Name: 在使用肌球蛋白重链免疫鼠肌肉横断面的快速自动化方案为肌纤维人口分析 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-28T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 57 s
Description: 了解使用肌球蛋白重链免疫荧光染色和ImageJ自动分析对大鼠骨骼肌横断面进行肌纤维群体快速定量分析的方法。该技术可准确识别慢速、中间和快速肌纤维类型，显著减少分析时间和用户间差异，适用于研究衰老、疾病或创伤引起的肌肉组成变化。

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本研究由Christian Doppler研究基金会资助。我们感谢奥地利维也纳医科大学影像核心设施的Sabine Rauscher在整个项目过程中提供的支持。一抗由Schiaffino, S.研发，来源于美国国立卫生研究院（NIH）下属国立儿童健康与人类发育研究所（NICHD）创建、现由爱荷华大学生物系（爱荷华城，IA）维护的发育研究杂交瘤库。

所有涉及动物受试者的操作均遵循FELASA推荐的实验室动物护理原则26。在研究开始前，已获得维也纳医科大学伦理审查委员会和奥地利科研部（BMWF：Bundesministerium fuer Wissenschaft und Forschung，编号：BMWF-66.009/0222-WF/II/3b/2014）的批准。
1. 肌肉组织采集
注意：Meng et al.27 之前发表的一项研究详细描述了肌肉样本的正确冷冻方法。
<ol>
	<li>在动物安乐死后立即获取完整的肌肉或足以获得完整横截面的组织。
	<ol>
		<li>从麻醉或已处死的大鼠中取出整个肌肉。使用镊子和剪刀去除肌肉周围的所有结缔组织和肌腱。麻醉或安乐死操作应遵循FELASA的国际指南28。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用校准的精密天平称量肌肉。此快速步骤可实现肌肉样本之间的比较分析，尤其适用于干预性操作后的分析。</li>
	<li>将肌肉放入容器中，根据肌肉大小完全浸没于O.C.T. 包埋剂中，四周预留约1 mm的安全边缘（例如，铝箔制成的容器）。</li>
	<li>将异戊烷预先用液氮冷却约2分钟，然后将肌肉在其中快速冷冻。异戊烷底部应开始出现白色结晶。 
	注意：此步骤对保持肌肉的正确结构至关重要，从而确保后续染色和肌纤维分析的准确性27。</li>
	<li>将保存在O.C.T. 中的样本在-80 °C下至少保存24小时。然而，若冷却条件适当，样本可在-80 °C下保存数月甚至数年。</li>
	<li>使用冷冻切片机在-20 °C下从肌肉中段切取10 µm厚的横切片。若无法实现10 µm切片，可每次增加2 µm厚度，最大不超过20 µm。此步骤必须使用足够锋利的刀片。</li>
	<li>通过将载玻片靠近横切面的方式将切片转移至防脱载玻片上。横切面将自动粘附于载玻片上。染色前需将载玻片在-20 °C下过夜保存。</li>
</ol>
2. 染色
注意：可获得的抗肌球蛋白重链蛋白的抗体种类繁多；然而，高质量的抗体对于自动化的图像采集与分析至关重要。有关抗体的稀释比例及抗体信息，请参见 表1. 有关用于计算正确稀释度并查看所需溶液量的电子表格文件，请参见 <a href="http://cloudfront.jove.com/files/ftp_upload/55441/Calculator_for_muscle_fiber_typing.xlsx">补充文件 1</a>.
<ol>
	<li>在染色前将冷冻肌肉切片解冻并空气干燥 10 分钟。</li>
	<li>用含 0.05% Triton X 的磷酸盐缓冲液（PBS）小心清洗切片，先洗 10 分钟，再洗 5 分钟。Triton 可显著改善染色质量。详见讨论部分。</li>
	<li>让切片空气干燥 2 分钟，并使用疏水笔在每张载玻片上圈出各个横切面（以减少抗体使用量），再额外干燥 15 分钟。</li>
	<li>用含 10% 山羊血清的 PBST（PBS + 0.05% Triton X）在室温下封闭所有载玻片 1 小时。</li>
	<li>将所有一抗（表 1）用含 10% 山羊血清的 PBST（PBS + 0.05% Triton X）配制成混合抗体溶液。使用前充分混匀。Triton X 对实现整个横切面的均匀染色至关重要。每张横切面约需 30 µL 一抗混合液。</li>
