2015年8月27日
许多哺乳动物细胞优先通过硬性向更坚硬的基质或基质迁移。该方案的目标是提供一个简单的体外系统,该系统可用于通过掺入具有确定刚度的聚二甲基硅氧烷 (PDMS) 底物来研究和纵细胞双向性行为,并与玻璃盖玻片连接。
该程序的总体目标是为细胞 durex 分析提供一个简化的系统,通过该系统,许多哺乳动物细胞优先迁移到更坚硬的底物。这是通过首先制备具有规定刚度的聚甲基 suboxane 或 PDMS 基材来实现的。接下来,将制备好的 PDMS 倒入六孔板的每个孔中,并去除任何气泡。
然后,在每个孔的 PDMS 顶部放置消毒盖玻片以形成覆盖层,从而完成杜蕾斯腔室。最后一步是将细胞接种到 Duro 税室中,其密度使细胞有足够的空间迁移,而不会与其他细胞发生重大相互作用。最终,活细胞显微镜用于研究迁移细胞中的 axxis。
与聚丙烯酰胺等现有方法相比,该技术的主要优点是软质 PDMS 和刚性玻璃之间只有一个步骤,而不是梯度凝胶替代品。此外,用细胞外基质包被 PDMS 纤连蛋白等组分不需要化学交联,而聚丙烯酰胺凝胶则需要化学交联。要首先准备一个 6 孔组织培养板,请用 50 毫升锥形管撕碎天平。
在 50 毫升试管中称取约 10 克聚二甲基 suboxane 或 PDMS 碱溶液。对于 90 比 1 的基材,将 PDMS 基础溶液的测量重量除以 90。为了确定所需的交联剂溶液的正确量,将计算量的 PDMS 交联剂溶液添加到剧烈混合的管中 A-P-D-M-S 碱交联剂混合物中,在室温下放置 5 分钟。
在这个阶段使用小刮刀,混合物将包含少量气泡。在台式离心机中以 50 次离心 PDMS 底物 5 分钟。G.如果仍有气泡,请加温以去除气泡。
离心 5 分钟后,再次将 90 比 1 PDMS 底物中的 1 毫升移液到处理过的组织培养物的每个孔中。六孔板。在此阶段,可以通过用 21 号针头戳破 PDMS 中存在的任何剩余气泡来消除它们。
让 PDMS 在孔中扩散 30 分钟。接下来将 12 毫米玻璃杯煮沸 1 号,盖上盖子,在蒸馏水中放置 5 分钟,共 3 次。轻轻触摸盖子的一侧,将一张干燥的盖玻片放入组织培养板的每个孔中。
滑入 PDMS 溶液中,然后将盖玻片放到 PDMS 上。随着盖玻片稳定下来,PDMS 将开始侵占盖玻片的边缘,但不会完全覆盖它。这将在固化后在 PDMS 和玻璃之间生成一个界面。
将板在 70 摄氏度的烘箱中孵育 16 小时以固化 PDMS。最后,将板置于细胞培养罩中,进行紫外线消毒 10 分钟。在每个 Durox 腔室中涂上 1 毫升纤连蛋白,溶于不含钙和镁的磷酸盐缓冲盐水中,在 30 摄氏度下喷涂 1 小时。
确保整个表面浸没在 PBS 溶液中的纤连蛋白中。称取 0.5 克 BSA 并将其溶解在 50 毫升 PBS 过滤器中,制备热性质的 1% 牛血清白蛋白或 BSA。通过 22 微米点过滤器对溶液进行消毒,然后在 80 摄氏度下加热 12 分钟。
接下来,吸出纤连蛋白溶液并用 PBS 洗涤腔室 3 次。向每个孔中加入 1 毫升热变性 BSA 的 PBS 溶液,在室温下孵育 30 分钟,用胰蛋白酶观察,并在 durex 腔室被热量阻塞时对所选细胞进行计数。变性 BSA 在接种细胞之前从腔室中吸出 BSA 溶液。
将 10, 000 个体积为 2 毫升的细胞接种到 doax 室的每个孔中。使用所选特定细胞类型所需的培养基,让细胞在 37 摄氏度和 5% CO2 的加湿培养箱中粘附并铺展在基质上 4 小时,在倒置显微镜上使用 10 倍物镜的相差进行活细胞成像。显微镜应配备封闭的环境加湿室,以便在长期成像过程中将温度控制在 37 摄氏度和 5% CO2。
成像,细胞扩散约 3.5 小时后,将板组装在显微镜室中。让样品在腔室中平衡 30 分钟。在显微镜上设置自动多点访问(如果可用)。
专注于 PDMS 和玻璃盖玻片之间的界面,并选择在界面周围成像的点。每个杜蕾斯腔室图像平均 40 个点,细胞每 10 分钟一次,持续长达 16 小时,感兴趣区域将显示为两条线,外线对应于盖玻片的边缘,内线对应于 PDMS 和盖玻片之间的实际界面。要分析数据,请生成一个电子表格,如文本协议中所示的电子表格。
计算从 PDMS 到玻璃表面的交叉事件数,反之亦然,从生成的每个视频中。交叉事件定义为细胞核在任一方向上越过 PDMS 和玻璃之间的边界。在 Excel 电子表格的相应列中记录交叉事件的数量,以量化多次交叉。
计算 cell 遍历界面的次数。该数字应记录在与影片结尾时单元格所在的基板相对应的 Excel 列中。对影片中穿过界面的每个单元格重复分析。
排除移出视野的细胞 成像期间。计算从 PDMS 迁移到玻璃表面并因此经历 Duro Texas 的细胞百分比。要这样做。
将从软到硬的交叉事件数和以硬结束的多个交叉事件相加,然后除以交叉事件的总数。通过将多次交叉的总数除以交叉总数来计算多次交叉的百分比,以开始了解细胞与其环境中的机械线索相对应的分子机制。可以使用 IRNA 敲低特异性蛋白质,如下所示。
大约 70% 的对照 irna 处理的细胞表现出 axxis。与此形成鲜明对比的是,当使用 RNAi 敲除 CD 间隙时,细胞对它们是迁移到硬底还是软底上没有偏好。此外,CD 间隙敲低细胞穿过边界倍数。
而对照 irna 处理的细胞通常只越过边界一次代表对照轨迹。Irna 细胞表明,与 CD 间隙相比,细胞通常迁移一次边界,并优先停留在更坚硬的表面上。Irna 处理了未表现出对任一刚性偏好并多次越过边界的细胞。
观看此视频后,您应该对如何准备 PDMS 基板、组装 duris 腔室和量化 DUR 税有很好的了解。
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本协议概述了一个简化的体外系统,用于研究细胞硬性趋化,即哺乳动物细胞优先向刚性基质迁移。通过利用具有确定刚性的聚二甲基硅氧烷(PDMS)基质,研究人员可以操纵和观察细胞迁移行为。
This simplified durotaxis assay enables biopharma R&D teams to evaluate cell mechanosensing and directional migration in response to substrate stiffness, a key factor in tumor invasion and stromal interactions. By providing a reproducible in vitro model with a defined rigidity interface between PDMS and glass, the system supports target validation and mechanistic de-risking of proteins involved in mechanotransduction pathways. The assay’s adaptability to various cell types and knockdown strategies enhances its utility in early discovery for identifying modulators of durotaxis as potential therapeutic targets.
The assay fits within the discovery continuum from target hypothesis testing to lead identification, particularly for pathways linking extracellular matrix mechanics to cell migration phenotypes.