Name: 小鼠腹腔粘连的创建 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-27T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 44 s
Description: 学习在小鼠中创建腹腔粘连的外科手术方法，使用砂纸和淀粉诱导创伤形成。该技术可100%形成粘连且死亡率极低，适用于研究粘连形成的细胞和分子机制。

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C.D.M. 获得了美国外科医师学会（ACS）住院医师研究奖学金的支持。M.S.H. 获得了加州再生医学研究所（CIRM）临床研究员培训基金 TG2-01159 的支持。M.S.H.、H.P.L. 和 M.T.L. 获得了美国颌面外科医师学会（ASMS）/颌面外科医师基金会（MSF）研究基金奖的支持。H.P.L. 获得了美国国立卫生研究院（NIH）基金 R01 GM087609 以及 Ingrid Lai 和 Bill Shu 为纪念 Anthony Shu 捐赠的资助。H.P.L. 和 M.T.L. 获得了 Hagey 儿科再生医学实验室和Oak基金会的支持。M.T.L. 获得了Gunn/Olivier基金的支持。

本方案已获得斯坦福大学机构动物护理和使用委员会（IACUC）批准，并符合所有关于实验动物使用的机构伦理指南。
1. 腹腔粘连的建立
<ol>
	<li>手术前一周开始让小鼠食用抗生素饲料。</li>
	<li>对手术器械进行高压灭菌，并预热生理盐水灌洗液。</li>
	<li>使用2%吸入式异氟烷对小鼠进行麻醉。</li>
	<li>先用毛发剪，再快速涂抹脱毛剂（5–10秒），去除腹部大部分区域的毛发。用湿纱布轻轻擦拭，彻底清除脱毛剂；也可选择将小鼠下半身小心浸入温水中。彻底擦干动物体表。</li>
	<li>将小鼠鼻部放入麻醉鼻罩中。在整个手术过程中，密切监测动物的呼吸频率，并根据需要调整麻醉气体流速。</li>
	<li>使用加热装置（如加热垫或保温灯）以防止低体温。</li>
	<li>在准备腹部手术区域前，用胶带条将小鼠固定在腹部上下方，防止术中移动。先用碘伏消毒腹部，再用70%乙醇擦拭。消毒范围应尽可能大，包括剃毛区域边缘的毛发。将无菌手术巾覆盖于小鼠身上。（图1）</li>
	<li>皮下注射0.1 mg/kg的丁丙诺啡，或对30 g小鼠注射3 µg。</li>
	<li>进行皮肤切口。
	<ol>
		<li>从下腹部正中线开始，用镊子夹住皮肤，使用锐利剪刀在皮肤上做一浅层垂直切口。</li>
		<li>用剪刀将切口向上延伸至剑突，注意仅切开皮肤层。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>当腹壁肌肉层显露并覆盖内脏时，用镊子夹住肌肉正中线，使用锐利剪刀非常小心地在肌肉层上做一小切口。务必避免意外损伤腹腔器官。</li>
	<li>在肌肉层上做一小切口进入腹膜腔，观察到肌肉层与腹腔器官分离后，将剪刀插入切口，小心向上下方向延伸切口。切口应从上方的剑突延伸至下方膀胱以上。（图2）</li>
	<li>暴露肠管后，找到盲肠并轻柔地将其外置。避免使用带齿或锐利的镊子夹持盲肠，建议使用无创镊，如Adson锯齿镊。</li>
	<li>用砂纸摩擦盲肠。
	<ol>
		<li>用100目砂纸轻柔摩擦盲肠两侧表面30–60秒，直至表面光泽消失并出现点状出血。若术者为右利手，可将盲肠尖端朝右摆放，并将其搭在术者左手食指上，有助于操作。（图3）</li>
		<li>摩擦操作应轻柔，因盲肠壁较薄，易发生穿孔。摩擦时应能感受到轻微的粗糙感。若砂纸反复卡住组织，可能造成盲肠壁撕裂。需密切观察，防止砂纸颗粒脱落并残留在腹腔内，以免引发过度异物反应。</li>
		<li>若发生盲肠壁撕裂，应立即终止手术并对动物实施安乐死。</li>
