2017年12月17日
本文介绍了痰液诱导技术。该方案还详细说明了痰液处理方法,以进行细胞分类计数,并收集痰液上清液和细胞用于后续分析。
诱导痰技术于20世纪90年代初期发展起来,最初提出用于研究哮喘、慢性阻塞性肺疾病(COPD)等阻塞性气道疾病的新信息,而近年来人们也开始关注其在肺纤维化研究中的应用价值。该技术的主要优势在于相较于支气管镜检查,其具有相对无创的特点。
该处理过程需要进行实验室内操作,耗时较长,因此对实验人员的技术要求较高,且耗时耗力,需要具备一定的实验室操作经验,因此显然是一种难以在所有中心普遍开展的技术。诱导痰技术包括两个部分:第一部分是痰的诱导,第二部分是痰的处理。在进行痰诱导之前,我们需要先进行肺量测定(spirometry),以评估患者能够产生的气体容积和气流速率。
我们需要这样做,是因为痰液诱导本身可能引起支气管痉挛,因此我们必须了解患者肺功能测定的基线值。首先,我们进行一次肺功能测定,然后给予患者支气管扩张剂,通常给予400 µg的沙丁胺醇,以最大程度地打开患者的气道,并预防诱导过程中可能出现的支气管痉挛。15分钟后,我们再次测量肺功能,以获得所谓的肺功能基线值,特别是关注FEV1,即患者在一秒钟内能够呼出的气体体积。
将蒸馏水倒入雾化室,直至达到推荐液位。在雾化室内放置一个洁净的杯子。用合适的盖子盖好已装满的瓶盖。
如果支气管扩张剂后FEV1大于预测值的65%,则在杯中加入50 mL 5%高渗盐水;如果支气管扩张剂后FEV1小于预测值的65%,则加入50 mL 0.9%等渗盐水。向杯中加入1.75 mL浓度为5 mg/mL的硫酸沙丁胺醇溶液。按照制造商的说明连接管路和阀门。
该技术必须在医疗监督下进行。向患者解释测试的原理。要求患者使用鼻夹。
启动雾化器,并选择最低的气溶胶和风扇档位。请患者通过咬嘴以潮气呼吸方式吸入气溶胶。根据患者的耐受程度,可逐步增加气溶胶和风扇的档位。
若出现胸闷或呼吸不适,应立即停止操作,并进行肺量测定以测量患者的 FEV1 值。吸入 5 分钟后,或若出现咳嗽、恶心症状,应停止使用雾化器。请患者取下鼻夹,用自来水漱口并漱喉两次,然后将水吐入水槽中丢弃。
然后,让患者咳出痰液,并将从喉咙咳出的物质吐入塑料容器中。进行第一次呼吸动作以测定FEV1。每次尝试咳痰后,均测量FEV1值。
如果FEV1值下降超过20%,则停止操作,并给予患者异丙托溴铵雾化治疗,这是一种抗胆碱能药物,可与操作过程中已给予的β2受体激动剂协同作用。如果FEV1值未下降超过20%,则继续操作,总时长根据患者咳出痰液的质量和量决定,通常为10至20分钟。一旦获得痰液样本,应将其保存在冰箱中,直至进行处理。
第二部分包括痰液处理,为此首先需要配制两种用于该处理过程的溶液。首先是二硫苏糖醇(Dithiothreitol),也称为 DTT。该溶液需通过将 DTT 用无菌水稀释,配制成 6.5 毫摩尔的溶液。
因此,必须避免将DTT暴露于空气中,为此我们使用注射器和针头。其次,需要配制台盼蓝溶液,需用DPBS对台盼蓝进行稀释,以获得0.08%的溶液。关于痰液样本,需将全部痰液转移至一个50 mL锥底塑料离心管中,并称量样本重量,然后加入三倍重量的DPBS溶液。
将样品缓慢涡旋振荡30秒,在4°C条件下以800 ×g离心10分钟。经两层无菌纱布过滤后,收集上清液至50 mL锥底塑料管中。将上清液分装至2 mL塑料管中,于-80°C保存。
