Name: 在横向主动脉缩窄的小鼠模型和心脏形态学评估功能改变通过超声心动图成像 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 5 s
Description: 了解超声心动图成像技术在小鼠横向主动脉缩窄模型中的应用，用于评估心脏结构与功能变化。该方法可无创监测心血管疾病进展，为心血管研究提供可靠技术支持。

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作者无任何利益冲突需要披露。

该方案遵循华盛顿大学机构动物护理和使用委员会的指导原则。
1. 成像前的手术操作与准备
<ol>
	<li>对C57BL/6小鼠进行TAC或假手术处理，方法如前所述10.</li>
	<li>TAC 或假手术一周后，在诱导室中使用混有 1 L/min 氧气的 2% 异氟烷麻醉小鼠2通过捏压脚趾或尾巴确认动物无反应，以确保麻醉效果。麻醉期间使用兽医用眼膏涂抹眼睛，防止角膜干燥。&#160;去除胸部毛发，使用脱毛膏。用70%乙醇对小鼠皮肤进行消毒。</li>
	<li>将小鼠仰卧位固定于动物操作平台。为维持稳定的麻醉水平，使用鼻罩输送0.5 - 1%异氟烷与1 L/min氧气的混合气体。2.</li>
	<li>将电极凝胶涂抹于小鼠足部，并用胶带将其固定在电极板上。</li>
	<li>插入直肠探头以监测体温。通过加热垫或加热灯将体温维持在37 °C。</li>
	<li>在小鼠胸部涂抹一层预热的超声耦合剂，主要覆盖心脏区域。注意：成像结束后，用无菌纱布擦除超声耦合剂并擦干小鼠。</li>
</ol>
2. 在主动脉弓切面中，使用B型和多普勒成像评估横位主动脉缩窄
<ol>
	<li>使用B模式设置获取主动脉弓切面，以观察主动脉、主要动脉分支及缩窄部位。
	<ol>
		<li>尽可能将平台左侧向上倾斜，使小鼠转为左侧卧位。用手持支架将超声探头保持垂直位置，并沿右侧胸骨旁线置于胸部，探头缺口朝向小鼠下巴。&#160;注意：降低探头时不要压迫小鼠胸壁；仅需施加最小程度的压力。</li>
		<li>在肩胛骨水平将探头向上倾斜，并轻微顺时针旋转，直至显示主动脉弓。观察横主动脉缩窄部位，该部位位于无名动脉（IA）与左颈总动脉（LCCA）分叉之间（图1）。 
		注意：假手术小鼠中未检测到缩窄。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>点击工作站上的&#34;彩色多普勒&#34;按钮，切换至彩色多普勒模式，以监测通过缩窄部位的血流方向和速度。点击&#34;动态存储&#34;按钮获取并保存图像。</li>
	<li>点击&#34;PW多普勒&#34;按钮，切换至脉冲波多普勒模式，将取样容积（虚线光标框）置于缩窄部位远端，寻找速度最高的狭窄射流，然后点击&#34;PW多普勒&#34;按钮获取主动脉血流波形并测量峰值速度（图2）。</li>
	<li>使用修正的伯努利方程计算缩窄部位的压差：压差 = 4 × Vmax2。仅纳入压差在40至80 mmHg范围内的小鼠进行后续分析。</li>
</ol>
3. 在胸骨旁长轴切面中，使用B型和M型超声成像评估心脏尺寸与收缩功能
<ol>
	<li>将小鼠仰卧于平台上，垂直握持探头，使探头凹槽朝向小鼠头部。将探头沿胸壁平行于左侧胸骨旁线下降，并逆时针旋转30°。</li>
	<li>使用B型成像获取完整的长轴图像 &#34;矢状&#34; 心脏切面图像。调整探头角度和聚焦深度，以清晰显示左心室、室间隔壁以及少量右心室壁。保存图像，用于后续测量心壁厚度和心腔大小。使用 &#34;心脏功能检测套餐&#34;选择参数，如IVS或LVAW、LVID和LVPW，然后点击图像以绘制每个参数对应的测量线，从而获得测量值。</li>
	<li>观察心壁运动模式，并检查是否存在可能的运动异常，包括无动力、低动力及不同步现象。 
	注：无动症和运动减弱分别指心壁运动的完全丧失和部分减弱。不同步性指心壁运动不规则且不协调。</li>
	<li>切换至M型模式，在乳头肌水平将M型光标垂直置于左心室壁，采集图像以用于后续测量心脏尺寸和缩短分数（fractional shortening）图3).</li>
</ol>
4. 在胸骨旁短轴切面中，使用B型和M型超声成像评估心脏形态与功能
<ol>
	<li>从胸骨旁长轴切面，将探头顺时针旋转90°获得胸骨旁短轴切面。调整探头位置，以获得水平横截面图像。 &#34;横断面&#34; B模式下心脏的切面图像，两个乳头肌清晰可见，位于右侧（2点和4点位置）。</li>
	<li>切换至 M 型模式，将 M 型取样线置于左心室中段水平。采集并储存图像，用于后续测量心室壁厚度、心腔大小及缩短分数。图4）。使用 &#34;心脏检测套餐&#34;在短轴（SAX）图像中选择参数，包括室间隔（IVS）或左室前壁（LVAW）、左室内径（LVID）和左室后壁（LVPW），然后点击图像以绘制各参数对应的测量线，获取测量值。 
	注意：此处获得的测量值应与胸骨旁长轴切面所获得的测量值密切相关。图5).</li>
</ol>
5. 在心尖四腔心切面中，使用多普勒成像评估收缩期和舒张期功能
<ol>
	<li>获取心尖四腔切面，以显示左心室和右心室，心房位于屏幕底部。在B模式下，从短轴切面开始，倾斜平台的左上角，使小鼠头部向下，并将探头朝向小鼠的右肩。这实际上是获得心脏的&#34;冠状面&#34;视图，从心尖方向向上观察。</li>
	<li>在B模式下观察二尖瓣，并切换至彩色多普勒模式，将取样容积（虚线光标框）置于二尖瓣瓣尖处。</li>
	<li>切换至脉冲波多普勒（PW Doppler）模式，以评估通过二尖瓣的血流模式。将多普勒探头光标与二尖瓣血流方向平行对齐。使用小于20°的探头角度测定峰值流速（图6）。</li>
	<li>保存图像以供后续测量。使用&#34;心脏分析软件包&#34;，并选择&#34;二尖瓣血流（MV flow）&#34;。点击各个参数，并绘制相应直线以获取测量值。可测量的参数包括：E峰流速（舒张早期，心室主动舒张充盈）、A峰流速（舒张晚期，心房收缩充盈）、二尖瓣等容舒张时间与等容收缩时间（IVRT和IVCT）、以及射血时间（ET）。</li>
	<li>通过公式 MPI = (IVCT + IVRT)/ET 计算心肌性能指数（MPI）。</li>
</ol>
6. 动物术后处理
<ol>
	<li>必要时向手术动物腹腔注射镇痛剂和/或无菌生理盐水。</li>
	<li>让动物俯卧于加热垫上恢复。在动物恢复足够意识、能够维持胸卧位之前，不得无人看管。动物在完全恢复之前，不得放回与其他动物同居的环境中。</li>
</ol>