		<li>若砂纸摩擦导致盲肠血管断裂出血，可用纱布压迫止血最多两分钟。若仍持续出血，则在出血点处使用7-0单股缝线做“8”字缝合，此方法几乎总能有效止血。缝合时注意避免缝入过多盲肠壁组织，以防造成局部壁组织坏死。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>损伤右侧腹壁。
	<ol>
		<li>用砂纸摩擦右侧腹壁肌肉的腹膜面。此处摩擦力度可比盲肠更强，持续摩擦直至整个右侧腹壁表面呈现粗糙状态。注意避免过度摩擦导致肌层出现破口而显露皮下组织。（图4）</li>
		<li>使用Castro-Viejo持针器，在右侧腹壁肌肉层内缝入2至4针4-0丝线“8”字缝合，线尾保留约5 mm。缝合时注意避免误缝入肠壁。（图5）</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用装有预热生理盐水的10 ml注射器多次冲洗肠管。将盐水直接冲入腹腔，以充分冲洗内部。若小鼠下方接触面被浸湿，应及时移动小鼠或更换接触面，以防低体温。</li>
	<li>用无菌纱布覆盖切口，吸除多余灌洗液。</li>
	<li>取少量淀粉，均匀撒在右侧腹壁表面及盲肠两侧。（图6）</li>
	<li>确认无活动性出血。若有出血，用纱布直接压迫出血点直至止血。若压迫后仍无法止血，按前述方法放置止血缝线。</li>
	<li>用镊子钝端和手指轻柔地将肠管推回腹腔。将盲肠置于右侧腹壁缝线旁，以最大程度促进粘连形成。</li>
	<li>关闭腹部切口。
	<ol>
		<li>使用6-0可吸收编织缝线，在切口顶端肌肉层做连续缝合。</li>
		<li>沿切口向下连续缝合，闭合肌肉层。每次进针间隔约3 mm，每针缝合深度为3 mm。缝合时注意避免误缝入肠管。</li>
		<li>在切口底部，保留上一针的线环，用于器械打结。剪线时留出5 mm线尾。</li>
		<li>重复上述三步，使用6-0尼龙单股缝线缝合皮肤。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>皮下注射20 ml/kg生理盐水（约30 g小鼠注射0.5 ml）。</li>
	<li>用干纱布彻底擦干整个动物体表，因灌洗过程中背部毛发容易被打湿。</li>
	<li>用粘性敷料松散包裹腹部，覆盖切口。注意不要束缚动物四肢或影响其呼吸运动。</li>
	<li>密切监测动物从麻醉中恢复的过程。&#160;术后2–3天内每12小时给予一次丁丙诺啡，以控制疼痛。</li>
</ol>
2. 收集粘附组织
<ol>
	<li>初次手术后至少等待七天。再次对手术器械进行高压灭菌，并使用异氟烷对小鼠进行麻醉。</li>
	<li>用聚维酮碘对腹部进行消毒，随后使用70%乙醇。剃除腹部右侧额外的毛发，以确保包含皮肤的粘连样本不被毛发覆盖，从而避免增加组织学制备的难度。</li>
	<li>采用左侧旁正中切口，因为肠管常与原切口处粘连。从腹部下端开始，在原切口底部左侧约5 mm处，用有齿小镊夹住皮肤，以锐性剪刀切开皮肤。将切口向上延伸至肋缘。图7)</li>
	<li>使用剪刀切开肌层，进入腹膜腔后，将切口向上下方向延伸。可见粘连组织导致盲肠和小肠与腹腔右侧壁粘连，可能还与原切口部位粘连。图8)</li>
	<li>使用剪刀，从切口边缘开始，在盲肠水平以上，围绕肠管粘连区域，沿环形方向剪开腹壁。</li>
	<li>在盲肠水平上下交替，逐渐环绕切断粘连组织，完成环形切开，得到一个 &#34;岛&#34; 肠管与腹壁及皮肤粘连。图9)</li>
	<li>再次使用剪刀剪开肠管，将粘连部分与其余肠管分离，从而获得一个组织“三明治”结构：一侧为皮肤和腹壁，另一侧为肠管，中间由粘连组织连接。图10)</li>
	<li>可选地，使用尖头剪刀将皮肤与腹壁肌肉彻底分离。若用于组织学分析，可考虑保留皮肤；若用于消化和细胞分离，则可去除皮肤。如果组织将用于组织学分析，应尽可能去除缝合材料，同时避免过度干扰黏附界面。对于消化和细胞分离，只要后续对组织消化液进行过滤，允许保留缝合线。</li>
	<li>切除粘连组织后，采用经机构动物使用委员会批准的人道方法处死小鼠。&#160;</li>
</ol>

