Name: 胰腺管输液:药物和病毒输送的有效和选择性方法 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-09-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: 了解胰腺管输液技术，实现小鼠胰腺细胞的谱系追踪、基因导入和特异性靶向。该方法为研究慢性胰腺炎、糖尿病和胰腺癌等疾病提供了有效的实验手段。

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作者无致谢。本研究获得浙江省卫生和计划生育委员会基金（项目编号 20146242）和温州市科学技术局基金（项目编号 Y20140248）的资助。

所有动物实验均经匹兹堡儿童医院动物研究与护理委员会以及匹兹堡大学机构动物护理和使用委员会批准。
1. 术前准备
<ol>
	<li>通过鼻罩给予异氟烷吸入麻醉（维持浓度为1 - 3%，诱导时最高可达5%），直至达到适当的麻醉深度。使用镊子夹捏脚趾以监测麻醉效果；若无反应则视为麻醉充分，注意避免用药过量，以防发生呼吸抑制。</li>
	<li>将动物仰卧位放置在解剖显微镜载物台上，使腹部位于物镜视野中央。使用手术胶带固定动物。在动物眼睛上涂抹眼用软膏，以防止麻醉期间角膜干燥。</li>
	<li>在腹部均匀涂抹一层厚实的脱毛膏，保持3分钟。检查一小块区域以确认脱毛效果。用浸有70%乙醇的纱布轻轻擦去脱毛膏及毛发。</li>
	<li>先用浸有70%乙醇的纱布擦拭动物腹部，再用浸有聚维酮碘（betadine）的纱布擦拭，以清洁并消毒皮肤。整个手术过程中应保持无菌条件。</li>
</ol>
2. 正确曝光
<ol>
	<li>使用手术刀从剑突至脐部沿中线切开皮肤。用有齿镊提起腹膜，用剪刀在中线处剪一个小孔。</li>
	<li>将腹膜切口沿中线（白线）延长至与皮肤切口等长。 
	注意：此操作可完成上腹部正中剖腹术。</li>
	<li>用钝性拉钩抬起肝脏，暴露胆总管。用弯型动脉瘤夹夹闭胆总管。 
	注意：此操作可防止液体灌注至肝脏。</li>
</ol>
3. 胰管乳头和十二指肠切开术的识别
<ol>
	<li>辨认十二指肠，并使用Arruga镊向尾侧牵拉，以显露乳头。 
	注意：乳头位于十二指肠第二段前表面的一个白色斑点处。</li>
	<li>向尾侧牵拉十二指肠，以便识别胰管的走行。使用30½号针头，在乳头正对侧，沿切线方向穿刺十二指肠壁。 
	注意：针头应与胰管进入十二指肠时的角度保持一致。</li>
</ol>
4. 灌注。
<ol>
	<li>将导管通过第3.2步创建的十二指肠切口送入，直至在导管内可见胆管。将导管推进胆管内不超过1 cm，以防止绕过较小的导管分支。</li>
	<li>用第二把弯型血管夹固定导管位置。打开泵并注入选定体积的液体。注入体积可在25 - 250 µL之间，理想体积约为150 µL。</li>
	<li>给予约1.5 mL生理盐水的腹腔注射以补偿体液丢失。用湿润纱布覆盖暴露的肠段，防止干燥。</li>
	<li>输注结束后，移除固定导管的血管夹。使用血管夹轻轻将导管从胰管中取出。松开胆总管上的夹子。</li>
	<li>使用连续缝合线单层或双层缝合腹膜和皮肤。 
	注意：无需缝合十二指肠切口，因其可自行闭合。</li>
	<li>作为术后镇痛，在手术期间和术后第一天各给予一次剂量为5 mg/kg的酮芬注射。</li>
	<li>将小鼠放回笼中，并置于加热灯下直至其恢复意识。自由提供食物和饮水。</li>
	<li>在动物恢复足够意识以维持胸卧位之前，不得让其无人看管。接受手术的动物在完全恢复前不得与其他动物同笼饲养。</li>
</ol>
5. 样品制备
<ol>
	<li>将动物置于二氧化碳室中处死，或采用颈椎脱臼法处死。</li>
	<li>取胰腺，并以脾脏、肝脏和十二指肠作为对照。将组织在4 °C条件下用多聚甲醛固定过夜。按照先前描述的方法6，用30%蔗糖在4 °C过夜进行冷冻保护。</li>
	<li>快速冷冻样品。使用切片机将组织切成6 µm厚度的切片。按照先前描述的方法7，在荧光显微镜下进行成像。</li>
</ol>

