2018年4月9日
在该协议中, 杆状病毒是通过瞬态转染杆状病毒质粒进入 Sf9 细胞并在无血清悬浮培养中扩增而产生的。用肝素亲和层析法纯化上清液, 进一步浓缩离心。该协议对用于基因治疗的杆状病毒的制备和纯化具有重要意义。
该方案的总体目标是在昆虫细胞培养物中产生杆状病毒,用肝素亲和层析纯化,并通过超速离心浓缩。最终产品可用于体内基因转移或用作疫苗。该方法可以帮助希望将纯化和浓缩的杆状病毒用于基因治疗应用的研究人员。
杆状病毒颗粒可能含有来自 Sf9 培养物的细胞碎片和蛋白质,在人体中使用时可能会诱发炎症或免疫反应。为避免毒性,杆状病毒被纯化并与污染颗粒分离。该程序的某些部分将由我实验室的研究助理 Marilou Narciso 演示。
为了建立悬浮培养物,将昆虫培养基中的 50 毫升 Sf9 细胞接种到 250 毫升聚碳酸酯锥形瓶中。并将培养瓶放入轨道摇床培养箱中。向细胞中加入 2 毫升 P2 杆状病毒原液,以 135 rpm 的速度摇动,同时保持 28 摄氏度的恒定温度。
感染后 4 天,整个 Sf9 细胞群将表现出细胞病变效应,这表明高滴度杆状病毒的产生。通过将每次后续感染中的细胞培养物体积增加 10 至 50 倍,依次扩增杆状病毒直到获得所需的体积。将最终杆状病毒上清液在 1000 g 和 4 摄氏度下离心 30 分钟以分离细胞碎片后,将上清液转移到干净的容器中,并在 37 摄氏度下用 50 单位/毫升的核酸酶处理 2 小时,以消化基因组 DNA 和 RNA。
最后,通过 0.45 微米过滤装置过滤病毒上清液。将来自入口 A1 的洗涤缓冲液管路放入含有至少 500 毫升洗涤缓冲液的瓶子中,以设置色谱系统。使用 A2 缓冲液进样口上样洗脱缓冲液。
将几个 50 mL 锥形管插入馏分收集器中,以收集色谱柱直通杆状病毒上清液、洗涤缓冲液和逃脱的杆状病毒。用 5 个 7.9 mL 柱体积的洗涤缓冲液以 7 mL/min 的线性流速平衡肝素柱。使用入口样品口的样品泵,以每分钟 2 mL 的线性流速将 250 mL 杆状病毒上清液上样到肝素柱上。
然后以每分钟 2 mL 的线性流速将 10 倍柱体积的洗涤缓冲液通过肝素柱,直到紫外吸光度曲线恢复到基线并变得稳定。用 5 柱体积的洗脱缓冲液以每分钟 4 mL 的线性流速从肝素柱中去除杆状病毒颗粒。当杆状病毒颗粒从肝素柱上解离时,观察色谱图上蛋白质的尖锐洗脱峰。
洗脱后,立即使用 20 毫米磷酸钠缓冲液将逃脱的杆状病毒上清液稀释 10 倍,以防止在随后的离心过程中因渗透压休克而激活杆状病毒颗粒。通过将等体积的杆状病毒上清液添加到高压灭菌器中到超速离心管中来开始浓缩程序。用天平测量管重量,并用无菌 PBS 调整超速离心管内容物的重量。
将每个超速离心管放入 SW 32 Ti 转子的相对桶中,并在 4 摄氏度下以 80, 000 g 的离心力运行 90 分钟。离心后,打开组织培养罩中的超速离心管,无菌吸出液体,而不去除杆状病毒沉淀。加入 200 微升含有 0.5% BSA 的 PBS,并通过上下剧烈吹打重悬每个沉淀。
最后,将 50 至 100 微升等分试样的浓缩杆状病毒转移到冻存管中,并在零下 80 摄氏度下储存。杆状病毒滴度是通过感染 HT1080 细胞来估计的。由菱形连接的线显示了每个组分中杆状病毒的总感染单位。
杆状病毒颗粒与肝素柱强烈结合,因此在柱清洗缓冲液中未检测到大量病毒。在洗脱过程中观察到蛋白质的尖峰,这与杆状病毒组分相对应。该方案中使用的参数最大限度地提高了产量并最大限度地减少了感染性杆状病毒颗粒的失活。
该方案可用于纯化对肝素具有亲和力的其他病毒和蛋白质。
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本协议概述了使用昆虫细胞培养产生和纯化杆状病毒的方法。杆状病毒通过肝素亲和层析和超速离心浓缩纯化,使其适用于基因治疗应用。
Baculovirus is emerging as a promising gene therapy vector due to its capacity for high-titer production and purification. This protocol enables scalable manufacturing of clinical-grade baculovirus by eliminating cytotoxic contaminants through heparin affinity chromatography and ultracentrifugation. The method supports translational advancement by delivering purified, concentrated viral particles suitable for in vivo gene transfer applications.
This method bridges early-stage vector production with preclinical validation by generating purified baculovirus suitable for efficacy and safety testing.