<ol><li>Rockman, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+atrial-specific+and+inducible+expression+of+an+atrial+natriuretic+factor+transgene+in+an+in+vivo+murine+model+of+cardiac+hypertrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 88 (18), 8277-8281 (1991).</li>
<li>Tanaka, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transthoracic+echocardiography+in+models+of+cardiac+disease+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Transthoracic echocardiography in models of cardiac disease in the mouse.</a> Circulation. 94 (5), 1109-1117 (1996).</li>
<li>Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+animal+models+of+heart+failure%3A+development+of+novel+therapies%2C+past+and+present%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present.</a> Circ Heart Fail. 2 (2), 138-144 (2009).</li>
<li>Heineke, J., Molkentin, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+cardiac+hypertrophy+by+intracellular+signalling+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Regulation of cardiac hypertrophy by intracellular signalling pathways.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 7 (8), 589-600 (2006).</li>
<li>Oka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac-specific+deletion+of+Gata4+reveals+its+requirement+for+hypertrophy%2C+compensation%2C+and+myocyte+viability%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Cardiac-specific deletion of Gata4 reveals its requirement for hypertrophy, compensation, and myocyte viability.</a> Circ Res. 98 (6), 837-845 (2006).</li>
<li>Gardin, J. M., Siri, F. M., Kitsis, R. N., Edwards, J. G., Leinwand, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiographic+assessment+of+left+ventricular+mass+and+systolic+function+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Echocardiographic assessment of left ventricular mass and systolic function in mice.</a> Circ Res. 76 (5), 907-914 (1995).</li>
<li>Respress, J. L., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transthoracic+echocardiography+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transthoracic echocardiography in mice.</a> J Vis Exp. (39), e1738(2010).</li>
<li>Pistner, A., Belmonte, S., Coulthard, T., Blaxall, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+echocardiography+and+ultrasound+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Murine echocardiography and ultrasound imaging.</a> J Vis Exp. (42), e2100(2010).</li>
<li>Patten, R. D., Aronovitz, M. J., Bridgman, P., Pandian, N. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+pulse+wave+and+color+flow+Doppler+echocardiography+in+mouse+models+of+human+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Echocardiogr%22%5BJournal%5D)">Use of pulse wave and color flow Doppler echocardiography in mouse models of human disease.</a> J Am Soc Echocardiogr. 15 (7), 708-714 (2002).</li>
<li>deAlmeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transverse+aortic+constriction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transverse aortic constriction in mice.</a> J Vis Exp. (38), e1729(2010).</li>
<li>Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Bátkai, S., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+cardiac+function+using+pressure-volume+conductance+catheter+technique+in+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats.</a> Nat Protoc. 3 (9), 1422-1434 (2008).</li>
<li>Larsen, T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolated+working+mouse+heart%3A+methodological+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">The isolated working mouse heart: methodological considerations.</a> Pflugers Arch. 437 (6), 979-985 (1999).</li>
<li>Roth, D. M., Swaney, J. S., Dalton, N. D., Gilpin, E. A., Ross, J. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+anesthesia+on+cardiac+function+during+echocardiography+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Impact of anesthesia on cardiac function during echocardiography in mice.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 282 (6), H2134-H2140 (2002).</li>
<li>Pearlman, A. S., Stevenson, J. G., Baker, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doppler+echocardiography%3A+applications%2C+limitations+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Doppler echocardiography: applications, limitations and future directions.</a> Am J Cardiol. 46 (7), 1256-1262 (1980).</li>
<li>Bauer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiographic+speckle-tracking+based+strain+imaging+for+rapid+cardiovascular+phenotyping+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Echocardiographic speckle-tracking based strain imaging for rapid cardiovascular phenotyping in mice.</a> Circ Res. 108 (8), 908-916 (2011).</li>
</ol>