<ol><li>Gittes, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+biology+of+the+pancreas%3A+a+comprehensive+review%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Developmental biology of the pancreas: a comprehensive review.</a> Dev Biol. 326 (1), 4-35 (2009).</li>
<li>Gu, G., Dubauskaite, J., Melton, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+evidence+for+the+pancreatic+lineage%3A+NGN3%2B+cells+are+islet+progenitors+and+are+distinct+from+duct+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Direct evidence for the pancreatic lineage: NGN3+ cells are islet progenitors and are distinct from duct progenitors.</a> Development. 129 (10), 2447-2457 (2002).</li>
<li>Weinberg, N., Ouziel-Yahalom, L., Knoller, S., Efrat, S., Dor, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lineage+tracing+evidence+for+in+vitro+dedifferentiation+but+rare+proliferation+of+mouse+pancreatic+beta-cells%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Lineage tracing evidence for in vitro dedifferentiation but rare proliferation of mouse pancreatic beta-cells.</a> Diabetes. 56 (5), 1299-1304 (2007).</li>
<li>Raper, S. E., DeMatteo, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus-mediated+in+vivo+gene+transfer+and+expression+in+normal+rat+pancreas%5BTitle%5D)+AND+%22Pancreas%22%5BJournal%5D)">Adenovirus-mediated in vivo gene transfer and expression in normal rat pancreas.</a> Pancreas. 12 (4), 401-410 (1996).</li>
<li>Xiao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+cell+tracing%2C+lineage+tagging+and+targeted+genetic+manipulations+in+multiple+cell+types+using+pancreatic+ductal+infusion+of+adeno-associated+viral+vectors+and%2For+cell-tagging+dyes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Pancreatic cell tracing, lineage tagging and targeted genetic manipulations in multiple cell types using pancreatic ductal infusion of adeno-associated viral vectors and/or cell-tagging dyes.</a> Nat Protoc. 9 (12), 2719-2724 (2014).</li>
<li>Song, Z., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27587395">EGFR signaling regulates beta cell proliferation in adult mice.</a> J Biol Chem. 291 (43), (2016).</li>
<li>Xiao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((M2+macrophages+promote+beta-cell+proliferation+by+up-regulation+of+SMAD7%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">M2 macrophages promote beta-cell proliferation by up-regulation of SMAD7.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (13), E1211-E1220 (2014).</li>
<li>Laukkarinen, J. M., Van Acker, G. J., Weiss, E. R., Steer, M. L., Perides, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mouse+model+of+acute+biliary+pancreatitis+induced+by+retrograde+pancreatic+duct+infusion+of+Na-taurocholate%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">A mouse model of acute biliary pancreatitis induced by retrograde pancreatic duct infusion of Na-taurocholate.</a> Gut. 56 (11), 1590-1598 (2007).</li>
<li>Lichtenstein, A., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10834702">Acute lung injury in two experimental models of acute pancreatitis: infusion of saline or sodium taurocholate into the pancreatic duct.</a> Crit Care Med. 28 (5), 1497-1502 (2000).</li>
<li>Perides, G., van Acker, G. J., Laukkarinen, J. M., Steer, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+acute+biliary+pancreatitis+induced+by+retrograde+infusion+of+bile+acids+into+the+mouse+pancreatic+duct%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Experimental acute biliary pancreatitis induced by retrograde infusion of bile acids into the mouse pancreatic duct.</a> Nat Protoc. 5 (2), 335-341 (2010).</li>
<li>Guo, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+transduction+and+labeling+of+pancreatic+ducts+by+targeted+recombinant+viral+infusion+into+mouse+pancreatic+ducts%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Invest%22%5BJournal%5D)">Specific transduction and labeling of pancreatic ducts by targeted recombinant viral infusion into mouse pancreatic ducts.</a> Lab Invest. 93 (11), 1241-1253 (2013).</li>
<li>Xiao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurogenin3+activation+is+not+sufficient+to+direct+duct-to-beta+cell+transdifferentiation+in+the+adult+pancreas%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Neurogenin3 activation is not sufficient to direct duct-to-beta cell transdifferentiation in the adult pancreas.</a> J Biol Chem. 288 (35), 25297-25308 (2013).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

本研究详细描述了胰管灌注技术的方法学，这是一种可将基因及其他分子特异性且高效地递送至胰腺的有效小鼠模型。不同研究团队在操作细节上的不一致凸显了建立标准化操作流程的必要性8,9,10。
该操作有几个关键步骤，首先需要选择年轻且健康的小鼠。十二指肠的穿孔即使微小且可控，对小鼠而言仍是一种创伤性事件，不可避免地会引发炎症性细胞因子及其他尚未完全明确的因素的募集。因此，精细的解剖操作至关重要，同时应尽可能制造最小的十二指肠切口以插入导管。整个操作中最关键的步骤是通过递送系统对胰管进行插管。
过度破坏胰腺乳头可能导致强烈的全身炎症反应，从而引发困难。胰腺是一个精细的器官；在外科领域，人们通俗地将其描述为一个不应&#34;随意处理&#34;的器官。操作成功率仅随操作者技能水平略有差异。只要胆管被正确阻塞，灌注将完全特异性地局限于胰腺本身。
<p ...