	<li>在步骤 2.7–2.13 中，需充分避光。调暗室内灯光并使用加盖的染色盒可提供足够的保护。此外，染色盒底部应加入液体以保持染色过程中的湿润环境，防止切片干燥。</li>
	<li>将一抗混合液（表 1）加入载玻片，在室温下的湿润染色盒中孵育 1 小时。</li>
	<li>用含 0.05% Triton X 的 PBS 洗涤载玻片 10 分钟，再用新鲜 PBST 洗涤 5 分钟。</li>
	<li>将二抗用含 10% 山羊血清的 PBST（PBS + 0.05% Triton X）配制成混合液。每张横切面计算使用 30 µL 二抗混合液。</li>
	<li>将二抗混合液加入载玻片，孵育 1 小时。</li>
	<li>用 PBST（PBS + 0.05% Triton X）洗涤载玻片 10 分钟，再用新鲜 PBST 洗涤 5 分钟。</li>
	<li>加入 DAPI 核染色试剂盒（建议使用即用型溶液）染色 15 分钟，或按照制造商说明操作，以标记细胞核。</li>
	<li>用 PBST（PBS + 0.05% Triton X）短暂洗涤载玻片 1 分钟。随后让载玻片短暂空气干燥。</li>
	<li>加入荧光封片剂并加盖盖玻片。4 °C 避光保存，并在 24–48 小时内完成成像为佳。</li>
</ol>
3. 显微镜观察
<ol>
	<li>将载玻片装入切片扫描仪。根据切片扫描仪的不同，最多可装载12张载玻片。</li>
	<li>创建一个新项目。预览时使用DAPI通道和2.5倍物镜；详细分析时使用DAPI、GFP、FITC和Cy5通道以及20倍物镜。在整个项目中，通过DAPI通道实现自动对焦。</li>
	<li>为每个通道设置如下颜色：DAPI—蓝色，FITC—绿色，Texas Red—红色，Cy5—黄色。</li>
	<li>使用DAPI通道创建每张载玻片的预览图像。为此，对第一个样本进行手动对焦，并在后续预览分析中沿用该对焦设置，以获取所有样本的预览图像。</li>
	<li>勾画出需要进行详细采集的每个横截面区域。勾画时避免靠近样本边缘，以确保完整捕获整个目标区域。</li>
	<li>为每个通道设置曝光时间。大多数情况下，不同通道的曝光参数在所有横截面上保持一致。</li>
	<li>运行自动图像采集。检查前几个视野的采集情况，以便在自动采集过程早期发现并防止错误采集。</li>
	<li>如有需要，可通过桌面镜像软件建立远程控制。该方法可通过任何网络或互联网连接，将切片扫描仪所连接计算机的屏幕镜像至另一台计算机，实现对图像采集过程的远程监控。尽管无法对实际载玻片的物理设置进行更改，但图像采集软件的虚拟环境允许监控图像的对焦是否正确或曝光时间是否合适。此外，可定期查看预计完成时间。</li>
	<li>图像采集完成后，通过手动检查所有图像中肌纤维结构、单个肌纤维及不同类型肌纤维是否可分辨，来确认自动对焦是否正确。</li>
	<li>对对焦不正确的图像区域重新采集，包括单个视野或整个目标区域。如需重新采集局部区域，可在整个项目中标记相应区域或图像，并使用手动对焦重新采集。大多数情况下，额外的图像细节在不同焦平面上会导致图像对焦错误。</li>
	<li>对于拟纳入最终分析的每个横截面，将各通道（不包括DAPI）分别导出为独立的jpeg文件。根据通道命名并分类存储文件，文件夹命名为Texas Red、FITC和Cy5。</li>
</ol>
4. 肌纤维自动分析
注意：该宏可通过以下网页获取：https://www.meduniwien.ac.at/hp/bionicreconstruction/macro/
<ol>
	<li>在分析前使用常规图像编辑软件预览每张图像，并检查染色肌纤维与背景之间的对比度是否足够。如有必要，使用亮度和对比度调整命令调节图像的亮度和对比度，以增强差异。</li>
	<li>打开 ImageJ 或 Fiji。使用“Plugins - Macros - Edit”命令打开宏，这将显示宏的源代码，并允许快速调整参数。如有必要，在宏的源代码中修改每个通道的文件夹目录。 
	注意：肌纤维分析的参数值基于大鼠肱二头肌和蚓状肌，其他物种或肌肉可能需要不同的参数值。</li>
	<li>使用“run”命令启动宏。文件夹中的所有图像将被依次加载到宏中并进行定量分析。结果将在一个新窗口中显示。此步骤所需时间从数秒到数小时不等，具体取决于待分析数据量的大小。</li>
	<li>将结果窗口导出为电子表格文件。识别被正确定量的 Cy5（慢肌）、FITC（中间型）和 Texas Red（快肌）纤维数值，并加总得到总纤维数量。</li>
</ol>