本工作部分由美国国立卫生研究院/国家心肺血液研究所资助，资助编号为 R00HL0908076 和 R01HL116507（授予 Q.L.）。

超声心动图已广泛用于评估心脏疾病啮齿类动物模型的心脏功能2,6与压力-容积环测量等侵入性或终点性方法相比11 和 离体 工作心脏12，超声心动图提供了一种强大且无创的工具，用于评估活体动物持续发生的心脏结构和功能变化。为获得可靠的数据，保持体温和心率在生理范围内至关重要13 通过仔细调节加热装置和麻醉水平。所有图像均应按照标准化成像流程进行一致地采集和分析，以便于不同品系或基因型小鼠之间的比较。
TAC 常用于在小鼠中诱导心肌肥厚和心力衰竭1。通过多普勒成像无创测量缩窄部位的压力梯度，可可靠地评估小鼠压力超负荷的程度。成功的 TAC 通常会产生 ≥40 mmHg 的压力梯度。只有经历相似程度压力超负荷的小鼠才应纳入后续分析，而压力梯度过低或过高的小鼠应被排除。TAC 术后，小鼠通常在 1–2 周内出现心肌肥厚，4 周后出现心脏扩张，具体表现取决于压力超负荷的程度以及所用小鼠的遗传背景。如上所述，可通过超声心动图成像可靠地评估 TAC 术后心脏动态重塑及功能...

