2019年1月9日
我们提出了一个氟原肽裂解检测, 允许快速筛选蛋白酶的蛋白溶解活性肽代表病毒融合肽的裂解部位。这种方法也可以用于蛋白质序列中的任何其他氨基酸母题, 以测试蛋白酶活性。
这种方法可以帮助回答生物化学领域的关键问题,如蛋白质的蛋白质解法修饰,以及抑制剂和蛋白酶和肽的表征。这项技术的主要优点是,它允许快速筛选肽上的蛋白酶蛋白酶活性,代表给定蛋白质的裂解侧。这里的用途是研究激活病毒融合的蛋白酶。
肽设计的第一步是从公共数据库(如NCBI或病毒病原体数据库)获取感兴趣的融合蛋白序列。选择蛋白酶识别站点进行聚变肽,包括该序列的上游和下游两到三个氨基酸。订购肽时,使用荧光共振能量转移或 FRET 对、末终点的 Mca 和 c 终点的 Dnp 修改它。
在测定过程中,Mca 非常兴奋,并发出光能,只要两者彼此靠近,就会被 Dnp 淬火。但是,如果发生裂解,Dnp 将无法淬火,荧光板读取器可以读取这些排放。根据厂家的建议,通过轻轻上下移液,重新暂停肽。
例如,在70%乙醇中重新被重新暂停,最终浓度为1毫摩尔。如果肽不通过移液很好地重新暂停,将含有肽和溶剂的管放在声波浴中,直到完全重新暂停。将肽的100微升等分分分配到光阻尼或耐药管中,以保护肽免受漂白。
将等分储存在零下 20 摄氏度。首先打开板读卡器并等待自检完成。接下来,打开所连接计算机上的操作软件,并确保它与板读卡器连接。
打开温度设置,将其设置为所需的温度,以获得最佳性能的蛋白酶,这是 30 摄氏度,在这种情况下。要设置实验,请单击控制仪器设置,选择动力学,然后选择荧光。输入 330 纳米的激发波长和 390 纳米的发射波长。
取消选择自动截止并选择中等/正常灵敏度。为检测选择一小时的运行时间,每 60 秒选择一次测量。在第一次测量前设置五秒钟的混合时间,在每次测量前设置 3 秒的混合时间。
最后,选择要读取的井。如文本协议所述,为蛋白酶准备适当的测定缓冲液,并在冰上冷却缓冲液。将一个纯黑色聚苯乙烯未处理的平底96孔板放在冰上,下面有一个薄金属板,以支持冷却和稳定性。
必须使用黑板作为检测板,以防止邻近油井的荧光泄漏。每肽,每个检测准备三个技术复制,每个样本的总体积为100微升。将适当数量的测定缓冲液放入检测板的每个井中。
在每个井中加入0.5微升蛋白酶。到六孔,添加0.5微升缓冲液,而不是各自的蛋白酶。其中三个将是盲目的对控制,另外三个将是肽对等控制。
除了盲控外,将五微升肽加入到每井50微摩尔的最终浓度中。在三个盲控井中,每口都加入五微升缓冲液,而不是肽。将板插入荧光板读卡器,然后单击"启动"。
在开始数据分析之前,请保存实验文件。单击导出,然后将文件导出为 txt。将 txt 文件导入电子表格。
首先创建一个图形,根据每个样本每个技术复制的 x 轴上的时间绘制 y 轴上的相对荧光单位。选择图形在线性范围内的数据范围,以及最接近荧光开始增加的数据范围。在第二个图形上绘制所选数据并添加线性趋势线。
在趋势线选项中,选择图表上的显示方程。方程将显示 V 最大值,对应于趋势线的斜率。从三个技术复制中计算每个样本的平均 V 最大值。
再重复两次实验后,为了获得三个生物复制,根据三个独立的生物复制的数据计算标准偏差。人类MERS冠状病毒、EMC/2012 S2原位,以及骆驼衍生的双突变菌株HKU205,以及EMC/2012的单突变变种,显示EMC/2012肽被有效切割,而HU205的S2原肽几乎没有分裂发生。EMC/2012 A-S 变异 S2 原肽的裂解被强烈减少,并且几乎没有 EMC/2012 S 到 I 变异 S2 原肽的裂解。
另一项毛茸茸裂解测定显示,与人类 MERS 冠状病毒 EMC/2012 S2 主要位点相比,骆驼衍生的摩洛哥 213 S2 主要基点仅出现最小的裂解。在原型S1/S2肽、FECV I和4 S1/S2中观察到富林裂解,但在变异的S1/S2肽FIPV I黑色S1/S2中未观察到。同样,毛皮能够切割原型S2原肽,FECV II 1683 S2素,但不是变异的S2原肽,FECV I和4S2素,FIPV I黑色S2素,和FIPV II 1146 S2素。
按照这个程序,西方的印迹分析或氨基荧光测定,使用感兴趣的全长蛋白质进行验证蛋白裂解,或者在这种情况下,如果裂解导致病毒融合蛋白的致生版本。
本文介绍了一种荧光基肽切割检测法,用于快速筛选蛋白酶对病毒融合肽的蛋白水解活性。该方法也可应用于蛋白序列中的其他氨基酸基序,以评估蛋白酶活性。
Rapid, quantitative assessment of proteolytic cleavage at viral fusion protein sites is critical for target validation and mechanistic de-risking in antiviral drug discovery. This fluorogenic peptide cleavage assay enables high-throughput screening of protease-substrate interactions, supporting predictive confidence in early-stage portfolio decisions. Its flexibility accelerates evaluation of viral adaptation and protease inhibitor strategies across diverse viral strains.
This assay bridges early discovery and lead identification by enabling rapid, quantitative screening of protease activity on viral fusion protein motifs, supporting both target validation and inhibitor profiling.