Name: 小鼠右心室系统及缺氧诱发肺动脉高血压的侵入性血液动力学评估 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-10-24T13:30:00.000+00:00
Duration: 4 min 54 s
Description: 学习小鼠右心室及肺动脉侵入性血液动力学评估方法，采用开胸手术技术同步测量右心室压与肺动脉压。该方案适用于肺动脉高压模型的研究，为心血管功能研究提供可靠数据。

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本研究由北京协和医学院研究生教育与教学改革项目（10023-2016-002-03）、阜外医院青年基金（2018-F09）以及北京市心血管植入材料临床前研究与评价重点实验室主任基金（2018-PT2-ZR05）资助。

动物实验方案经中国医学科学院阜外医院机构动物护理和使用委员会审查并批准（编号：0000287）。实验动物的饲养和管理均按照中国动物福利指南进行。
注意：将8至12周龄的雄性C57BL小鼠饲养在12小时黑暗/12小时光照循环的环境中。PAH小鼠在氧浓度为10%的条件下饲养4周，通过氧控型低氧舱维持该环境以诱导肺动脉高压；对照组小鼠在相同条件下饲养于室内空气（21%氧气）中。在低氧刺激4周结束时进行右心室压（RVP）和肺动脉压（PAP）的测量。
1. 术前准备
<ol>
	<li>在进行血流动力学实验前，将压力传感器导管（规格：1 Fr）浸泡在室温的0.9%生理盐水中至少30分钟。</li>
	<li>使用0.22 μm滤膜过滤2,2,2-三溴乙醇溶液，并储存在4°C冰箱中。</li>
	<li>准备清洁的手术器械和用品，例如手术用手套。</li>
	<li>准备10 mL 1.0%消化酶溶液用于导管清洗。</li>
	<li>将压力传感器导管连接至压力-容积系统。</li>
	<li>在对每只小鼠进行压力测量前，校准压力传感器。
	<ol>
		<li>将校准旋钮调至0 mmHg和25 mmHg，向数据采集软件发送验证压力信号，并在软件中配置校准参数。</li>
		<li>将旋钮转至Transducer位置，并调节Balance旋钮以归零基线。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>设置标准体视显微镜和温控小动物手术台，以在手术期间维持动物体温。</li>
	<li>设置显微手术用照明系统，为手术区域提供充足的光线。</li>
</ol>
2. 开胸手术与血流动力学测量
<ol>
	<li>通过腹腔注射（i.p.）给予小鼠 250 mg/kg 的 2,2,2-三溴乙醇进行麻醉。如有需要，可在手术过程中以原剂量的 1/3 至 1/2 追加补充剂量。</li>
	<li>使用剃毛器和脱毛膏去除小鼠胸部和颈部的毛发（图 1A，2A）。</li>
	<li>将每只小鼠仰卧位固定在可调节温度的小动物手术台上，以在手术期间维持其体温（37 °C）。</li>
	<li>用 70% 乙醇清洁手术区域。</li>
	<li>待麻醉起效后，通过脚趾夹捏法确认麻醉深度是否充分。</li>
	<li>在颈部皮肤做正中切口（图 1A）。</li>
	<li>使用弯头镊子分离骨骼肌，并暴露气管（图 1B, 1C）。</li>
	<li>经口插入经改造的 22 G 静脉套管导管进行气管插管。使用镊子确认导管位于气管内（图 1D）。</li>
	<li>将导管连接至小动物呼吸机。根据呼吸机用户手册10中的说明，依据体重计算并设定呼吸频率和潮气量。例如，对于一只 30 g 的小鼠，根据所述计算方法，设定呼吸频率为 133 次/分钟，潮气量为 180 μL。</li>
	<li>使用胶带固定通气导管。</li>
	<li>再次通过脚趾夹捏法确认麻醉深度是否充分。</li>
	<li>在胸部皮肤做正中切口，并使用电凝设备小心分离胸部肌肉（图 2B, 2C）。</li>
	<li>使用剪刀从胸骨中部剪开，暴露胸腔（图 2D）。</li>
	<li>在开胸手术过程中，使用电凝设备控制任何出血。</li>
	<li>使用牵开器暴露右心室（图 2E）。</li>
	<li>用 25 G 针头创建一个小通道，将浸有生理盐水的压力传感器导管插入右心室，以测量右心室压（RVP）（图 2F 和 图 3A, 3C）。</li>
	<li>手持导管电缆，沿肺动脉同轴方向穿过肺动脉瓣。观察压力波形，并获得稳定的肺动脉压（PAP）信号（图 3B, 3D）。</li>
	<li>使用数据采集系统和软件记录血流动力学数据。</li>
	<li>完成最终测量后，通过腹腔注射过量的 2,2,2-三溴乙醇溶液，人道处死小鼠。</li>
	<li>小心地从右心系统取出导管，并将其放入含有 1% 消化酶溶液的 1 mL 注射器中。</li>
	<li>使用蒸馏水持续轻柔冲洗导管，并将其存放于原装盒中。</li>
</ol>
3. 血流动力学数据分析
注意：血流动力学数据使用分析软件11&#160;（材料表）进行记录和分析。
<ol>
	<li>对每只小鼠，选择至少10个连续且稳定、无噪声的心跳周期，以获得每个参数的右心室压（RVP）或肺动脉压（PAP）数据的平均值。</li>
	<li>采用学生氏t检验比较正常空气对照组与低氧组。注意：p &#60; 0.05 被认为具有统计学显著性。数据以均值 ± 标准差表示。</li>
</ol>

