Name: 使用荧光探针定量培养的神经元中的内体和溶酶体运动 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 15 s
Description: 学习使用荧光探针定量分析培养神经元中的内体和溶酶体运动，该方法可简化膜运输研究并促进神经功能理解。此技术适用于神经科学和细胞生物学领域的多种应用。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我们感谢Ricardo Dolmetsch博士（斯坦福大学医学院；现任职单位：诺华生物医学研究中心）在本分析方法开发过程中提供的帮助，同时感谢Matthew Wood博士、Takuma Aihara和Dongsook Kim对稿件提出的宝贵修改意见。

所有动物实验均经筑波大学动物护理与使用委员会（IACUC）批准。
1. 解剖
<ol>
	<li>为准备胚胎第13-14天的ICR或C57BL/6胎鼠，通过颈椎脱臼法处死怀孕小鼠。取出子宫并放入含有Hank's平衡盐溶液（HBSS）的培养皿中，充分冲洗以去除血液。</li>
	<li>使用镊子将子宫转移至另一含有70%乙醇的培养皿中进行消毒。</li>
	<li>将子宫转移至另一含有HBSS的培养皿中，使用无菌解剖镊和手术剪从子宫中取出胎鼠。</li>
	<li>使用手术剪将胎鼠断头，并将其放入含有HBSS的新培养皿中。</li>
	<li>去除皮肤和颅骨，使用无菌解剖镊取出脑组织，并放入含有HBSS的培养皿中。 
	注意：从本步骤开始，最好在洁净台中进行操作。</li>
	<li>在体视显微镜下使用无菌解剖镊去除脑膜，用镊子切除基底节、海马和小脑。使用弯头镊将大脑皮层转移至含有HBSS的新培养皿中。</li>
	<li>使用一次性移液器或25 mL移液管收集所有皮层组织，放入15 mL离心管中，然后用移液器吸除HBSS。</li>
	<li>向含有皮层组织的离心管中加入3 mL大脑皮层酶消化液，将离心管置于水浴中，37 °C孵育5分钟。 
	注意：配制含有0.25%胰蛋白酶和1 mM EDTA的磷酸盐缓冲液（PBS）作为大脑皮层培养用酶溶液，并用0.22 µm滤器过滤除菌。</li>
	<li>向含有皮层组织的离心管中再加入3 mL大脑皮层酶消化液，继续在37 °C水浴中孵育5分钟。</li>
	<li>用5 mL移液器吸除大脑皮层酶消化液，加入5 mL含10%胎牛血清（FBS）的Dulbecco改良Eagle培养基（DMEM）。</li>
	<li>使用带有无菌P1000枪头的5 mL移液器轻轻吹打，使皮层组织解离；再使用带有P200枪头的5 mL移液器再次吹打。</li>
	<li>将40 µm尼龙细胞筛置于50 mL离心管上，过滤细胞悬液以去除碎片。</li>
	<li>在室温下以420 × g离心5分钟，然后吸除DMEM培养基。</li>
	<li>加入5 mL大脑皮层培养液，轻轻重悬细胞沉淀。 
	注意：配制大脑皮层培养液，成分为神经元基础培养基（neuron basal medium），添加1× B-27补充剂、2 mM L-谷氨酰胺和100 U/mL青霉素-链霉素。</li>
	<li>使用血细胞计数板计数细胞，并用大脑皮层培养液调整至所需细胞浓度。</li>
	<li>将3.0 × 106个皮层神经元接种于2.0 mL培养液体积中，接种至预先包被的35 mm玻璃底培养皿中。 
	注意：接种前，使用0.1 mg/mL多聚-D-赖氨酸氢溴酸盐（PDL）或0.01%多聚-L-鸟氨酸（PLO）包被35 mm玻璃底培养皿，在37 °C孵育3小时至过夜，然后用PBS洗涤至少3次。</li>
</ol>
2. 囊泡运动成像
<ol>
	<li>准备用于标记每种类型囊泡的质粒。例如，使用 EGFP-Rab5 标记早期内体，EGFP-Rab7 标记晚期内体，LAMP-EGFP 标记溶酶体，EGFP-LC3 标记自噬体8,13. 
	注意：这些质粒可应要求从 tsuruta.fuminori.fn@u.tsukuba.ac.jp 获取，通常需要 3 至 5 天 体外&#160;（DIV）神经元可使用转染试剂对这些质粒进行转染。</li>