诸如主动脉缩窄（TAC）和心肌梗死（MI）的小鼠心脏病模型已被证实对研究疾病机制以及开发新的治疗策略具有重要价值3。TAC最初会引发代偿性心肌肥厚，但长期的压力超负荷将导致心脏扩张和心力衰竭4。主动脉狭窄的紧密程度直接决定了心肌肥厚的程度及其向心力衰竭的转变。在这些研究中，对主动脉狭窄处压力梯度进行无创且可靠的测量至关重要。多普勒成像已被用于评估TAC引起的压力梯度5，这是一种基于导管测压的无创替代方法。
超声心动图已广泛用于非侵入性地测量小鼠的心脏形态以及收缩和舒张功能6-8。二维B型成像用于检测心脏的异常运动或结构改变。一维M型成像用于心脏尺寸和收缩力的定量分析。近年来，彩色多普勒和脉冲波多普勒成像已应用于啮齿类动物超声检查，在超声心动图中具有广泛的应用，包括血流方向和速度的测量，以及收缩和舒张功能的评估9。
采用B型、M型、彩色多普勒及脉冲波多普勒模式的超声心动图对心脏功能进行纵向实时监测，可全面评估生理和病理条件下小鼠的心脏结构与功能。本文详细描述了利用超声心动图成像技术监测小鼠在经胸主动脉缩窄术（TAC）或假手术后动态心脏形态学及功能变化的方法。

<table><tbody><tr><td>麻醉设备</td><td>Harvard Apparatus, 84 October Hill Road&lt;br/&gt; Holliston, MA</td><td>723015</td><td></td></tr><tr><td>Vevo 2100 成像系统</td><td>VisualSonics Inc., 3080 Yonge Street Suite 6100, Box 66, Toronto, Ontario, Canada</td><td>Vevo 2100</td><td></td></tr><tr><td>Aquasonic 超声耦合剂</td><td>Parker Laboratories, 286 Eldridge Rd, Fairfield, NJ&amp;nbsp;</td><td>03-50</td><td></td></tr><tr><td>异氟烷</td><td>Piramal Healthcare, Inc, 3950 Schelden Circle&lt;br/&gt; Bethlehem, PA&amp;nbsp;</td><td>NDC 66794-017-25</td><td></td></tr><tr><td>F/air 麻醉气体过滤装置</td><td>A.M. Bickford, Inc, 12318 Big Tree Rd, Wales Center, NY&amp;nbsp;</td><td>80120</td><td></td></tr></tbody></table>

通过超声心动图成像评估横主动脉缩窄小鼠模型中的心脏形态与功能变化

Assessment of Cardiac Morphological and Functional Changes in Mouse Model of Transverse Aortic Constriction by Echocardiographic Imaging

小鼠横断性主动脉缩窄（TAC）已被用作研究心肌肥厚和心力衰竭机制的重要模型1。在心脏病动物模型中，评估心脏形态和功能实时变化的可靠无创方法至关重要。经胸超声心动图是无创评估心脏结构和功能的重要工具2。本文中，我们采用高分辨率超声成像系统，在TAC小鼠模型中随时间监测心肌重构及心力衰竭的进展。通过B型、M型和多普勒成像，精确评估TAC术后小鼠的心肌肥厚、心室扩张及功能恶化情况。利用彩色多普勒和脉冲波（PW）多普勒成像，无创测量TAC所造成主动脉缩窄处的压力梯度，并评估小鼠的二尖瓣血流。因此，经胸超声心动图成像可为心脏病小鼠模型提供全面的心脏尺寸和功能无创测量手段。

图1显示了假手术（图1A）或TAC手术（图1B）小鼠心脏主动脉弓切面的B型超声图像。图中可见主动脉弓、无名动脉、左颈总动脉和左锁骨下动脉。请注意，主动脉缩窄在TAC组心脏中清晰可见，而在假手术组中则不可见。主动脉切面的彩色多普勒图像如图2A所示。通过脉冲波多普勒成像（PW Doppler）记录了缩窄部位跨壁血流的波形（图2B）。成功的TAC手术将导致缩窄部位下游血流速度显著升高（通常在TAC小鼠中约为~4 m/sec）。根据改良伯努利方程，基于峰值流速计算出缩窄处的压力阶差（图2C）。
图3显示了假手术组（图3A）和TAC心脏（图3B）的胸骨旁长轴切面...