<ol><li>Humbert, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+therapeutic+interventions+for+patients+with+pulmonary+arterial+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Advances in therapeutic interventions for patients with pulmonary arterial hypertension.</a> Circulation. 130 (24), 2189-2208 (2014).</li>
<li>Chatterjee, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Swan-Ganz+catheters%3A+past%2C+present%2C+and+future%3A+a+viewpoint%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">The Swan-Ganz catheters: past, present, and future: a viewpoint.</a> Circulation. 119 (1), 147-152 (2009).</li>
<li>Adamson, P. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CHAMPION+trial+rationale+and+design%3A+the+long-term+safety+and+clinical+efficacy+of+a+wireless+pulmonary+artery+pressure+monitoring+system%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiac+Failure%22%5BJournal%5D)">CHAMPION trial rationale and design: the long-term safety and clinical efficacy of a wireless pulmonary artery pressure monitoring system.</a> Journal of Cardiac Failure. 17 (1), 3-10 (2011).</li>
<li>Abraham, W. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wireless+pulmonary+artery+haemodynamic+monitoring+in+chronic+heart+failure%3A+a+randomised+controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22The+Lancet%22%5BJournal%5D)">Wireless pulmonary artery haemodynamic monitoring in chronic heart failure: a randomised controlled trial.</a> The Lancet. 377 (9766), 658-666 (2011).</li>
<li>Adamson, P. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wireless+pulmonary+artery+pressure+monitoring+guides+management+to+reduce+decompensation+in+heart+failure+with+preserved+ejection+fraction%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%3A+Heart+Failure%22%5BJournal%5D)">Wireless pulmonary artery pressure monitoring guides management to reduce decompensation in heart failure with preserved ejection fraction.</a> Circulation: Heart Failure. 7 (6), 935-944 (2014).</li>
<li>Shatat, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+Kruppel-like+Factor+4+modulates+pulmonary+arterial+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Respiratory+Cell+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Endothelial Kruppel-like Factor 4 modulates pulmonary arterial hypertension.</a> American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 50 (3), 647-653 (2014).</li>
<li>SPR-1000 Mouse Pressure Catheter. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://millar.com/products/research/pressure/single-pressure-no-lumen/spr-1000">https://millar.com/products/research/pressure/single-pressure-no-lumen/spr-1000</a> (2019).</li>
<li>Tabima, D. M., Hacker, T. A., Chesler, N. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+right+ventricular+function+in+the+normal+and+hypertensive+mouse+hearts+using+admittance-derived+pressure-volume+loops%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Measuring right ventricular function in the normal and hypertensive mouse hearts using admittance-derived pressure-volume loops.</a> American Journal of Physiology Heart and Circulatory Physiology. 299 (6), 2069-2075 (2010).</li>
<li>Skuli, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+deletion+of+hypoxia-inducible+factor-2alpha+%28HIF-2alpha%29+alters+vascular+function+and+tumor+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Endothelial deletion of hypoxia-inducible factor-2alpha (HIF-2alpha) alters vascular function and tumor angiogenesis.</a> Blood. 114 (2), 469-477 (2009).</li>