	<li>将4.0 µg质粒用移液器与200 µL无血清培养基混合。在另一管中，将8 µL转染试剂（参见 材料表在200 µL无血清培养基中重悬，室温孵育5分钟。</li>
	<li>用移液器将2.2步骤中的质粒溶液与转染试剂溶液混合，室温孵育20分钟。</li>
	<li>向每个包被的玻底培养皿中加入无血清培养基和400 µL步骤2.3中的质粒溶液。将神经元在37 °C、5% CO₂条件下孵育2 孵育30分钟。将培养基更换为2 mL大脑皮层神经元培养基，在37 °C、5% CO₂条件下继续孵育神经元2 培养箱中孵育1-2天。</li>
	<li>转染后1-2天，筛选转染细胞用于图像采集。 
	注意：培养时间少于7天的未成熟神经元（7 DIV以下）囊泡运动较为活跃。应选择荧光探针表达水平适中的神经元，因为高表达的神经元难以获得清晰的图像。此外，应选择具有典型形态的神经元（如锥体神经元），其具有较长的轴突和复杂的树突结构，便于轴突与树突的识别（参见 图1A).</li>
	<li>使用延时成像系统进行图像采集： 
	使用配备CCD相机的荧光显微镜进行成像，物镜选择40倍Plan Apo 0.95NA或100倍Plan Apo VC NA1.4。通过培养系统将温度控制在37 °C。使用图像采集软件控制，在100秒时间内以每5秒一帧的速度采集神经元图像。或者，也可采用更短的时间间隔和更长的成像时程，例如每2秒一帧，持续300秒。 
	注意：可用于拍摄连续图像的应用程序有多种，其中许多均适用于本方法。因此，不特别推荐任何特定应用程序，研究人员应使用手头可用的任意应用程序。</li>
</ol>
3. 图像分析
<ol>
	<li>在 ImageJ 软件中手动打开所有连续图像进行追踪14. 
	注意：迄今为止，手动追踪已广泛应用于追踪实验中15,16,17,18,19手动追踪技术由Fabrice Cordelières博士开发。详细的书面操作指南可在线获取。20为提高成像数据的质量，建议采集足够数量的图像用于分析，推荐使用超过20幅图像。</li>
	<li>要合并序列图像，请选择 &#60;图像&#62; → &#60;堆叠&#62; → &#60;图像堆叠&#62;. 点击 &#60;好的&#62;.</li>
	<li>选择 &#60;插件&#62; → &#60;手动追踪&#62;; 将弹出一个追踪窗口。</li>
	<li>点击复选框 &#60;显示参数？&#62; 并在参数部分定义追踪参数。 
	注意：可设置多个参数，包括时间间隔、x/y 校准、z 校准、中心定位搜索方框大小、点大小、线宽和字体大小。在此简化的实验中，已定义时间间隔和 x/y 校准。在其他实验条件下，可能还需定义其他参数。此处使用的参数如下：时间间隔和 x/y 校准 &#60;时间间隔&#62; 是 5 s，且 &#60;x/y 校准&#62; 对于40倍平场复消色差0.95数值孔径物镜为0.26642 µm，对于100倍平场复消色差VC NA1.4物镜为0.10657 µm。</li>
	<li>在定义参数后，单击 &#60;添加轨迹&#62; 开始一条新轨迹。</li>
	<li>在确定目标囊泡后（例如， 由蓝色和红色箭头指示的囊泡 图1A （右侧面板），在连续图像中点击信号的中心以记录xy坐标。记录的xy坐标、距离和速度结果将显示在新窗口中。 
	注意：对于溶酶体而言，会出现较大的明亮荧光信号（例如， 图1A （右侧面板，橙色箭头）在神经元中常被观察到。由于这些信号偶尔会表现出聚集的囊泡或病理性的串珠样膨大，因此在量化运动性时应避免使用这些信号。</li>
	<li>重复步骤3.6，从所有连续图像中采集囊泡的xy坐标；每次选定参考点后，图像将自动切换至下一幅。</li>
	<li>将这些数据导出到一个新表格中（例如， 电子表格）。使用适当的软件创建合适的图表（参见 材料表). 
	注意：为分析数据，请选择 &#60;距离&#62; 柱，对该列所有数值求和，并以柱状图形式展示运动距离，如 图1B此外，重复此步骤，计算总运动距离的平均值，并以柱状图形式展示，如 图1C用于创建柱状图和波形数据的软件如图所示 材料表</li>
</ol>