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<li>Rajab, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+model+for+the+induction+of+experimental+adhesions%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Surg%22%5BJournal%5D)">An improved model for the induction of experimental adhesions.</a> J Invest Surg. 23 (1), 35-39 (2010).</li>
</ol>

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

该操作中的关键步骤包括：充分摩擦盲肠但避免穿孔、在腹壁侧放置缝线，以及使用适量的淀粉。仅对盲肠或肠管的特定小范围区域使用砂纸。在大段小肠上广泛使用砂纸容易导致明显的肠麻痹。摩擦盲肠时需施加足够力度，使表面变得粗糙，但又不能过度摩擦导致肠壁撕裂。掌握这一平衡可能需要一定练习。操作肠道时务必轻柔，避免使用尖锐或带齿的镊子夹持肠管。使用镊子夹住小肠系膜或过度牵拉肠管均容易意外引起出血。
如果盲肠壁发生撕裂，应终止操作并对动物实施安乐死。根据我们的经验，即使对撕裂部位进行了良好修复，盲肠撕裂仍会导致动物在数天后死亡。此外，盲肠壁撕裂会引起粪便溢出，从而以不可预测的方式影响炎症反应。
手术结束时必须彻底止血。部分出血血管可能在看似已停止出血后再次开放并重新出血。若有疑问，应在出血点周围放置可吸收单丝缝线行“8”字缝合。这种缝线相较于丝线或编织可吸收缝线更优，因其穿过组织时阻力最小。然而我们发现，在腹侧壁诱导粘连时，丝线或编织可吸收缝线效果更佳，因为单丝缝线的炎症反应较轻。
在操作结...

腹腔粘连是一种在腹腔内形成的瘢痕组织，通常在手术或腹腔内感染引发炎症后产生。腹腔粘连是导致慢性腹痛和不孕症的主要原因，也是小肠梗阻最常见的病因1。腹腔粘连的存在会使再次进行腹部手术更加困难，并增加并发症发生的风险2。
尽管经过多年的研究，粘连形成的机制仍不甚清楚。已知腹膜表面的初始损伤会导致富含纤维蛋白的液体渗出，随后形成血凝块，将肠管表面与腹壁粘连在一起3。随后，成纤维细胞及其他细胞迁入粘连区域并分泌结缔组织4。在数月到数年的时间内，粘连通过形成血管和神经而逐渐成熟5。
目前已有多种商用产品旨在减少腹部手术后粘连的形成（例如，Seprafilm）。所有这些产品均作为机械屏障，通过阻止肠管与腹壁之间的物理接触，从而抑制粘连形成。6,7尽管有对照试验证据表明，手术防粘连屏障可减少粘连的形成8许多外科医生凭经验发现机械屏障产品的有效性令人失望。
目前尚无基于药物的抗粘连疗法，这反映出人们对粘连形成所涉及的精确过程仍缺乏深入了解。要开发出特异性靶向参与粘连形成过程中的细胞或分子因子的治疗手段，必须首先更深入地理解粘连形成过程中所涉及的各类事件。已有多个研究团队鉴定出可能在粘连形成中起重要作用的分子通路9-11。动物模型为研究粘连的形成提供了理想的环境。已有大量研究报道了在多种动物（尤其是大鼠和小鼠）中通过外科手术诱导粘连的方法6,12-14。鉴于我们在小鼠纤维化研究方面的经验，以及转基因小鼠和小鼠源性抗体的广泛可及性，我们选择小鼠作为研究粘连的模型动物。本文中，我们报道了为在小鼠体内可重复且可靠地诱导腹腔粘连而建立的实验技术。