<ol><li>Kung, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motor+Unit+Changes+Seen+With+Skeletal+Muscle+Sarcopenia+in+Oldest+Old+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gerontol+A+Biol+Sci+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">Motor Unit Changes Seen With Skeletal Muscle Sarcopenia in Oldest Old Rats.</a> J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 69 (6), 657-665 (2014).</li>
<li>Greising, S. M., Medina, J. S., Vasdev, A. K., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+muscle+fiber+clustering+in+the+diaphragm+muscle+of+sarcopenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Analysis of muscle fiber clustering in the diaphragm muscle of sarcopenic mice.</a> Muscle Nerve. 52 (1), 76-82 (2015).</li>
<li>Claflin, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+high-+and+low-velocity+resistance+training+on+the+contractile+properties+of+skeletal+muscle+fibers+from+young+and+older+humans%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of high- and low-velocity resistance training on the contractile properties of skeletal muscle fibers from young and older humans.</a> J Appl Physiol. 111 (4), 1021-1030 (2011).</li>
<li>Miller, A. I., Heath, E. M., Dickinson, J. M., Bressel, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+Between+Muscle+Fiber+Type+and+Reactive+Balance%3A+A+Preliminary+Study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mot+Behav%22%5BJournal%5D)">Relationship Between Muscle Fiber Type and Reactive Balance: A Preliminary Study.</a> J Mot Behav. 47 (6), 497-502 (2015).</li>
<li>Song, Y., Forsgren, S., Liu, J. -X., Yu, J. -G., Stål, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unilateral+Muscle+Overuse+Causes+Bilateral+Changes+in+Muscle+Fiber+Composition+and+Vascular+Supply%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Unilateral Muscle Overuse Causes Bilateral Changes in Muscle Fiber Composition and Vascular Supply.</a> PLoS ONE. 9 (12), 116455(2014).</li>
<li>Hopker, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+training+status%2C+age%2C+and+muscle+fiber+type+on+cycling+efficiency+and+endurance+performance%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol+%281985%29%22%5BJournal%5D)">The influence of training status, age, and muscle fiber type on cycling efficiency and endurance performance.</a> J Appl Physiol (1985). 115 (5), 723-729 (2013).</li>
<li>Pette, D., Staron, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myosin+isoforms%2C+muscle+fiber+types%2C+and+transitions%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc+Res+Tech%22%5BJournal%5D)">Myosin isoforms, muscle fiber types, and transitions.</a> Microsc Res Tech. 50 (6), 500-509 (2000).</li>
<li>Suga, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+fiber+type-predominant+promoter+activity+in+lentiviral-mediated+transgenic+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Muscle fiber type-predominant promoter activity in lentiviral-mediated transgenic mouse.</a> PLoS One. 6 (3), 16908(2011).</li>
<li>Wang, J. F., Forst, J., Schroder, S., Schroder, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+of+muscle+fiber+type+measurements+with+clinical+and+molecular+genetic+data+in+Duchenne+muscular+dystrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Neuromuscul+Disord%22%5BJournal%5D)">Correlation of muscle fiber type measurements with clinical and molecular genetic data in Duchenne muscular dystrophy.</a> Neuromuscul Disord. 9 (3), 150-158 (1999).</li>
<li>Rader, E. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+cleft+palate+repair+on+the+susceptibility+to+contraction-induced+injury+of+single+permeabilized+muscle+fibers+from+congenitally-clefted+goat+palates%5BTitle%5D)+AND+%22Cleft+Palate+Craniofac+J%22%5BJournal%5D)">Effect of cleft palate repair on the susceptibility to contraction-induced injury of single permeabilized muscle fibers from congenitally-clefted goat palates.</a> Cleft Palate Craniofac J. 45 (2), 113-120 (2008).</li>
<li>Macaluso, F., Isaacs, A. W., Myburgh, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preferential+type+II+muscle+fiber+damage+from+plyometric+exercise%5BTitle%5D)+AND+%22J+Athl+Train%22%5BJournal%5D)">Preferential type II muscle fiber damage from plyometric exercise.</a> J Athl Train. 47 (4), 414-420 (2012).</li>
<li>Lieber, R. L., Fridén, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+significance+of+skeletal+muscle+architecture%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Orthop.+Relat.+Res%22%5BJournal%5D)">Clinical significance of skeletal muscle architecture.</a> Clin. Orthop. Relat. Res. 383, 140-151 (2001).</li>
<li>Schiaffino, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibre+types+in+skeletal+muscle%3A+a+personal+account%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol+%28Oxf%29%22%5BJournal%5D)">Fibre types in skeletal muscle: a personal account.</a> Acta Physiol (Oxf). 199 (4), 451-463 (2010).</li>
<li>Bottinelli, R., Betto, R., Schiaffino, S., Reggiani, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unloaded+shortening+velocity+and+myosin+heavy+chain+and+alkali+light+chain+isoform+composition+in+rat+skeletal+muscle+fibres%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Unloaded shortening velocity and myosin heavy chain and alkali light chain isoform composition in rat skeletal muscle fibres.</a> J Physiol. 478, Pt 2 341-349 (1994).</li>