胰腺是一个具有内分泌和外分泌双重功能的器官。多种病理状况可影响胰腺，包括糖尿病、胰腺炎和胰腺癌1。这三种疾病均为当前活跃的研究领域，不仅旨在开发即时治疗方法，也致力于更深入地理解其病理生理机制。
靶向治疗递送方法将具有显著优势。我们已开发出一种胰管灌注技术，可有效且选择性地向胰腺细胞递送药物和病毒。在此模型中，选择性地插管胰管并阻断胆总管，从而实现仅向胰腺进行递送。
该技术可用于特定细胞类型的谱系示踪，从而进一步阐明胰腺发育及病理过程中重要的发育通路2,3。病毒载体中的不同启动子可实现对特定细胞系的靶向，并将基因导入这些细胞系4,5。本研究展示了在通过胰管灌注表达绿色荧光蛋白（GFP）的病毒载体后，胰腺内GFP的表达情况，并与假手术组进行对比。

<table><tbody><tr><td>小鼠（25 - 30 g，8 - 12 周龄）</td><td>杰克逊实验室</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ketofen</td><td>Henry Schein 公司</td><td>5487</td><td></td></tr><tr><td>乙醇（70%）</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>34923</td><td></td></tr><tr><td>无菌生理盐水溶液</td><td>Baxter Healthcare Corp.</td><td>2B-13-00</td><td></td></tr><tr><td>防护装备</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>脱毛产品</td><td></td><td></td><td>剃须或修剪器</td></tr><tr><td>2英寸 x 2英寸纱布垫</td><td>Fisher Healthcare</td><td>22-362-178</td><td></td></tr><tr><td>针头（30.5G 和 25G）</td><td>Becton Dickinson and Co.</td><td>305106 和 305122</td><td></td></tr><tr><td>用于 Ketofen 和生理盐水的注射器</td><td>Becton Dickinson 公司</td><td>309657</td><td></td></tr><tr><td>用于泵的注射器</td><td>Henke Sass Wolf</td><td>4010.200V0</td><td></td></tr><tr><td>输液泵</td><td>Pump Systems Inc.</td><td>NE-1000</td><td></td></tr><tr><td>输注导管</td><td>世界精密仪器公司</td><td>CMF31G</td><td></td></tr><tr><td>弯头 bulldog 钳（2 个）</td><td>Roboz</td><td>RS-7439</td><td></td></tr><tr><td>阿鲁加镊</td><td>Roboz</td><td>RS-5163</td><td></td></tr><tr><td>Adson 镊子</td><td>Roboz</td><td>RS-5234</td><td></td></tr><tr><td>持针器</td><td>Roboz</td><td>RS-7882</td><td></td></tr><tr><td>剪刀</td><td>Roboz</td><td>RS-5982</td><td></td></tr><tr><td>棉签</td><td>医师销售与服务</td><td>22-9988</td><td></td></tr><tr><td>体视显微镜</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>缝合</td><td>欧文斯与迈诺尔</td><td>SXMD1B402</td><td></td></tr></tbody></table>

胰管灌注：一种高效且靶向的药物与病毒递送方法

Pancreatic Duct Infusion: An Effective and Selective Method of Drug and Viral Delivery

胰腺是一个具有内分泌和外分泌双重功能的器官。多种病理状况可影响胰腺，包括糖尿病、胰腺炎和胰腺癌。这三种疾病均为当前活跃的研究领域，不仅旨在开发即时治疗方法，也致力于更深入地理解其病理生理机制。目前可用于推进这些研究领域的工具较少。胰管灌注是一种重要的技术，可用于谱系示踪、基因导入以及细胞系特异性靶向。该技术需要精细地解剖十二指肠第二段及壶腹部，随后阻断胆管并对胰管进行插管。尽管该技术在初期操作上具有较高难度，但其应用前景广泛。不同研究团队在操作细节上的差异凸显了建立标准化操作流程的必要性。本研究描述了在通过胰管灌注表达绿色荧光蛋白（GFP）的病毒载体或进行假手术后，胰腺内GFP的表达情况。灌注所导致的基因表达特异性局限于胰腺组织，其他任何组织类型中均无表达。