<li>Harvard Inspira Advanced Safety Ventilator User's Manual. , Available from: 
 <a target="_blank" href="http://www.harvardapparatus.com/media/harvard/pdf/Inspira_557058_9.pdf.">http://www.harvardapparatus.com/media/harvard/pdf/Inspira_557058_9.pdf.</a> (2019).</li>
<li>LabChart. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.adinstruments.com/products/labchart?creative=290739105773_keyword=labchart_matchtype=e_network=g_device=_gclid=CjwKCAjwxrzoBRBBEiwAbtX1n42I2S06KmccVncUHkmExU8KKOXXREyzx8bvTrxYMSze-ooE0atcbRoCliwQAvD_BwE">https://www.adinstruments.com/products/labchart?creative=290739105773_keyword=labchart_matchtype=e_network=g_device=_gclid=CjwKCAjwxrzoBRBBEiwAbtX1n42I2S06KmccVncUHkmExU8KKOXXREyzx8bvTrxYMSze-ooE0atcbRoCliwQAvD_BwE</a> (2019).</li>
<li>Marius, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Definitions+and+diagnosis+of+pulmonary+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+College+of+Cardiology%22%5BJournal%5D)">Definitions and diagnosis of pulmonary hypertension.</a> Journal of the American College of Cardiology. 62 (25), 42-50 (2013).</li>
<li>Ciuclan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+murine+model+of+severe+pulmonary+arterial+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Respiratory+and+Critical+Care+Medicine%22%5BJournal%5D)">A novel murine model of severe pulmonary arterial hypertension.</a> American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 184 (10), 1171-1182 (2011).</li>
<li>Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+of+endotracheal+intubation+and+pulmonary+functional+assessment+for+repeated+studies+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice.</a> Journal of Applied Physiology. 87 (6), 2362-2365 (1999).</li>
<li>Chen, W. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+ventricular+systolic+pressure+measurements+in+combination+with+harvest+of+lung+and+immune+tissue+samples+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Right ventricular systolic pressure measurements in combination with harvest of lung and immune tissue samples in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (71), 50023(2013).</li>
<li>Ma, Z., Mao, L., Rajagopal, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemodynamic+characterization+of+rodent+models+of+pulmonary+arterial+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Hemodynamic characterization of rodent models of pulmonary arterial hypertension.</a> Journal of Visualized Experiments. (110), 53335(2016).</li>
<li>Chen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Berberine+attenuates+hypoxia-induced+pulmonary+arterial+hypertension+via+bone+morphogenetic+protein+and+transforming+growth+factor-%CE%B2+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cellular+Physiology%22%5BJournal%5D)">Berberine attenuates hypoxia-induced pulmonary arterial hypertension via bone morphogenetic protein and transforming growth factor-β signaling.</a> Journal of Cellular Physiology. , (2019).</li>
<li>Bueno-Beti, C., Hadri, L., Hajjar, R. J., Sassi, Y. The Sugen 5416/Hypoxia mouse model of pulmonary arterial hypertension. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBueno-Beti%2C+C+%22Experimental+Models+of+Cardiovascular+Diseases.+Methods+in+Molecular+Biology.+vol+1816%22">Experimental Models of Cardiovascular Diseases. Methods in Molecular Biology. vol 1816</a>. Ishikawa, K. , Humana Press. New York, NY. (2018).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