<li>Schiaffino, S., Reggiani, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myosin+isoforms+in+mammalian+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol+%281985%29%22%5BJournal%5D)">Myosin isoforms in mammalian skeletal muscle.</a> J Appl Physiol (1985). 77 (2), 493-501 (1994).</li>
<li>Larsson, L., Moss, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maximum+velocity+of+shortening+in+relation+to+myosin+isoform+composition+in+single+fibres+from+human+skeletal+muscles%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Maximum velocity of shortening in relation to myosin isoform composition in single fibres from human skeletal muscles.</a> J Physiol. 472, 595-614 (1993).</li>
<li>Kostrominova, T. Y., Reiner, D. S., Haas, R. H., Ingermanson, R., McDonough, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+methods+for+the+analysis+of+skeletal+muscle+fiber+size+and+metabolic+type%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Rev+Cell+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Automated methods for the analysis of skeletal muscle fiber size and metabolic type.</a> Int Rev Cell Mol Biol. 306, 275-332 (2013).</li>
<li>Schiaffino, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three+myosin+heavy+chain+isoforms+in+type+2+skeletal+muscle+fibres%5BTitle%5D)+AND+%22J+Muscle+Res+Cell+Motil%22%5BJournal%5D)">Three myosin heavy chain isoforms in type 2 skeletal muscle fibres.</a> J Muscle Res Cell Motil. 10 (3), 197-205 (1989).</li>
<li>Lieber, R. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLieber%2C+RL+%22Skeletal+muscle+structure%2C+function%2C+and+plasticity%22">Skeletal muscle structure, function, and plasticity</a>. , Lippincott Williams & Wilkins. Baltimore, MD. (2009).</li>
<li>Hintz, C. S., Coyle, E. F., Kaiser, K. K., Chi, M. M., Lowry, O. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+muscle+fiber+typing+by+quantitative+enzyme+assays+and+by+myosin+ATPase+staining%5BTitle%5D)+AND+%22J+Histochem+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Comparison of muscle fiber typing by quantitative enzyme assays and by myosin ATPase staining.</a> J Histochem Cytochem. 32 (6), 655-660 (1984).</li>
<li>Havenith, M. G., Visser, R., van Schendel, J. M. S. chrijvers-, Bosman, F. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+fiber+typing+in+routinely+processed+skeletal+muscle+with+monoclonal+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Histochemistry%22%5BJournal%5D)">Muscle fiber typing in routinely processed skeletal muscle with monoclonal antibodies.</a> Histochemistry. 93 (5), 497-499 (1990).</li>
<li>Likar, B., Pernuš, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Registration+of+serial+transverse+sections+of+muscle+fibers%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry%22%5BJournal%5D)">Registration of serial transverse sections of muscle fibers.</a> Cytometry. 37 (2), 93-106 (1999).</li>
<li>Liu, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+fiber-type-specific+cross-sectional+area+assessment+and+myonuclei+counting+in+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol+%281985%29%22%5BJournal%5D)">Automated fiber-type-specific cross-sectional area assessment and myonuclei counting in skeletal muscle.</a> J Appl Physiol (1985). 115 (11), 1714-1724 (2013).</li>
<li>Bloemberg, D., Quadrilatero, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+determination+of+myosin+heavy+chain+expression+in+rat%2C+mouse%2C+and+human+skeletal+muscle+using+multicolor+immunofluorescence+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Rapid determination of myosin heavy chain expression in rat, mouse, and human skeletal muscle using multicolor immunofluorescence analysis.</a> PLoS One. 7 (4), 35273(2012).</li>
<li>Bergmeister, K. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+muscle+fiber+type+population+analysis+with+ImageJ+of+whole+rat+muscles+using+rapid+myosin+heavy+chain+immunohistochemistry%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Automated muscle fiber type population analysis with ImageJ of whole rat muscles using rapid myosin heavy chain immunohistochemistry.</a> Muscle Nerve. 54 (2), 292-299 (2016).</li>
<li>Guillen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FELASA+guidelines+and+recommendations%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Assoc+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">FELASA guidelines and recommendations.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 51 (3), 311-321 (2012).</li>
<li>Meng, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+Triage+and+Freezing+for+Models+of+Skeletal+Muscle+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Tissue Triage and Freezing for Models of Skeletal Muscle Disease.</a> J Vis Exp. (89), e51586(2014).</li>
<li>Guillen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FELASA+Guidelines+and+Recommendations%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Assoc+Lab+Animal+Sci%22%5BJournal%5D)">FELASA Guidelines and Recommendations.</a> J Am Assoc Lab Animal Sci. 51 (3), 311-321 (2012).</li>
<li>Ribarič, S., ČebaŠek, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+Visualization+of+Myosin+Heavy+Chain+Isoforms+in+Single+Muscle+Sections%5BTitle%5D)+AND+%22Cells+Tissues+Organs%22%5BJournal%5D)">Simultaneous Visualization of Myosin Heavy Chain Isoforms in Single Muscle Sections.</a> Cells Tissues Organs. 197 (4), 312-321 (2013).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