<table><tbody><tr><td>费舍品牌吸水垫，20&quot; x 24&quot;</td><td>费舍科学公司</td><td>14-206-62</td><td></td></tr><tr><td>带衬里无菌手术巾，18&quot; x 24&quot;</td><td>布塞医院一次性用品公司</td><td>696</td><td>裁剪出适当尺寸的矩形孔</td></tr><tr><td>异氟烷麻醉剂（Isothesia isoflurane）</td><td>亨利·谢恩公司&amp;nbsp;</td><td>050033</td><td></td></tr><tr><td>费舍品牌无菌棉纱垫，4&quot; x 4&quot;</td><td>费舍科学公司</td><td>22-415-469</td><td></td></tr><tr><td>普拉露眼用凡士林软膏，1/8盎司管装</td><td>德克拉兽用产品公司</td><td>NDC 17033-211-38</td><td></td></tr><tr><td>Nair脱毛膏</td><td>Church &amp;amp; Dwight 公司</td><td>22339-05</td><td></td></tr><tr><td>布托啡诺（Buprenex buprenorphine&amp;nbsp;）0.3 mg/ml</td><td>利洁时本克塞尔制药公司</td><td>NDC 12496-0757-5</td><td></td></tr><tr><td>1 cc 胰岛素注射器，27&amp;nbsp;G</td><td>贝克顿·迪金森公司</td><td>329412</td><td></td></tr><tr><td>聚维酮碘消毒液</td><td>麦德林公司</td><td>MDS093944H</td><td></td></tr><tr><td>Webcol 酒精消毒棉片</td><td>柯惠医疗公司</td><td>6818</td><td></td></tr><tr><td>通用实验室标签胶带</td><td>VWR公司</td><td>89097-912</td><td></td></tr><tr><td>BioGel PI 外科手套</td><td>M&amp;ouml;lnlycke 医疗保健公司</td><td>ALA42675Z</td><td></td></tr><tr><td>带齿微型镊子</td><td>Roboz公司</td><td>RS-5150</td><td></td></tr><tr><td>精细剪刀—锋利型</td><td>精细科学工具公司</td><td>14060-09</td><td></td></tr><tr><td>直齿镊</td><td>精细科学工具公司</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>Castro-Viejo 持针器</td><td>精细科学工具公司</td><td>12565-14</td><td></td></tr><tr><td>100目 1/4张砂纸</td><td>ACE五金公司</td><td>1010446</td><td>裁成条状</td></tr><tr><td>4-0 丝线缝合线，30&quot;，SH针</td><td>爱惜康公司</td><td>K831</td><td></td></tr><tr><td>7-0 PDS II 可吸收单股缝合线，30&quot;，BV-1针</td><td>爱惜康公司</td><td>Z135</td><td>通常为双针配置。在中间位置剪断缝线，可得到两条可用缝线。</td></tr><tr><td>大米淀粉</td><td>MP生物医学公司</td><td>102955</td><td></td></tr><tr><td>0.9% 氯化钠冲洗液</td><td>百特公司</td><td>BHL2F7121</td><td>使用前预热至 37 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>10 ml 注射器</td><td>贝克顿·迪金森公司</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Vicryl 可吸收编织缝合线，18&quot;，RB-1 圆锥形针</td><td>爱惜康公司</td><td>J212H</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Ethilon 尼龙单股&amp;nbsp;缝合线，18&quot;，P-3针&amp;nbsp;</td><td>爱惜康公司</td><td>1698G</td><td></td></tr><tr><td>3M Tegaderm 透明薄膜敷料（框架式），6 cm x 7 cm</td><td>3M公司</td><td>1624W</td><td>沿长度方向对半裁剪</td></tr></tbody></table>

小鼠腹腔粘连模型的建立

Creation of Abdominal Adhesions in Mice

腹腔粘连是由纤维组织构成的，通常在腹膜腔内因炎症刺激（如手术或腹腔内感染）而形成。目前对粘连形成的精确机制尚不完全清楚。已有多种化合物和物理屏障被用于预防术后粘连，其效果各不相同。小鼠和大鼠是研究腹腔粘连的重要动物模型。文献中已报道了多种在小鼠和大鼠中诱导粘连形成的技术。本文描述了一种通过砂纸摩擦盲肠并在右侧腹壁腹膜上缝合缝线来诱导粘连的实验方案。首先对小鼠实施麻醉并进行腹部消毒准备，然后沿腹中线做剖腹切口，暴露并识别盲肠。用砂纸轻轻摩擦盲肠表面造成损伤，随后在右侧腹壁的腹膜上放置数个“8”字缝合线。之后用生理盐水冲洗腹腔，撒入少量淀粉，最后关闭切口。我们发现，该技术能够产生最稳定的粘连，且动物死亡率最低。

术后7天，盲肠以及可能的升结肠、肝脏和小肠袢应与右侧腹壁粘连。（图8）切除的组织可进行包埋和切片，可获得优良的组织学切片。（图11、12）
若操作正确，小鼠在术后7天时应有100%出现显著粘连，死亡率应低于5%。
<img alt="啮齿类动物手术麻醉装置；a) 动物固定；b) 切口准备。" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 1"> 
图 1：手术准备。 (a) 动物已用胶带固定，腹部已用碘伏消毒。 ...