<ol><li>Nicot, A. S., Laporte, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endosomal+phosphoinositides+and+human+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Traffic%22%5BJournal%5D)">Endosomal phosphoinositides and human diseases.</a> Traffic. 9 (8), 1240-1249 (2008).</li>
<li>De Matteis, M. A., Luini, A. <a target="_blank" href="http://www.nejm.org/doi/full/10.1056/NEJMra0910494">Mendelian disorders of membrane trafficking.</a> N Engl J Med. 365 (10), 927-938 (2011).</li>
<li>Lebrand, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Late+endosome+motility+depends+on+lipids+via+the+small+GTPase+Rab7%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Late endosome motility depends on lipids via the small GTPase Rab7.</a> EMBO J. 21 (6), 1289-1300 (2002).</li>
<li>Chen, C. S., Bach, G., Pagano, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+transport+along+the+lysosomal+pathway+in+mucolipidosis%2C+type+IV+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Abnormal transport along the lysosomal pathway in mucolipidosis, type IV disease.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (11), 6373-6378 (1998).</li>
<li>Venugopal, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurologic%2C+gastric%2C+and+opthalmologic+pathologies+in+a+murine+model+of+mucolipidosis+type+IV%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Hum+Genet%22%5BJournal%5D)">Neurologic, gastric, and opthalmologic pathologies in a murine model of mucolipidosis type IV.</a> Am J Hum Genet. 81 (5), 1070-1083 (2007).</li>
<li>Li, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+molecular+mechanism+to+regulate+lysosome+motility+for+lysosome+positioning+and+tubulation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">A molecular mechanism to regulate lysosome motility for lysosome positioning and tubulation.</a> Nat Cell Biol. 18 (4), 404-417 (2016).</li>
<li>Tsuruta, F., Green, E. M., Rousset, M., Dolmetsch, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PIKfyve+regulates+CaV1.2+degradation+and+prevents+excitotoxic+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">PIKfyve regulates CaV1.2 degradation and prevents excitotoxic cell death.</a> J Cell Biol. 187 (2), 279-294 (2009).</li>
<li>Tsuruta, F., Dolmetsch, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PIKfyve+mediates+the+motility+of+late+endosomes+and+lysosomes+in+neuronal+dendrites%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Lett%22%5BJournal%5D)">PIKfyve mediates the motility of late endosomes and lysosomes in neuronal dendrites.</a> Neurosci Lett. 605, 18-23 (2015).</li>
<li>McCartney, A. J., Zhang, Y., Weisman, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phosphatidylinositol+3%2C5-bisphosphate%3A+low+abundance%2C+high+significance%5BTitle%5D)+AND+%22Bioessays%22%5BJournal%5D)">Phosphatidylinositol 3,5-bisphosphate: low abundance, high significance.</a> Bioessays. 36 (1), 52-64 (2014).</li>
<li>Shisheva, A., Sbrissa, D., Ikonomov, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plentiful+PtdIns5P+from+scanty+PtdIns%283%2C5%29P2+or+from+ample+PtdIns%3F+PIKfyve-dependent+models%3A+Evidence+and+speculation+%28response+to%3A+DOI+10.1002%2Fbies.201300012%29%5BTitle%5D)+AND+%22Bioessays%22%5BJournal%5D)">Plentiful PtdIns5P from scanty PtdIns(3,5)P2 or from ample PtdIns? PIKfyve-dependent models: Evidence and speculation (response to: DOI 10.1002/bies.201300012).</a> Bioessays. 37 (3), 267-277 (2015).</li>
<li>Chow, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutation+of+FIG4+causes+neurodegeneration+in+the+pale+tremor+mouse+and+patients+with+CMT4J%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mutation of FIG4 causes neurodegeneration in the pale tremor mouse and patients with CMT4J.</a> Nature. 448 (7149), 68-72 (2007).</li>
<li>Zhang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+Vac14%2C+a+regulator+of+the+signaling+lipid+phosphatidylinositol+3%2C5-bisphosphate%2C+results+in+neurodegeneration+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Loss of Vac14, a regulator of the signaling lipid phosphatidylinositol 3,5-bisphosphate, results in neurodegeneration in mice.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (44), 17518-17523 (2007).</li>