本文展示了一种广泛适用的方法，可高效地通过免疫组织化学技术对大鼠肌肉横切面的肌纤维群体进行研究和自动量化。为确保实验可重复性，我们提供了详细的分步操作说明，并提出了适用于本研究未涉及的其他物种的潜在改进方案。此外，我们还讨论了该方法的优势、实现最佳效果所需的先决条件及其局限性。
目前，已有多种染色方法可用于鉴定肌纤维类型，同时也有多种方法被用于肌纤维的手动或半自动定量分析17。然而，尚无任何方案将两者结合，描述一种标准化的方法，以可靠地染色肌纤维类型，并利用免费的分析软件自动获取和定量肌纤维。基于先前的研究24,29，我们优化了现有的肌球蛋白重链免疫组织化学染色流程，用于对小鼠肌肉横切面上的肌纤维类型进行自动化分析。最近，我们已证明，对整个横切面进行自动化分析是可行的，与手动分析相比具有可靠性，且更节省时间27。此外，该方法不受操作者影响，从而减少了人为误差，能够在不同处...

骨骼肌组成在生理性过程（如衰老1,2、运动3,4,5,6,7）或病理性过程（如疾病8,9,10或创伤11）中会发生显著变化。因此，多个研究领域致力于探究这些过程对肌肉结构的影响，以理解其功能改变。决定肌肉功能的关键因素之一是肌纤维的组成。肌纤维表达不同类型的肌球蛋白重链（MHC）蛋白，据此可分为慢肌纤维、中间型纤维或快肌纤维7,12,13,14,15,16,17。从生理学角度看，不同部位的肌肉因其在体内的功能差异而具有不同的肌纤维组成。通过肌纤维分型技术，可对各类肌纤维的数量进行定量分析，从而识别其对生理或病理生理过程的适应性改变7,17。传统上，曾采用多种耗时的方法来区分肌纤维类型。这些方法通常依据肌球蛋白ATP酶在不同pH条件下的反应活性或肌肉酶活性对肌纤维进行分类。由于单个切片无法评估所有类型的纤维特征，因此需要多个横切面样本，以便识别全部肌纤维并进行人工定量分析14,16,17,18,19,20,21,22。相比之下，近年来的研究采用针对肌球蛋白重链蛋白的免疫组织化学（IHC）方法，可在单个横切面上快速染色多种肌纤维类型。由于该方法具有显著优势，目前已被视为肌纤维群体分析的金标准19,23,24。通过优化的IHC染色方案，我们近期已证明，利用开源平台ImageJ可实现整块肌肉横切面的全自动图像采集及随后的肌纤维自动定量分析。与人工定量相比，该方法将每张切片的分析时间显著缩短至人工分析的约10%，同时保持了±4%的准确度25。
本方法的总体目标是介绍一种快速、可靠且不依赖操作者的指南，用于在开源平台上自动量化整块大鼠肌肉中的肌纤维。此外，我们还描述了可能的改进方案，以便将该方法应用于其他样本，如小鼠或人类肌肉。