术后形成的腹部粘连是导致疼痛、不孕以及因小肠梗阻而需要住院和再次手术的主要原因。我们建立小鼠腹部粘连的手术方法是一种可靠的研究粘连形成机制的工具。

腹腔粘连是由纤维组织构成的，这些组织在腹膜腔内形成，通常是由于炎症刺激（通常是手术或……）引起的反应

本实验的总体目标是在尽量降低死亡率的同时，稳定地在小鼠体内诱导腹腔粘连。该方法有助于回答腹腔粘连研究领域中的关键问题，例如哪些细胞、大分子、信号通路和细胞因子参与了粘连的形成。该技术的主要优势在于，小鼠的粘连形成率可达100%，且在正确操作的情况下死亡率极低。通常，初次进行该操作的人员在使用砂纸以及涂抹适量淀粉时，难以掌握合适的力度。该技术的视觉演示至关重要，因为用力过大会导致盲肠穿孔，而用力不足则可能无法形成粘连。手术当天，使用毛发修剪器修剪麻醉动物腹部的毛发。然后将动物转移至加热装置，并用胶带固定四肢。接着用聚维酮碘对腹部进行消毒，随后使用70%乙醇，注意包括剃毛区域边缘的毛发。在小鼠身上覆盖无菌手术巾。然后用镊子夹住下腹部皮肤，做一个浅的纵向切口。继续向上切至剑突。接着在腹壁中线处夹住腹肌，用锐利的剪刀小心地做一小切口，注意避免损伤内脏器官。当腹腔器官可见时，将剪刀插入切口，并小心地向两侧剪开，使切口从剑突延伸至膀胱上方。暴露肠管后，找到盲肠，用无创镊子轻轻将组织牵出体外。调整盲肠方向，使其尖端朝向操作者惯用手一侧，并将盲肠搭在非惯用手的食指上。使用100目砂纸，轻轻摩擦外露肠段两面的整个表面，持续30至60秒。当砂纸沿盲肠表面移动时，应能感觉到轻微的粗糙感。若在摩擦过程中损伤盲肠血管导致出血，可将纱布轻压于出血部位，持续最多两分钟。如果两分钟后出血仍持续，用一根870单丝缝线在血管周围打“8”字缝合。当盲肠表面光泽减退并出现瘀点时，使用新的砂纸条摩擦右侧腹壁肌肉的腹膜表面，直至侧壁整个表面变得粗糙。然后使用Castroviejo持针器在右侧腹壁肌肉层内缝合两到四针40号丝线“8”字缝合，线尾留出数毫米长。使用10毫升温热生理盐水注射器多次冲洗肠道和腹腔。若小鼠下方区域被浸湿，应立即将小鼠转移至干燥表面，以避免低体温。当肠道充分冲洗后，用无菌纱布覆盖切口以吸收多余生理盐水。然后将盲肠置于右侧腹壁切口缝线旁。使用纱布对任何活动性出血点施加压力止血。随后在右侧腹壁表面和盲肠表面撒上少量大米淀粉。关闭腹腔时，使用60号可吸收编织缝线，在切口顶端的肌层进行连续缝合。将缝线沿切口向下延伸，每一针缝合三乘三毫米的肌层组织。在切口底部，保留上一针缝线的线环，用于器械打结，然后剪断缝线，留出五毫米的线尾。使用60号尼龙单丝缝线以相同方式缝合皮肤。然后皮下注射20毫升/千克的生理盐水，并用干净的纱布彻底擦干动物全身。最后，将粘性敷料松散地缠绕在切口周围，注意不要限制动物的四肢或呼吸运动，并持续监测小鼠直至其完全恢复。术后7天，盲肠以及可能的升结肠、肝脏和小肠袢应已与右侧腹壁粘连。对切除的腹腔组织进行包埋和切片，可获得高质量的切片，适用于组织学和免疫组织化学分析。一旦掌握该操作，整个过程可在30分钟内完成。采用此方法后，还可使用定量 PCR 和玻璃纤维培养等其他方法来研究