<li>Mizushima, N., Yamamoto, A., Matsui, M., Yoshimori, T., Ohsumi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+analysis+of+autophagy+in+response+to+nutrient+starvation+using+transgenic+mice+expressing+a+fluorescent+autophagosome+marker%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biol+Cell%22%5BJournal%5D)">In vivo analysis of autophagy in response to nutrient starvation using transgenic mice expressing a fluorescent autophagosome marker.</a> Mol Biol Cell. 15 (3), 1101-1111 (2004).</li>
<li>Manual Tracking, a plug-in for ImageJ software [Internet]. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://imagej.nih.gov/ij/plugins/track/track.html">https://imagej.nih.gov/ij/plugins/track/track.html</a> (2017).</li>
<li>Hu, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exopolysaccharide-independent+social+motility+of+Myxococcus+xanthus%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Exopolysaccharide-independent social motility of Myxococcus xanthus.</a> PLoS One. 6 (1), e16102(2011).</li>
<li>Tan, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+four+type+IV+pilin+homologues+in+Stigmatella+aurantiaca+DSM17044+by+heterologous+expression+in+Myxococcus+xanthus%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Characterization of four type IV pilin homologues in Stigmatella aurantiaca DSM17044 by heterologous expression in Myxococcus xanthus.</a> PLoS One. 8 (9), e75105(2013).</li>
<li>Choi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genetic+variant+of+cortactin+linked+to+acute+lung+injury+impairs+lamellipodia+dynamics+and+endothelial+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">A genetic variant of cortactin linked to acute lung injury impairs lamellipodia dynamics and endothelial wound healing.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 309 (9), L983-L994 (2015).</li>
<li>Dahirel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Movement+propensity+and+ability+correlate+with+ecological+specialization+in+European+land+snails%3A+comparative+analysis+of+a+dispersal+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22J+Anim+Ecol%22%5BJournal%5D)">Movement propensity and ability correlate with ecological specialization in European land snails: comparative analysis of a dispersal syndrome.</a> J Anim Ecol. 84 (1), 228-238 (2015).</li>
<li>Hu, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interplay+between+type+IV+pili+activity+and+exopolysaccharides+secretion+controls+motility+patterns+in+single+cells+of+Myxococcus+xanthus%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Interplay between type IV pili activity and exopolysaccharides secretion controls motility patterns in single cells of Myxococcus xanthus.</a> Sci Rep. 6, 17790(2016).</li>
<li>Cordelières, F. P. Manual Tracking [Internet]. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://imagej.nih.gov/ij/plugins/track/Manual Tracking plugin.pdf">https://imagej.nih.gov/ij/plugins/track/Manual Tracking plugin.pdf</a> (2017).</li>
<li>ImageJ Tracking plug-in [Internet]. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://imagej.net/Category:Tracking">https://imagej.net/Category:Tracking</a> (2017).</li>
<li>Tinevez, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TrackMate%3A+An+open+and+extensible+platform+for+single-particle+tracking%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">TrackMate: An open and extensible platform for single-particle tracking.</a> Methods. , (2016).</li>
<li>Ekvall, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+tracking+of+small+aquatic+organisms+using+fluorescent+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional tracking of small aquatic organisms using fluorescent nanoparticles.</a> PLoS One. 8 (11), e78498(2013).</li>
<li>Jeyakumar, M., Dwek, R. A., Butters, T. D., Platt, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Storage+solutions%3A+treating+lysosomal+disorders+of+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Storage solutions: treating lysosomal disorders of the brain.</a> Nat Rev Neurosci. 6 (9), 713-725 (2005).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