通过练习和精细的手术技术，这些小鼠的存活率应高于95%。输注后一周，胰腺中应可观察到预期效果。实验选用10至12周龄的小鼠进行胰管输注。本实验中，我们使用带有CMV启动子的腺相关病毒8型（AAV8）来表达绿色荧光蛋白（GFP），并与假手术组进行对比。输注后7天处死小鼠并取其胰腺组织。胰腺、脾脏和十二指肠组织切片使用胰岛素抗体和Hoescht染色。图1显示，在接受AAV8胰管输注的小鼠中，胰腺内广泛表达GFP，而假手术组小鼠则无此现象。这些小鼠的肝脏、脾脏和十二指肠中均未检测到GFP表达，表明该输注具有选择性。这些结果可通过多种其他方法进一步验证，包括DNA和RNA表达谱分析。
<img alt="荧光显微镜图像；蛋白质定位；比较；细胞结构分析。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55332/55332fig1.jpg" data-altupdate...

胰管灌注是一种重要的技术，可用于谱系示踪、基因导入以及细胞系特异性靶向。本文介绍了一种向胰腺细胞递送药物和病毒的胰管灌注技术。

胰腺是一个具有内分泌和外分泌双重功能的器官。多种病理状况可影响胰腺，包括糖尿病、……

该胰管灌注实验的整体目标是实现对胰腺的谱系示踪、基因导入以及细胞系特异性靶向。该方法有助于解答有关胰腺疾病的关键问题，包括慢性胰腺炎、糖尿病和胰腺癌。首先，将麻醉后的小鼠置于解剖显微镜下，使其腹部位于视野中央。使用手术胶带固定动物，然后在其眼睛上涂抹眼膏，以防止眼睛干涩。接着，在小鼠腹部覆盖一层厚厚的脱毛膏。约三分钟后，用浸有70%乙醇的纱布轻轻擦拭，以彻底清除所有毛发。最后，用70%乙醇擦拭皮肤，随后使用10%聚维酮碘溶液，以去除任何污染物并消毒皮肤。开始手术时，使用手术刀从剑突延伸至脐部做一正中皮肤切口。然后用Adson镊提起腹膜，并用剪刀在正中线处剪开一个小孔。沿腹膜中线切口延伸，使其长度与皮肤切口相等。接着使用钝性拉钩将肝脏向上牵拉，暴露胆总管后，用弯型血管夹（bulldog clamp）夹闭胆总管。辨认十二指肠，用Arruga钳将其向尾侧牵出，以显露位于十二指肠第二段前表面的乳头，其表现为一白色斑点。为识别胰管，将十二指肠向尾侧牵拉，然后将一支30-1/5号针头与十二指肠呈切线方向放置，并在其肠壁上穿刺，穿刺点应正对乳头。进行灌注时，将连接至灌注泵的导管经所形成的十二指肠切口插入，沿胰管推进，直至导管在胰管内可见，但插入深度不应超过1厘米，以避免越过较小的胰管分支。使用第二把弯型血管夹夹闭导管，以固定其位置。然后启动泵，开始将150微升溶液注入导管。接着，向小鼠腹膜腔注射约1.5毫升生理盐水，以避免灌注液体体积的损失，随后用湿润的纱布覆盖暴露的肠段，防止干燥。灌注完成后，松开固定的导管，并使用动脉夹轻轻将其从胰管中取出。然后松开胆总管上的夹子。用连续缝合法将腹膜和皮肤单层缝合关闭，并给予第一剂镇痛药（第二剂于次日给予）。随后将小鼠放回位于加热灯下的笼子中，并自由提供食物和饮水。观察小鼠直至其意识充分恢复，表现为胸卧位。术后7天，处死动物后切除胰腺，并同时切除脾脏、肝脏和十二指肠作为对照。将分离的全部组织浸入4%多聚甲醛溶液中，于4摄氏度固定过夜。组织固定后，将样品在4°C条件下浸入30%蔗糖溶液中过夜，进行冷冻保护。经过过夜冷冻保护后，将样品在液氮中速冻，并使用切片机将组织切成6 µm厚的切片。最后，在荧光显微镜下观察切片。此处展示的是假手术和经胰管输注携带GFP基因的AAV8后七天，从小鼠体内切除的胰腺组织切片的显微图像。经胰管输注AAV8的小鼠，其肝脏、脾脏和十二指肠均未检测到GFP信号，而胰腺则显示出明显的GFP表达，证实通过胰管输注可实现病毒对胰腺的特异性递送。一旦掌握该技术，操作得当情况下可在10分钟内完成。在进行该操作时，必须仔细解剖，并为导管插入制作尽可能小的十二指肠切口。该技术建立后，为研究胰腺的科研人员提供了研究多种胰腺疾病（包括慢性胰腺炎、糖尿病以及胰腺癌）的途径，适用于啮齿类动物及较大动物模型。观看本视频后，您应能充分掌握如何

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