请注意,上清液样本对我们而言是痰液三相成分的一部分。如果细胞沉淀体积小于 5 mL,加入 DPBS 使细胞悬液总体积达到 5 mL。用终浓度为 6.5 毫摩尔的 DTT 溶液等体积稀释细胞悬液。
将细胞悬液在室温下用摇床孵育 20 分钟。用 DPBS 将细胞悬液至少稀释三倍。在 4 摄氏度下,以 550 ×g 离心稀释后的细胞悬液 10 分钟。
弃去上清液。用约1 ml DPBS重悬细胞沉淀。测定并记录细胞悬液的准确体积。
取50微升细胞悬液加入50微升稀释后的台盼蓝溶液中,混匀。将样品置于血细胞计数板的盖玻片下,放入光学显微镜下观察。评估细胞悬液的细胞浓度、鳞状细胞百分比以及非鳞状细胞的存活率。
用DPBS稀释一部分悬浮液,以获得至少350 µL、浓度为500,000个细胞/mL的细胞悬液。按照制造商说明书组装细胞浓缩装置。将100 µL细胞悬液分别加入细胞浓缩装置的三个腔室中。
在室温下,以150 g离心2分钟。弃去上清液。让载玻片自然晾干。
根据制造商说明书,使用 div quick 染色液或镍价染色试剂盒对玻片进行染色。用封片剂和盖玻片封片。将玻片置于光学显微镜下,使用油浸镜头观察。
至少计数500个非鳞状细胞,包括中性粒细胞、嗜酸性粒细胞、巨噬细胞、淋巴细胞和上皮细胞,并记录各类细胞的绝对值、百分比及细胞类型。关于结果,使用血细胞计数板时,需计数未被染色的活体非鳞状细胞,同时计数被染成蓝色的死亡非鳞状细胞。
以及鳞状细胞。这些细胞是来自口腔的上皮细胞。它们体积较大,因此与微小的人类细胞相比更容易识别。
因此,必须避免将细菌、酵母或碎屑计入其中。如果细胞悬液中鳞状细胞比例超过80%,则该样本被视为质量较差,不适合制备细胞离心涂片。该样本因此被视为不合格。
根据细胞的颜色和形态对染色后的细胞离心涂片进行计数。中性粒细胞的主要特征是其多叶核,这使得细胞易于识别。这些细胞呈圆形、体积较小,染成中性粉红色。
嗜酸性粒细胞含有易于识别的红色颗粒。这些细胞的大小与中性粒细胞相近。巨噬细胞的体积是中性粒细胞的两到五倍,染成蓝色。
细胞质可能含有碎片和空泡。淋巴细胞呈圆形且体积较小,染成蓝色,具有一个大而致密的细胞核。上皮细胞呈柱状,染成粉红色,顶部常带有纤毛。
以下是一些不可读的细胞涂片样本示例,其中鳞状细胞比例超过80%。我认为这是一种非常有用的技术,但我们必须非常谨慎,因为痰液诱导必须在医疗监督下进行。然而,痰液诱导技术能够提供大量关于患者气道炎症状态的信息。您可以在上清液中检测不同的生物化学标志物,也可以对细胞成分进行多种检测。因此,诱导痰样本可用于流式细胞术、蛋白质组学、转录组学,甚至基因组学分析。
本文介绍了一种用于收集呼吸道疾病分析用痰液样本的非侵入性技术——痰液诱导法。该方案包括痰液处理的详细步骤,以进行有差别的细胞计数,并收集上清液用于进一步研究。
诱导痰液并进行处理是一种无创性方法,可用于收集气道细胞及上清液,从而实现对呼吸系统疾病中炎症通路的机制研究。该方法通过提供来自肺部微环境的定量细胞学和生物化学数据,支持靶点验证,对于降低哮喘、慢性阻塞性肺疾病(COPD)和纤维化研究中的假设风险具有重要意义。该技术通过将临床样本分析与功能靶点检测相结合,提高了临床前模型的预测可信度。
该方法可融入从假设验证到先导物鉴定的整个发现流程,支持呼吸系统疾病项目中的气道炎症分析以及基于生物标志物的靶点优先排序。