本方案介绍了囊泡运动性的定量分析步骤。在原代神经元中，早期内神经元（4-6 天体外培养）的内体和溶酶体通常表现出较高的运动性。由于神经元需要将某些组分运输至生长前沿以延长神经突，因此在此阶段膜运输应处于动态进行状态。因此，使用较年轻的神经元观察神经元树突中的动态运动性尤为重要。此外，即使在较年轻的神经元中，较大的囊泡通常也不易表现出高运动性。囊泡大小的调控可能与融合-分裂过程的发生频率相关。有可能某些本身运动不活跃的特定囊泡更容易接受其他囊泡，从而终止其运动。因此，囊泡的选择是本分析中的一个重要步骤。
目前有多种免费的插件软件可用于物体追踪21。例如，TrackMate 插件能够追踪物体22，并可通过数值软件进行修改，提供一系列数学信息。然而，对于本实验方案中相对简单的图像分析而言，该插件的使用略显复杂。Mtrack2 是另一款插件，基于 MultiTracker 插件开发23。Mtrack2 同样具有实用性，因其能够识别目标，并确定后续帧...

内体-溶酶体运输的精确调控对于维持神经元功能至关重要。值得注意的是，这些囊泡的动态运动是调控神经元形态、发育和存活的关键因素。该系统的缺陷会导致严重的神经元疾病1,2。囊泡运输与神经元疾病之间关联的分子机制被认为十分复杂，多个研究团队已致力于探索这种相关性。例如，已有研究报道，晚期内体运动功能障碍与尼曼-匹克C病显著相关3，这是一种由溶酶体缺陷引起的遗传性神经退行性疾病。另一个例子是溶酶体Ca2+通道trpml1的突变，该突变会损害溶酶体的运动性，导致溶酶体贮积病4,5,6。我们课题组曾报道，PtdIns(3,5)P2代谢周转的失调会抑制神经元中内体和溶酶体的运动性，从而增加对应激反应的易损性7,8。PtdIns(3,5)P2的代谢调控主要发生在晚期内体和溶酶体上，在多种细胞功能中发挥重要作用，包括囊泡运输以及融合-分裂过程9,10。由于PtdIns(3,5)P2周转受损会引起严重的神经退行性病变11,12，因此内体-溶酶体运动性的异常调控可能是理解神经退行性疾病发病机制的关键因素。因此，对囊泡运动性潜在分子机制的研究可能为深入理解多种神经元疾病提供有价值的线索。
本文介绍了一种利用免费软件“Manual Tracking”来定量分析神经元中囊泡运动的有效方法。该方法旨在建立一种快速的定量分析流程，以研究囊泡的运动特性。该定量方法通过在延时成像视频的每一帧中点击一个参考点，按照标准操作流程进行。Manual Tracking 软件的使用使该方法变得极为简便且具有广泛的适用性，与其他应用相比更具优势。此外，该方法也可应用于其他类型的细胞，例如胶质细胞。尽管该方法较为基础，但仍可适用于多种分析，包括细胞运动性和形态变化的研究。例如，在一系列图像中定义参考点后，可通过数据分析和图像处理软件从连续图像中提取各参考点的位置信息及其对应的时间点。综上所述，该方法简便而强大，有助于提高基于膜 trafficking 研究（如内体-溶酶体功能研究）的工作效率。