气管插管是开胸手术的第一步重要操作。对于大鼠或小鼠等小型动物，传统的气管插管方法是在气管上做T形切口，然后将Y型气管导管直接插入气管内。在实际操作中，我们发现该方法存在操作困难的问题。Y型气管导管对小型动物而言过大，且与气管之间形成夹角，因此难以固定导管。此外，在开胸手术过程中，一旦插管意外脱出气道，通常会导致动物因失去机械通气支持而死亡。因此，我们对经气管插管方法进行了改良14&#160;：先在皮肤上做切口，分离肌层以暴露气管（图1C），然后通过动物口腔将气管导管直接插入气道。使用镊子夹闭气管可方便地确认导管在气管内的位置（图1D）。拔出导引针后仅保留套管，采用22 G静脉留置针作为插管导管。插管完成后可轻松固定导管。该方法在手术期间管理插管安全可靠，可显著提高小型动物开胸手术的成功率。但该方法需要经过训练和实践掌握。
关于经胸腔闭合方法进行右心血...

肺动脉高压（PAH）是一种慢性且严重的 cardiopulmonary 疾病，其特征为肺动脉压（PAP）和右心室压（RVP）升高，病因是小肺动脉的细胞增殖和纤维化1。肺动脉导管，也称为 Swan-Ganz 导管2，常用于临床对 RVP 和 PAP 的监测。此外，一种无线 PAP 监测系统已应用于临床3,4,5。为了在小鼠中模拟该疾病以供研究，通常采用低氧环境来复制人类 PAH 的临床表现6。在动物 PAP 评估中，大型动物可通过与人类相同的肺动脉导管技术相对容易地进行监测，而小动物（如大鼠和小鼠）由于体型较小，评估难度较大。利用超小型 1 Fr 导管可实现对小鼠右心室系统的血流动力学测量7。文献中已有报道测量小鼠 RVP 和 PAP 的方法8,9，但该方法缺乏详细的描述。由于左心和右心系统在解剖结构上的差异，RVP 和 PAP 的测量比左心室压更为困难。
为了在同一小鼠中获取肺动脉压（PAP）和右心室压（RVP）参数，我们介绍了一种基于开胸手术的右心血流动力学测量方法，阐述了该方法在健康小鼠和肺动脉高压（PAH）小鼠中的验证过程，并说明了如何在复杂的开胸手术过程中避免产生人为数据。尽管该技术最好由训练有素的外科医生操作，但其优势在于能够在同一只小鼠中同时评估PAP和RVP。

<table><tbody><tr><td>2,2,2-三溴乙醇</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T48402-5G</td><td>用于麻醉</td></tr><tr><td>动物体温控制器</td><td>Physitemp Instruments, Inc.</td><td>TCAT-2LV</td><td>用于温度控制</td></tr><tr><td>解剖镊</td><td>Fine Science Tools, Inc.</td><td>11274-20</td><td>用于手术</td></tr><tr><td>Gemini 电凝系统</td><td>Gemini</td><td>GEM 5917</td><td>用于手术</td></tr><tr><td>静脉导管（22G）</td><td>BD angiocath</td><td>381123</td><td>用于插管</td></tr><tr><td>LabChart 7.3</td><td>ADInstruments</td><td></td><td>用于数据分析</td></tr><tr><td>照明系统</td><td>Olympus</td><td></td><td>用于手术</td></tr><tr><td>Mikro-Tip 导管</td><td>Millar Instruments, Houston, TX</td><td>SPR-1000</td><td>用于压力测量</td></tr><tr><td>Millar 压力-容积系统</td><td>Millar Instruments, Houston, TX</td><td>MVPS-300</td><td>用于压力测量</td></tr><tr><td>O2 控制器与低氧舱</td><td>Biospherix</td><td>ProOx 110</td><td>用于慢性低氧处理</td></tr><tr><td>PowerLab 数据采集系统</td><td>ADInstruments</td><td>PowerLab 16/30</td><td>用于数据记录</td></tr><tr><td>剪刀</td><td>Fine Science Tools, Inc.</td><td>14084-08</td><td>用于手术</td></tr><tr><td>小型动物呼吸机</td><td>Harvard Apparatus</td><td>Mini-Vent 845</td><td>用于手术</td></tr><tr><td>体视显微镜</td><td>Olympus</td><td>SZ61</td><td>用于手术</td></tr><tr><td>手术胶带</td><td>3M</td><td></td><td>用于手术</td></tr><tr><td>Terg-a-zyme 酶清洗剂</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z273287-1EA</td><td>用于导管清洗</td></tr></tbody></table>

小鼠右心室系统侵入性血流动力学评估及缺氧诱导的肺动脉高压

Invasive Hemodynamic Assessment for the Right Ventricular System and Hypoxia-Induced Pulmonary Arterial Hypertension in Mice