<table><tbody><tr><td>O.C.T. 化合物</td><td>Tissue-Tek, Sakura, 荷兰</td><td></td><td>用于肌肉组织包埋</td></tr><tr><td>异戊烷</td><td></td><td></td><td>用于肌肉组织的充分冷冻</td></tr><tr><td>Superfrost Ultra Plus 载玻片</td><td>Thermo Scientific, 德国</td><td>1014356190</td><td>粘附性载玻片</td></tr><tr><td>磷酸盐缓冲液&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Thermo Scientific, 德国</td><td>85112</td><td>去垢剂溶液</td></tr><tr><td>山羊血清</td><td>Thermo Scientific, 德国</td><td>50197Z</td><td>山羊血清</td></tr><tr><td>DAKO 荧光封片剂</td><td>Dako 丹麦</td><td>S3023</td><td></td></tr><tr><td>Dako 笔</td><td>Dako 丹麦</td><td>S200230-2</td><td></td></tr><tr><td>TissueFAXSi plus</td><td>TissueGnostics, 维也纳, 奥地利</td><td></td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;一抗&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MHC-I（货号：BA-F8，RRID: AB_10572253）</td><td>发育研究杂交瘤库（DSHB, 爱荷华, 美国）</td><td></td><td>上清液</td></tr><tr><td>MHC-IIa（货号：SC-71，RRID: AB_2147165）</td><td>发育研究杂交瘤库（DSHB, 爱荷华, 美国）</td><td></td><td>上清液</td></tr><tr><td>MHC-IIb（货号：BF-F3，RRID: AB_2266724）</td><td>发育研究杂交瘤库（DSHB, 爱荷华, 美国）</td><td></td><td>上清液</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;二抗&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alexa&amp;nbsp;Fluor&amp;nbsp;633&amp;nbsp;山羊抗小鼠 IgG2b&amp;nbsp;</td><td>Thermo Scientific, 德国</td><td>A-21146</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 山羊抗小鼠 IgG1&amp;nbsp;(&amp;gamma;1)</td><td>Thermo Scientific, 德国</td><td>A-21121</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 555 山羊抗小鼠 IgM (&amp;micro; 链)</td><td>Thermo Scientific, 德国</td><td>A-21426</td><td></td></tr><tr><td>NucBlue Fixed Cell ReadyProbes 试剂</td><td>Thermo Scientific, 德国</td><td>R37606</td><td></td></tr></tbody></table>

一种利用肌球蛋白重链免疫组织化学对大鼠肌肉横截面肌纤维群体分析的快速自动化方案

A Rapid Automated Protocol for Muscle Fiber Population Analysis in Rat Muscle Cross Sections Using Myosin Heavy Chain Immunohistochemistry

对肌纤维群体进行定量分析可更深入地揭示疾病、创伤及各种其他因素对骨骼肌组成的影响。传统上，多个研究领域常采用多种耗时的方法来研究肌纤维群体。然而，近年来发展的基于肌球蛋白重链蛋白表达的免疫组织化学方法，为在单个切片中快速鉴定多种肌纤维类型提供了替代方案。本文介绍了一种快速、可靠且可重复的染色优化方案，可实现整个横切面的自动采集以及利用ImageJ软件对肌纤维群体进行自动定量分析。具体而言，将包埋的骨骼肌组织切成横切片，使用针对肌球蛋白重链的抗体、荧光标记的二抗以及DAPI（用于细胞核染色）进行染色。随后，利用载片扫描仪自动扫描整个横切面，获得整个样本的高分辨率复合图像。接着，通过ImageJ的自动化宏程序对慢速、中间型和快速肌纤维进行群体分析与定量。我们先前已证实，该方法对肌纤维群体的识别可靠性可达±4%以内。此外，该方法利用开源平台ImageJ，显著降低了不同操作者之间的变异性和每次分析所需的时间。