<table><tbody><tr><td>Neurobasal 培养基</td><td>Thermo Fisher</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>杜氏改良伊格尔培养基（DMEM）</td><td>Wako</td><td>044-29765</td><td></td></tr><tr><td>Opti-MEM</td><td>Thermo Fisher</td><td>31985070</td><td>无血清培养基</td></tr><tr><td>汉克平衡盐溶液（HBSS）</td><td>Thermo Fisher</td><td>14170112</td><td></td></tr><tr><td>青霉素-链霉素</td><td>Thermo Fisher</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>L-谷氨酰胺</td><td>Thermo Fisher</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>B-27 添加剂</td><td>Thermo Fisher</td><td>17504044</td><td></td></tr><tr><td>2.5% 胰蛋白酶</td><td>Thermo Fisher</td><td>15090046</td><td></td></tr><tr><td>聚-D-赖氨酸氢溴酸盐（PDL）</td><td>Sigma</td><td>P7280</td><td></td></tr><tr><td>聚-L-鸟氨酸（PLO）</td><td>Sigma</td><td>P4957</td><td></td></tr><tr><td>尼龙细胞筛</td><td>Corning</td><td>431750</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000</td><td>Thermo Fisher</td><td>11668027</td><td>转染试剂</td></tr><tr><td>聚乙烯亚胺 &quot;Max&quot;（PEI）</td><td>polysciences</td><td>24765</td><td>转染试剂。可作为 Lipofectamine 2000 的替代品，使用 0.1 mg/mL 聚乙烯亚胺溶于无菌水中。但其转染效率较低且毒性较高。</td></tr><tr><td>BIOREVO BZ-9000</td><td>Keyence</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>培养系统 INUG2-K13</td><td>Tokay Hit</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>GraphPad Prism 6.0 版</td><td>GraphPad Software</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Excel 15 版</td><td>Microsoft</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ 1.47 版</td><td>NA</td><td>NA</td><td></td></tr></tbody></table>

使用荧光探针定量培养神经元中内体和溶酶体的运动性

Quantification of Endosome and Lysosome Motilities in Cultured Neurons Using Fluorescent Probes

在大脑中，膜运输系统在调控神经元功能方面发挥着重要作用，例如神经元形态、突触可塑性、存活以及胶质细胞间的通讯。迄今为止，已有大量研究表明，这些系统的缺陷会导致多种神经元疾病。因此，理解囊泡动态的潜在机制可能为治疗多种神经元功能障碍提供重要线索。本文介绍一种利用ImageJ平台的软件插件来定量分析囊泡运动能力的方法，例如运动距离和移动速率。为了获得用于定量分析的图像，我们使用EGFP标记的囊泡标志蛋白对神经元的内体-溶酶体结构进行标记，并通过延时显微镜观察囊泡的运动。该方法非常实用，可简化对神经元和胶质细胞的神经突（如轴突和树突）以及胞体中囊泡运动的测量。此外，该方法还可应用于其他细胞系，如成纤维细胞和内皮细胞。这一方法有望显著推动我们对膜运输过程的理解。

该实验旨在测量囊泡动力学 体外 培养。该检测用于确定与神经元形态及存活相关的囊泡运动性。 图 1A 和 B 展示神经元中溶酶体运动的代表性数据。皮层神经元转染了溶酶体标记物 LAMP-EGFP，并使用标准荧光显微镜进行观察。已有文献报道，特定的内体-溶酶体囊泡即使在静息状态的神经元中也具有高度移动性。8确实，这些结果展示了同一条树突中静止和运动的囊泡图1A 和 B）。通常情况下，静息状态的囊泡在神经元树突中表现出类似布朗运动的振动性运动。相比之下，运动中的囊泡则呈现不规则的移动行为。我们推测，每种囊泡可能具有不同的组分特征，这种特征决定了其功能，即使在溶酶体囊泡中也是如此。8因此，利用该方法对囊泡进行分类可能提供有用的信息。使用该系统，可轻松量化这些囊泡的平均运动性。<stro...

