2019年6月2日
本文的目的是概述由单体α-突触核蛋白生成纤维、后续质量控制以及在体内使用预先形成的纤维的步骤。
全球各地的实验室正在使用α-突触核蛋白预制纤维模型来研究突触核蛋白病。尽管许多实验室已成功应用该模型,但部分研究团队在制备纤维以及诱导稳定的α-突触核蛋白病理方面遇到了不一致的问题。我们希望本实验方案——详细描述了从α-突触核蛋白单体生成纤维的过程,以及在体内的预制纤维使用方法——能够解答研究人员在使用该模型时所遇到的疑问。
α-突触核蛋白预形成纤维模型可重现帕金森病的关键特征,例如α-突触核蛋白病理改变和神经退行性变。已有研究表明,该模型可在某些动物模型中引发轻度运动功能障碍。含有磷酸化α-突触核蛋白的包涵体形成以及神经退行性变的长期发展过程,为研究人员提供了突触核蛋白病进展过程中的不同阶段,可用于研究并作为潜在治疗干预的靶点。
正在演示定制玻璃针制备过程的是我们的实验室技术员 Christopher Kemp。开始此操作时,将α-突触核蛋白单体置于冰上解冻。通过轻轻弹击离心管,重新悬浮解冻后的单体。
在15,000 g、4°C条件下离心10分钟。然后将上清液转移至洁净的1.5 mL微量离心管中,并记录转移的体积。用1×dPBS将单体稀释至终浓度为每毫升5 mg。
短暂涡旋混匀,短暂离心以将管底所有液体收集至管底。随后使用封口膜密封微量离心管管盖。将管子放入带盖的轨道式恒温混匀仪中,在37°C、1,000 rpm的振荡条件下孵育七天。
七天结束时,试管内的内容物应呈现浑浊状态。首先,穿戴好所有必要的个人防护装备,包括手套、实验服和面罩。然后在细胞培养超净台中,将直径为3.2 mm的探头连接至转换器。
将超声破碎仪的振幅设置为30%,脉冲设置为开启1秒、关闭1秒,时间设置为1分钟。在室温下解冻纤维,解冻后仍在生物安全柜内操作,用无菌dPBS稀释纤维。接着,用70%乙醇浸湿实验室纸巾,并用其擦拭超声破碎仪的探头以进行清洁。
将探针尖端浸入双蒸水中,脉冲10次以进一步清洁探针。随后用实验用纸巾将探针擦干。将清洁后的探针尖端放入含有稀释纤维的离心管中,并将尖端置于管底。
使用先前设定的参数对稀释后的纤维进行超声处理,在每次脉冲过程中上下移动探头,以确保液体中的所有纤维均被超声处理。超声处理后,在2,000 g条件下短暂离心1秒,使管壁上的液体全部收集至管底。将探头尖端浸入1% SDS溶液中,脉冲10次以清洗探头。
然后,将探头从SDS中取出,浸入双蒸水中,脉冲处理10次。用70%乙醇润湿的实验室纸巾擦拭探头,并用干燥的实验室纸巾擦干。将探头从转换器上拆下并妥善保存。
此后,先用 1% SDS 擦拭生物安全柜内的所有表面,再用 70% 乙醇擦拭。开始操作时,将硅化玻璃毛细管插入玻璃微电极拉制仪中。打开加热元件,使连接的重物拉伸被加热的玻璃毛细管。
接下来,使用剪刀在拉制好的玻璃毛细管中间最细处剪断,并将玻璃针从玻璃针拉制仪上取下。然后,用剪刀截取一段长约40 mm的热缩管。将热缩管套在10微升斜面注射器的金属针头上。
使用明火加热并使热缩管紧贴针头,同时确保旋转针头以均匀受热。小心地将拉制的玻璃针较粗的一端套入注射器的金属针上。然后,截取一段长约 40 mm 的热缩管,小心地套在玻璃针上,使其覆盖玻璃针的基部与注射器金属针的重叠区域。
使用明火加热热缩管,以将玻璃针固定在金属针上。为进一步固定针头并防止潜在泄漏,另剪一段长约40 mm的热缩管,小心地将其套过玻璃针,使其覆盖玻璃针底部与注射器金属针的连接处。使用明火加热热缩管,使玻璃针与金属针牢固连接。
然后,使用剪刀修剪玻璃针,使针尖长度约为 8 mm。测试针头时,用蒸馏水填充一支带有 26 号针头的 1 mL 注射器。从定制的玻璃针注射器中取出金属推杆,将装有水的注射器的针头插入定制注射器的底部。
检查玻璃针与金属针接口处是否有泄漏,并确认水流稳定。然后,用蒸馏水充满一个微量离心管。使用定制的玻璃针头注射器吸取蒸馏水。
检查针头,确认液体已吸入注射器内且无气泡。若存在气泡,或水未被吸入针头,可修剪针头以缓解压力。此后,将带有连接玻璃针头的注射器小心存放于注射器盒中,待手术时取出使用。
通过透射电子显微镜观察可确认存在长纤维状结构。相比之下,α-突触核蛋白单体几乎不可见,且无明确形态。随后使用硫黄素T检测法进一步验证纤维的类淀粉样特征。
一项代表性检测结果显示,与小鼠PFFs相比,dPBS和小鼠单体产生的相对荧光单位信号较低。人源α-突触核蛋白单体产生的信号与小鼠单体相似。而人源PFFs产生的信号同样高于单体。
为了评估可沉淀纤维的存在,需进行沉降实验。在小鼠和人源PFF样本中,沉淀部分的蛋白含量应高于上清部分。相比之下,小鼠和人源单体中的大部分蛋白存在于上清中,而沉淀中含量极少。
小鼠和人源PFF均经过超声处理,以获得适合诱导α-突触核蛋白包涵体形成的适当长度的PFF。对约500根纤维的全面检测显示,小鼠纤维的平均长度约为44纳米,其中86.6%的PFF长度在60纳米或以下。
然而,人源PFFs的平均长度约为55.9纳米,其中69.6%的PFFs长度在60纳米或以下。通过免疫组织化学方法确认PFF在体内的功效。在黑质中形成的包涵体与路易小体具有相似的特性,即含有磷酸化的α-突触核蛋白,包含淀粉样结构,可被硫黄素S染色,并且对蛋白酶K消化具有抗性。
超声处理可能使操作者暴露于气溶胶化的预形成纤维。因此,应穿戴适当的防护装备,并在通风橱内进行超声处理,以尽量降低暴露风险。
本文介绍了一种用于突触核蛋白病(特别是帕金森病)体内模型的α-突触核蛋白预制纤维(α-syn PFFs)制备与验证的全面实验方案。该方案详细描述了从单体蛋白制备到质量控制及神经外科注射的各个步骤,旨在标准化操作流程,确保在啮齿类动物模型中获得可重复的α-突触核蛋白病理变化。
α-突触核蛋白预制纤维(PFFs)的标准化制备与验证对于突触核蛋白病的建模以及可重复的帕金森病研究至关重要。本方案通过确保纤维质量的一致性、支持稳定的体内病理表型,并促进实验室间的可比性,解决了关键发现阶段的挑战。可靠的PFF制备为临床前神经退行性疾病模型的预测可信度提供了基础,并为研发项目中的治疗假设验证提供了依据。
本方案涵盖了从早期发现到临床前验证的全过程,支持神经退行性疾病研究流程中的假设验证、检测方法开发和转化研究。