采用免疫组织化学方法对大鼠完整肌肉横切面进行快速染色，以鉴定MHC I、IIA和IIB型肌纤维。利用荧光显微镜载玻片扫描仪，自动获取整个横切面图像，随后使用ImageJ进行肌纤维的自动化分析。该实验流程的设计理念在于提供一种简单、可靠且高效的肌纤维定量工作流程。
该操作流程的工作流程（图1) 始于肌肉样本的正确取下与冷冻，具体步骤如 Meng 之前发表的教程所述 等27这对于获得良好的染色质量至关重要。下一步，使用针对肌球蛋白重链蛋白I型、IIA型和IIB型的一抗以及相应的荧光二抗对肌肉样本进行切片和染色。为了达到最佳染色效果，二抗的浓度采用厂商推荐浓度的两倍，并在抗体混合液中加入Triton X，以确保染色均匀。在本实验体系中，肌肉纤维的免疫荧光染色快速且交叉反应较少，每批最多26张载玻片的样本约需5小时即可完成。所得图像显示阳性纤维与周围组织之间具有...

本文介绍了一种快速肌纤维分析方案，该方法可提高染色质量，从而利用免费软件 ImageJ 实现肌纤维群体的自动采集与定量分析。

肌纤维群体的定量分析为深入理解疾病、创伤及各种其他因素对骨骼肌的影响提供了重要依据。

本方法的总体目标是利用一个开源平台，以自动且无需人工干预的方式，快速、可靠地指导大鼠完整肌肉中肌纤维定量分析。该方法有助于回答神经肌肉领域中关于衰老、疾病或创伤对骨骼肌影响的关键科学问题。该技术的主要优势在于，可用于可靠地分析肌纤维群体，并生成高质量的肌肉横截面图像。充分解冻后，用含 Triton X 的 PBS（即 PBST）小心冲洗样本，依次进行一次 10 分钟和一次 5 分钟的洗涤。第二次洗涤后，将切片在空气中干燥 2 分钟。随后，使用疏水笔圈出各个横切面。再空气干燥15分钟后，于室温下用含山羊血清的PBST封闭非特异性结合位点，孵育1小时。随后洗涤切片，并在避光条件下于每张切片上加入相应的初级抗体混合液，室温孵育1小时进行染色。孵育结束后，用PBST洗涤切片，依次进行一次10分钟和一次5分钟的洗涤。然后，在避光条件下，用适当的二抗混合液孵育肌肉切片1小时。如图所示，用PBST缓冲液洗涤载玻片两次后，吸干液体，再根据制造商说明书，使用DAPI细胞核染色试剂盒对细胞核进行染色。用PBST缓冲液洗涤1分钟以去除多余的DAPI染料，随后短暂空气干燥。然后，用荧光封片剂和盖玻片覆盖样本，并将载玻片置于4°C避光保存。染色后24至48小时内，将载玻片放入切片扫描仪中，并在程序软件中新建一个项目。进行切片预览时，选择DAPI通道和2.5倍物镜，手动对第一份样本进行聚焦。勾画出详细采集过程中应包含的每个横截面，并为每个通道设置曝光时间。现在运行自动图像采集，检查首个视野的采集是否正确，以防止在自动采集过程早期出现错误采集。图像采集完成后，手动检查横截面的自动对焦是否准确，以及单个纤维是否清晰可辨。如有必要，必须针对每幅图像手动检查并校正自动对焦。自动肌纤维定量分析过程需要高质量的图像才能获得最佳结果。然后，对于需要纳入最终分析的每个横截面，将除DAPI外的每个通道分别导出为JPEG文件，并根据对应的激发通道将文件命名并分类存入相应名称的文件夹中。在开始肌纤维定量分析之前，使用适当的图像编辑软件预览每幅图像，以确认染色纤维与背景之间具有足够的对比度。接下来，在 ImageJ 中，使用“插件>宏>编辑”命令显示宏的源代码，并在宏的源代码中修改每个通道的文件夹目录。然后，使用“运行”命令启动宏。文件夹中的所有图像将被加载到宏中，并按连续顺序进行量化。量化结束后，将结果导出至相应的电子表格软件，识别出被正向计数的慢速、中速和快速肌纤维的数值，然后计算总肌纤维数量。肌纤维的免疫荧光染色快速且交叉反应性较低，所得图像中染色纤维与周围组织之间具有高对比度，不同类型纤维之间的区分也十分明显。自动分析可检测相对肌纤维群体，与手动分析相比，准确度在±4%以内，且总体绝对计数高于手动分析结果。然而，相对计数结果仍保持相似，差异在±4%范围内。观看本视频后，您应能充分掌握如何利用该方法实现肌纤维定量的自动化。请注意，使用 DAPI 时可能存在危险，因此在进行染色操作时务必穿戴适当的防护装备。

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Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

在使用肌球蛋白重链免疫鼠肌肉横断面的快速自动化方案为肌纤维人口分析

我们介绍一种新型实验技术，称为微创肌肉嵌合（Minimally Invasive Muscle Embedding,...