研究膜运输对于理解神经元功能至关重要。本文介绍一种用于量化神经元中囊泡运动性的方法。该方法简便易行，可适用于神经系统中膜运输的量化分析。

在大脑中，膜运输系统在调控神经元功能（如神经元形态、突触可塑性等）方面发挥着重要作用。

本成像分析的总体目标是观察神经元中囊泡的运动性并对其进行简便的量化。该方法能够以简单且省时的方式分析神经元中的膜运输过程。开始此操作时，将子宫转移至一个新的培养皿中，并加入70%乙醇。接下来，将子宫转移至另一含有 HBSS 的培养皿中。然后使用灭菌的解剖镊子和手术剪从子宫中取出胚胎。之后将其放入盛有 HBSS 的新培养皿中。在体视显微镜下，用无菌解剖镊去除皮肤和颅骨，并取出脑组织。然后将其转移至另一含有HBSS的培养皿中。使用无菌解剖镊去除脑膜。然后修剪掉多余组织。接着将皮层组织转移至含有HBSS的新培养皿中。使用一次性滴管或25毫升移液管收集所有皮层组织，并放入15毫升离心管中。随后，用移液器吸除 HBSS。然后，向含有皮质的试管中加入三毫升脑皮质酶解液。将试管放入水浴中，在 37°C 下孵育五分钟。随后，向含有皮质的离心管中再加入三毫升脑皮质酶解液，在37°C水浴中继续孵育五分钟。五分钟后，移除脑皮质酶解液，并加入五毫升含10%胎牛血清的DMEM培养基。使用带有无菌P1000吸头的五毫升移液器，轻轻吹打数次，使皮质组织充分解离。然后使用带有P200吸头的5毫升移液器再次吹打皮层组织。将40微米尼龙细胞筛置于50毫升离心管上，过滤悬液以去除碎片。随后，在室温下以420 × g离心5分钟，然后弃去DMEM培养基。随后，加入 5 毫升大脑皮层培养基，轻轻重悬细胞沉淀。然后使用血细胞计数板对细胞进行计数，并用大脑皮层培养基调整细胞浓度。接下来，将每份含有 3 × 10⁶ 个皮层神经元的 2 毫升细胞悬液接种至每个编码的 35 毫升玻璃底培养皿中。在此步骤中，将四微克质粒与200微升无血清培养基混合。在另一管中，将八微升转染试剂溶于200微升无血清培养基中。然后，在室温下孵育该溶液五分钟。五分钟后，将质粒溶液与转染试剂溶液混合，并在室温下孵育20分钟。随后，将混合物加入编码的玻璃底培养皿中。将神经元在37摄氏度下孵育30分钟。随后，将培养基更换为2 mL大脑皮层培养基，于37°C培养神经元1至2天。进行成像时，使用配备CCD相机和40X物镜的荧光显微镜，并通过培养系统维持37°C的温度。使用图像采集软件控制，在100秒的时间内每隔5秒采集一帧神经元图像。为分析图像，使用ImageJ软件中的“手动追踪”功能打开所有连续图像。要合并连续图像，请依次选择“图像”、“堆栈”、“图像转为堆栈”，然后单击“确定”。随后，选择“插件”，然后选择“手动追踪”。将弹出一个跟踪窗口。勾选“显示参数”复选框，并在“参数”部分中定义跟踪参数。然后点击“添加轨迹”以开始新的跟踪。确定目标囊泡后，点击连续图像中信号的中心位置，以记录其 xy 坐标。重复此操作，从所有连续图像中收集囊泡的 xy 坐标；每次选定参考点后，图像将自动切换至下一幅。该图像显示了转染两天后（自体外培养第4天开始）小鼠皮层神经元树突中含 LAMP-EGFP 囊泡的运动情况。插图显示了LAMP-EGFP阳性囊泡的时间推移图像。红色箭头指示一个移动的囊泡，蓝色箭头指示一个静止的囊泡。橙色箭头指示荧光信号更强的区域。这是 LAMP-EGFP 阳性囊泡随时间变化的 X 轴位置。红色圆圈中标记为 b 的囊泡处于运动状态，而蓝色圆圈中标记为 a 的囊泡处于静止状态。该柱状图表示 LAMP-EGFP 运动的总距离。此柱状图显示了含有 LAMP-EGFP 的囊泡的平均运动距离。

