管的一端安装到蠕动泵管的一端 适配器将蠕动泵管适配器的另一端安装到 18 英寸管上。
连接进料瓶盖的端口 ε 将零点 22 微米过滤装置连接到连续培养反应器的端口、β 和 delta 上。将零点 22 微米过滤器单元连接到端口 alpha 的适配器上。最后,将 18 英寸管子连接到生物安全罩中。
用 100 μL 大肠杆菌过夜培养物接种连续培养器,如随附文件所述。拧紧反应器和补料瓶盖,然后将系统移至 37 摄氏度的培养箱中。配备磁力搅拌板和微型蠕动泵,将蠕动泵管道适配器安装到蠕动泵中。
进料瓶的管道进入泵并引向反应器。将泵设置为快速,然后启动它。切换到正向检查,以确保介质开始流经管路。
将反应器放在磁力搅拌板上并开始混合。让连续培养反应器平衡 24 小时,然后在第二天取样。要对连续培养物进行采样,请将 5 毫升诱饵锁注射器拧到端口 γ 上,然后取出 4.5 毫升培养物。
使用 500 微升培养物测量 600 纳米的光密度。然后使用剩余的等分试样以 OD 600 为 0.35 和 1.7 毫升微量离心管制备四个 1 毫升培养物,以制备用于气相色谱、飞行时间质谱或 GC 至 F ms 的样品。将细胞以 16, 900 倍 G 离心 2 分钟以沉淀。
离心倾析后,上清液然后用 500 微升 PBS 洗涤。执行此洗涤。第二次,将上清液倒出至最终时间,然后将含有沉淀细胞的微量离心管浸入液氮中。
在鼓泡停止之前,将样品储存在零下 80 摄氏度的冰箱中。收集完所有样本后,每 12 小时重复采样一次,持续 4 天。将干冰上的每个克隆 3 个样品运送到代谢组学核心设施,用于样品处理分析并将 GC 标准化为 f ms,以获得病毒开放阅读框。
海水是从珊瑚边界层以下的南线群岛的星巴克岛和卡罗琳 AOL 收集的。使用图谱评估了 47 个克隆在 72 种碳特定条件下的细菌生长情况。然后使用所得数据将克隆分类为预期生长、功能获得、功能丧失和无生长表型。
检验携带功能相似蛋白质的克隆具有代谢组学特征的假设。通过 GC TOF ms 测定在连续培养中生长的 84 个克隆的中位代谢物丰度。然后使用所得数据根据克隆的相对代谢物丰度(用颜色表示)对克隆进行分层聚类。
最丰富的代谢物以红色显示,而丰度最低的代谢物以深蓝色显示。初步代谢组学分析显示,虽然结构和代谢基因没有明显地彼此分离,但那些对宿主表现出相似影响的基因确实相关。例如,注释的衣壳基因与本研究中强调的推定代谢基因紧密聚集 EDT 24 40 和 EDT 24 41 使用公开可用的跨膜拓扑和信号肽预测程序进行的研究显示,有证据表明两个推定的代谢基因都含有单个跨膜结构域。
有趣的是,第一个簇组中的 9 个克隆中有 5 个使用相同的拓扑结构预测了跨膜结构域。综上所述,这些数据表明该方法能够提供有关克隆代谢物谱、具有相关功能的潜在克隆和克隆代谢物异常值的信息。在尝试此程序时,重要的是要记住所介绍的方法在很大程度上受到细菌生理学的影响。
需要考虑确保克隆独立组在实验中防止污染,并使用适当的对照测试单个变量。
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