微创肌肉嵌合技术（MIME）——一种促进供体细胞介导肌生成的新型实验技术

肌球蛋白重链同工型的免疫组织化学染色已成为骨骼肌纤维类型鉴定的先进技术即，I型、IIA型、IIX型、IIB型）。本文介绍了一种染色方案，并提供一种新型半自动算法，可促进对肌纤维类型及肌纤维形态的快速评估。...

小鼠骨骼肌形态及纤维类型组成的半自动分析

本方案概述了一种从大鼠骨骼肌中分离纤维脂肪生成祖细胞（FAPs）和肌源性祖细胞（MPs）的方法。在肌肉损伤模型中使用大鼠可提供更多的萎缩肌肉组织用于分析，并具备更丰富的已验证方法，用于评估自由活动动物的肌肉力量和步态。...

大鼠骨骼肌中纤维脂肪生成祖细胞（FAPs）与肌源性祖细胞（MPs）的鉴定、分离与表征

准确检测神经肌肉接头组分的能力对于评估病理或发育过程引起的结构改变至关重要。本文详细介绍了一种简便的方法，可用于获取高质量的全装片神经肌肉接头图像，进而进行定量测量。...

单根骨骼肌纤维的分离用于全 mounts 神经肌肉接头的免疫荧光及形态计量分析

本方案描述了一种通过共聚焦与STED显微镜联合进行神经肌肉接头形态计量分析的方法，用于量化脊髓性肌萎缩（SMA）和与ColQ相关的先天性肌无力综合征（CMS）小鼠模型中的病理改变。...

通过共聚焦与超分辨率显微镜联合技术对小鼠神经肌肉接头进行表征

越来越多的证据表明，过量的脂质在骨骼肌内的积聚会导致脂毒性并引发糖尿病。本文提供了一套完整的实验方案，包括组织处理、Bodipy...

骨骼肌中脂滴含量的纤维类型与亚细胞特异性分析

本实验方案介绍了一种利用不同生物标志物（即神经丝蛋白200、囊泡乙酰胆碱转运体、α-银环蛇毒素和S100）进行荧光免疫组织化学染色，以检测大鼠腓肠肌内侧头中突触前末梢、突触后受体及突触周施万细胞之间空间相关性的方法。...

可视化大鼠腓肠肌内侧头中神经肌肉接头的形态学特征

本文介绍了一种利用共聚焦显微镜对线粒体网络进行扫描，通过活体骨骼肌成像来分析线粒体密度及纵向分布变化的实验方案。...

通过共聚焦显微镜分析大鼠活体骨骼肌纤维中线粒体密度及其纵向分布

我们描述了一种从成年小鼠六种肌肉中获取经酶法解离的不同长度和类型的肌纤维的方案：其中三种肌肉已有报道（趾短屈肌、趾长伸肌、比目鱼肌），另外三种则是首次成功实现解离（拇长伸肌、腓骨长肌、第四趾腓骨肌）。...

通过酶解法分离小鼠六种后肢肌肉获取完整短、中、长骨骼肌纤维：超越趾短屈肌的研究

本文介绍了一种用于测定人或小鼠骨骼肌新鲜通透化肌纤维中线粒体氧化磷酸化水平的综合性方法。该方法能够在保持线粒体网络结构和膜完整性的前提下，实时定量检测线粒体呼吸，并评估底物偏好性与代谢灵活性。...

通过高分辨率呼吸测定法测量人和小鼠骨骼肌纤维的线粒体呼吸

本方案描述了从小鼠氧化型腓肠肌中分离完整单根肌纤维并建立高纯度肌母细胞培养物的方法。优化后的操作可稳定地从每只小鼠获得约300–500根完整的肌纤维，适用于后续的分子与细胞分析。...

单纤维分离检测法用于评估氧化型肌纤维行为

了解使用肌球蛋白重链免疫荧光染色和ImageJ自动分析对大鼠骨骼肌横断面进行肌纤维群体快速定量分析的方法。该技术可准确识别慢速、中间和快速肌纤维类型，显著减少分析时间和用户间差异，适用于研究衰老、疾病或创伤引起的肌肉组成变化。

一种利用肌球蛋白重链免疫组织化学对大鼠肌肉横截面肌纤维群体分析的快速自动化方案

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