quantification-endosome-lysosome-motilities-cultured-neurons-using

Research

科研

JoVE Journal

Neuroscience

神经科学

使用荧光探针定量培养的神经元中的内体和溶酶体运动

介绍了一种活体荧光成像技术，用于定量中枢神经末梢中特定突触小泡（SV）池的补充与动员过程。在同一神经末梢中监测两轮SV循环，以提供内部对照。...

使用FM染料对培养的小脑颗粒神经元中突触囊泡池再补充进行定量分析

本报告介绍了利用活细胞成像和光漂白技术，研究在神经元质膜上外源性表达的、pH敏感型GFP标记蛋白的表面表达、转运途径及运输动力学。...

利用荧光恢复与荧光丢失光漂白技术评估培养神经元中膜蛋白的侧向扩散与胞吐作用

突触处聚集的神经递质受体丰度显著影响突触强度。该方法可在单个突触分辨率下，对秀丽隐杆线虫（C.

C. elegans 中突触荧光的自动化定量分析

本视频展示了如何用特定的荧光蛋白标记神经元囊泡，以观察其运动。首先，将编码荧光蛋白的质粒与转染试剂孵育，然后导入神经元培养物中。随后，采集并分析神经元的图像，以追踪囊泡的运动。...

使用荧光成像技术观察神经元中囊泡的运动性

囊泡或细胞器等货物的细胞内运输由分子马达蛋白沿极性微管进行。本方案描述了神经元内单个货物颗粒运输方向性与其相关马达蛋白的种类和相对含量之间的关联分析方法。...

利用“货物定位图谱”分析法表征运动性轴突运输货物上分子马达的组成

本文介绍了一种利用突触小泡蛋白2-pHluorin构建体和全内反射荧光显微镜技术研究神经母细胞瘤细胞中神经递质囊泡动态的方法。同时报道了图像处理与数据分析的策略。...

使用TIRFM和pH敏感型GFP探针评估SH-SY5Y神经母细胞瘤细胞中神经递质囊泡动态：细胞成像与数据分析

本方案描述了一种通过定量分析NLS-NES-GFP蛋白核输入的实时变化，来灵敏检测运动神经元样NSC-34细胞内核质运输速率的方法。...

在运动神经元样NSC-34细胞中实时测量核质运输的检测方法

通过将突触小泡蛋白与pHluorin融合后的光学显微镜检测以及突触小泡摄取的电子显微镜观察，可检测突触小泡的内吞作用。...

在培养的海马神经元中测量突触囊泡内吞作用

描述了两种相关方法，用于可视化突触传递所需的亚细胞事件。这些方案通过活细胞成像技术，实现对突触前钙离子内流和突触囊泡膜融合动态过程的实时监测。 体外...

肌萎缩侧索硬化症模型中突触功能的实时荧光检测

本文描述了优化荧光显微镜成像参数的方法，以在活体线虫中以单神经元分辨率观察内源性标记货物的轴突运输过程。...

在活体Caenorhabditis elegans中通过荧光显微镜优化内源性货物轴突运输的可视化

学习使用荧光探针定量分析培养神经元中的内体和溶酶体运动，该方法可简化膜运输研究并促进神经功能理解。此技术适用于神经科学和细胞生物学领域的多种应用。

使用荧光探针定量培养神经元中内体和溶酶体的运动性

探索更多视频