本实验方案的目的是利用B型和M型超声心动图以及彩色/脉冲波多普勒成像，无创性地评估经主动脉横缩手术建立的小鼠心脏病模型中心脏结构和功能的变化。

小鼠横断性主动脉缩窄（TAC）已被用作研究心肌肥厚和心力衰竭机制的重要模型1。一种可靠的……

本实验的总体目标是利用超声心动成像技术，在经横主动脉缩窄术（TAC）诱导的心脏病小鼠模型中评估心脏结构与功能。该方法有助于回答心血管研究领域中关于动物模型中心脏病影像表现的关键问题。该技术的主要优势在于，能够以非侵入性的方式可靠地长期监测心脏病的进展过程。通常，介绍该方法确实存在较大困难，因为如果没有实际演示，超声心动图成像和测量数据的获取将极具挑战性。在开始成像之前，需在横主动脉缩窄小鼠的足垫上涂抹电极凝胶，并用胶带将足垫固定于电极板上。随后插入直肠探头，以在操作过程中监测小鼠体温。当动物准备就绪后，将成像仪设置为B模式，并尽可能向上倾斜平台左侧，使小鼠转为左侧卧位。用手握住垂直放置的超声探头支架，将探头沿右侧胸骨旁线置于动物胸部，探头凹槽朝向下巴方向。接着，将探头向上倾斜至肩胛骨位置，并轻微顺时针旋转探头，直至显示主动脉弓图像。观察位于无名动脉分支与左颈总动脉分支之间的横主动脉缩窄部位。确定缩窄部位后，点击工作站上的彩色多普勒按钮，切换至彩色多普勒模式，并获取通过缩窄部位的血流方向和速度图像。单击电影存储按钮以保存图像。然后单击脉冲波多普勒按钮，切换至脉冲波多普勒模式。将虚线光标取样容积框置于狭窄部位远端，以找到速度最高的狭窄射流，再次单击脉冲波多普勒按钮，获取主动脉血流的波形，随后测量峰值速度，并使用改良的伯努利方程计算狭窄部位的压差。为评估心脏大小和收缩功能，将接受TAC手术的小鼠仰卧置于平台上，垂直放置换能器，使缺口朝向小鼠头部。将换能器平行于左侧胸骨旁线降低至胸壁，并将探头逆时针旋转30度。将成像模式设置为B模式。调整探头角度并调节深度，以清晰显示左心室、室间隔壁以及少量右心室壁。点击动态图像存储（cine store）以保存图像，用于后续测量心壁厚度和心腔大小。使用相应成像软件中的心脏分析软件包，选择感兴趣的参数，并在目标超声心动图图像上绘制各参数对应的测量线，以获取心壁厚度和心腔大小的测量值。然后观察心壁运动模式，以检查是否存在任何可能的运动异常。接下来，切换至M型模式，并将M型光标垂直放置于乳头肌水平的左心室壁处。随后点击 cine store 以获取图像，用于后续测量心脏尺寸和缩短分数。从胸骨旁长轴切面开始，将探头顺时针旋转90度，以获得胸骨旁短轴切面。调整探头位置，使心脏在B模式下呈现水平横截面图像，并在两点和四点位置可见乳头肌。随后切换至M模式，将M模式取样线置于左心室中部。单击电影存储以保存图像。然后，使用心脏分析软件包，选择适当的短轴参数，并在图像上点击以绘制每个参数对应的线条，从而获得测量值。为了在B模式下从短轴切面同时观察左心室和右心室以及心房，需将平台的左上角倾斜，使小鼠头部向下倾斜，并将探头朝向右肩方向调整角度。将获得心脏的冠状面图像。观察二尖瓣，然后切换至彩色多普勒模式，并将虚线光标框的取样容积置于二尖瓣瓣尖处。为了评估二尖瓣的血流模式，切换至脉冲波多普勒模式，并将多普勒探头光标以小于20度的角度与二尖瓣血流方向平行对齐，以确定峰值流速。保存图像后，选择心脏分析软件包并选择二尖瓣血流。选择感兴趣的参数，并绘制相应的取样线以获得适当的测量值。然后计算心肌性能指数。如这些代表性B型图像所示，在假手术组和TAC手术组心脏中均可观察到主动脉弓、无名动脉、左颈总动脉和左锁骨下动脉。但主动脉缩窄仅在TAC心脏中可见。在缩窄部位处对主动脉血流进行彩色多普勒和脉冲波多普勒成像显示，成功的TAC会导致缩窄部位下游的血流速度显著增加。此外，假手术组与TAC手术组心脏多个心动周期的M型超声心动图追踪显示，与对照假手术组心脏相比，接受TAC处理的心脏心壁厚度显著增加，心腔明显扩张。在胸骨旁短轴切面中，TAC心脏还进一步表现出心壁增厚、心室扩张、收缩功能下降以及左心室质量增加。此外，在存在舒张期或收缩期心脏功能障碍的病理状态下，例如接受TAC处理的小鼠，在心尖四腔观中通常也会观察到E峰与A峰流速比值降低以及心肌做功指数值升高。一旦掌握该技术，若操作得当，可在三十分钟内完成。在进行该操作时，重要的是须牢记遵循所在机构关于动物实验的指导原则。完成此操作后，可进一步采用系统性分析等其他方法来评估压力-容积关系。该技术建立后，将为心血管研究领域的研究人员提供研究动物模型中心肌肥厚和心力衰竭的新途径。观看本视频后，我们应能够充分理解如何利用心内超声成像技术评估动物模型中心跳过程中的心脏结构与功能变化。请注意，使用异氟烷可能存在危险，在进行此操作时，应始终采用适当的工程控制措施和个人防护装备。