Research

科研

JoVE Journal

Medicine

医学

小鼠腹腔粘连的创建

本视频展示了如何通过将猪胰弹性蛋白酶短暂灌注至小鼠腹主动脉肾下段管腔内，从而在小鼠体内诱导腹主动脉瘤（AAA）。由于存在大量转基因和基因敲除小鼠，该模型能够为AAA的病理生物学机制提供广泛深入的见解。...

利用弹性蛋白酶建立小鼠实验性腹主动脉瘤模型

胆汁流的中断会导致严重的炎症性胆汁淤积性肝损伤，并伴随特征性的时间依赖性形态学改变序列。本文介绍了一种在小鼠中进行总胆管结扎的手术方案，可在21至28天后诱导出显著的纤维化反应。...

小鼠胆管结扎术：通过阻塞性胆汁淤积诱导炎症性肝损伤及纤维化

本文介绍了部分胆管结扎术，作为一种用于啮齿类动物肝脏损伤与再生研究的外科模型。...

小鼠部分胆管结扎：一种局部梗阻性胆汁淤积的可控模型

术后吻合口漏或吻合失败是导致术后发病率和死亡率升高的主要原因。我们建立结肠吻合的手术方法是一种可靠且可重复的研究吻合口愈合机制的方法。...

小鼠结肠吻合术的建立

我们描述了一种通过肠道操作建立的小鼠术后肠梗阻模型。在手术后24小时评估了胃肠道传输功能、病理变化以及免疫细胞的活化情况。...

术后肠梗阻小鼠模型

本论文介绍了一种利用氯化钙和弹性蛋白酶建立小鼠腹主动脉瘤模型的实验方案，该方法结合了既往建模技术的优点。此模型可用于研究腹主动脉瘤发生的病理生理机制。...

通过腹膜外氯化钙与弹性蛋白酶渗透建立的小鼠腹主动脉瘤模型

本方案介绍了一种系统性的手术方法，通过将弹性蛋白酶直接作用于肾下主动脉并经饮水给予ß-氨基丙腈，从而在小鼠体内建立晚期腹主动脉瘤模型。...

通过局部弹性蛋白酶联合口服β-氨基丙腈在小鼠中建立高级腹主动脉瘤模型

宫腔粘连（IUAs）是子宫内膜损伤最常见的病理后果，严重损害生殖功能。创伤和感染被广泛认为是宫腔粘连形成的关键危险因素。我们通过结合两种关键的损伤方法——机械性刮宫和脂多糖诱导感染，成功建立了一种可重复的大鼠宫腔粘连模型。...

通过双重损伤建立大鼠宫腔粘连模型：刮宫与感染

本研究介绍了一种用于小鼠的腹部按摩装置，该装置可模拟人工按摩，同时最大限度地减少应激反应和组织损伤。该装置显著降低了2型糖尿病小鼠的血糖水平，改善了脂质代谢，并增强了胰岛素敏感性，提供了一种具有临床潜力的、有前景的非侵入性治疗策略。...

T2DM小鼠腹部按摩的固定与操作方法

本方案描述了一种利用进行开腹手术并接受肠切除的尤卡坦小型猪建立的术后腹腔内粘连形成的猪模型。该方法可稳定诱导腹腔内粘连，为研究粘连的形成过程以及评估抗粘连策略提供了一个有效平台。...

一种用于术后腹腔粘连形成的可转化外科猪模型

本方案提供了一种可重复且可靠的方法，通过弹性蛋白致敏联合血管周围应用弹性蛋白酶，在C57BL/6小鼠中诱导腹主动脉瘤（AAAs），建立包含免疫致敏成分的腹主动脉瘤模型。...

利用弹性蛋白致敏与血管周围弹性蛋白酶法可靠建立小鼠腹主动脉瘤模型

学习在小鼠中创建腹腔粘连的外科手术方法，使用砂纸和淀粉诱导创伤形成。该技术可100%形成粘连且死亡率极低，适用于研究粘连形成的细胞和分子机制。

小鼠腹腔粘连模型的建立

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