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医学

在横向主动脉缩窄的小鼠模型和心脏形态学评估功能改变通过超声心动图成像

小鼠横主动脉缩窄术（TAC）是研究心肌肥厚和心力衰竭发生机制的常用实验模型。本文描述了缩窄主动脉以在小鼠中建立可重复的心肌肥厚程度的操作步骤。...

小鼠横位主动脉缩窄术

经胸超声心动图提供了一种无创评估小鼠心脏功能的方法。结合超声成像和多普勒成像技术，可获取心脏的结构尺寸和心内血流信息，从而综合评价心脏的收缩和舒张功能。...

小鼠经胸超声心动图检查

本视频介绍了一种在实验小鼠上进行超声心动图检查的实验方案。...

小鼠超声心动图：一种评估心脏形态的非侵入性技术

右心室（RV）功能障碍在心血管疾病的发病机制中至关重要，但目前可用于评估右心室功能的方法十分有限。近年来超声成像技术的进步为长期纵向研究右心室提供了无创且准确的选择。本文中，我们详细描述了一种利用右心室压力超负荷小鼠模型进行的逐步超声心动图检测方法。...

经胸超声心动图评估肺动脉缩窄小鼠模型中右心室结构与功能

本方案详细描述了用于小鼠心脏及心脏瓣膜功能全面表型分析的超声心动图方法。...

小鼠瓣膜性心脏病全面表型特征的超声心动图方法与方案

微创横主动脉缩窄术（MTAC）保留了常规横主动脉缩窄术（TAC）的核心要素，同时避免了气管插管和呼吸机的使用。该方法在左心室超负荷的高通量研究中表现出显著优势，尤其适用于转化医学研究。...

小鼠微创横主动脉缩窄术

超声心动图检查在小鼠中经常使用。为此已开发出昂贵的高分辨率超声设备。本方案描述了一种经济实惠的超声心动图操作流程，并结合组织学形态计量分析，以确定心脏形态。...

小鼠心脏形态的超声心动图与组织学检查

本文介绍了一种通过侧胸切开术进行横主动脉缩窄（TAC）的操作方案。该技术是一种微创的闭合式胸腔手术，旨在利用标准的TAC实验室条件，在小鼠中模拟压力超负荷和心力衰竭状态。...

一种用于在小鼠中诱导横主动脉缩窄的闭胸模型

本方案描述了一种经过改良和简化的微创横主动脉缩窄（TAC）技术，该技术使用自制的牵开器。该手术无需呼吸机或显微镜即可完成，可诱导压力超负荷，最终导致心肌肥厚或心力衰竭。...

小鼠横位主动脉缩窄术的一种改良技术

我们描述了一种通过使用小型金属夹缩窄升主动脉，在Wistar大鼠中建立压力超负荷及左心室肥厚的逐步操作方法。该模型被广泛用于研究心脏肥厚过程中的心肌重塑变化，以及识别和评估逆转此类变化的策略。...

大鼠升主动脉缩窄术用于建立压力超负荷性心肌肥厚模型

了解超声心动图成像技术在小鼠横向主动脉缩窄模型中的应用，用于评估心脏结构与功能变化。该方法可无创监测心血管疾病进展，为心血管研究提供可靠技术支持。

通过超声心动图成像评估横主动脉缩窄小鼠模型中的心脏形态与功能变化

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