肺动脉高压（PAH）是一种慢性且严重的 cardiopulmonary 疾病。小鼠是模拟该疾病的常用动物模型。然而，在小鼠中评估右心室压力（RVP）和肺动脉压力（PAP）在技术上仍具挑战性。由于左心和右心系统在解剖结构上的差异，RVP 和 PAP 的测量比左心室压力更为困难。本文介绍了一种稳定的右心血流动力学测量方法，并利用健康小鼠和 PAH 小鼠对该方法进行了验证。该方法基于开胸手术和机械通气支持，与闭胸操作相比更为复杂。尽管该手术需要经过良好训练的外科操作人员，但其优势在于可同时获得 RVP 和 PAP 参数，因此是评估 PAH 模型的优选方法。

通过25 G针头扩增的隧道将压力换能器导管插入右心室（图3A），获得典型的右心室压力（RVP）波形（图3C）。在导管通过肺动脉瓣时，需持续调整并缓慢推进导管，使其始终保持与肺动脉同轴（图3B）。当压力传感器成功进入肺动脉后，出现具有特征性重搏切迹的典型肺动脉压（PAP）波形（图3D）。为避免产生人为数据，我们观察波形是否存在噪声（图4），或导管零点是否发生漂移（图5）。若出现上述情况，则进行校正，并将含噪声的波形段排除在数据分析之外。
肺动脉高压（PAH）的特征是肺动脉压（PAP）和右心室压（R...

本文介绍了一种通过开胸手术方法在小鼠中进行右心室和肺动脉有创血流动力学评估的实验方案。

肺动脉高压（PAH）是一种慢性且严重的 cardiopulmonary 疾病。小鼠是用于模拟该疾病的常用动物模型。

本方案是一种基于开胸手术的血流动力学评估方法，适用于小动物（如小鼠）的右心室和肺动脉压力评估。该操作的优势在于可同时获取心室压（VP）和肺动脉压（PAP）参数，因此更适用于肺动脉高压（PAH）模型的评估。首先准备手术所需的设备。在进行血流动力学实验前，将压力传感器导管浸入室温的0.9%生理盐水中至少30分钟。然后将导管连接至压力-容积系统。通过将校准旋钮调至零和25毫米汞柱，向数据采集软件发送验证压力信号，从而校准压力传感器，然后配置校准设置。将旋钮转至传感器位置，并调节平衡阀使基线归零。设置一台标准体视显微镜、一个温度可控的小动物手术台以及一套用于显微手术的照明系统。当小鼠被适当麻醉后，使用剃毛器和脱毛膏去除胸部和颈部的毛发。将小鼠仰卧位固定在温度可控的手术台上。确认麻醉生效后，在颈部皮肤做正中切口。使用弯头镊子解剖骨骼肌，暴露气管。经口使用22号静脉套管导管进行插管，并用镊子确认导管位于气管内。将导管连接至小型动物呼吸机，并用胶带固定以确保通气稳定。然后，在胸部皮肤上做一正中切口，使用电灼工具仔细分离胸肌。用剪刀在胸骨中部横向剪开，暴露胸腔。务必使用电灼工具防止任何出血。使用拉钩暴露右心室，然后将浸有生理盐水的压力换能器导管通过25号针头创建的小隧道插入右心室，以测量右心室压力（RVP）。握住导管电缆，沿肺动脉同轴方向穿过肺动脉瓣。观察压力波形，并获取稳定的肺动脉压力（PAP）信号。接下来，使用数据采集软件记录血流动力学数据。小心地将导管从右心系统中取出，并插入含有1%消化酶溶液的1毫升注射器中。该方案已成功用于通过将压力传感器导管插入小鼠右心室和肺动脉，获取右心室压（RVP）和肺动脉压（PAP）波形。为避免产生人为数据，数据分析中排除了含噪声的片段，并对导管零点水平发生漂移的情况进行了校正。对诱导慢性缺氧的小鼠测量了右心室压（RVP）和肺动脉压（PAP），并将结果与对照组进行比较。慢性缺氧组的收缩期PAP、舒张期PAP、平均PAP以及右心室收缩压均显著升高。最重要的是要小心地将压力换能器导管插入右心室，确保避免导管受损，并确认屏幕上出现平滑的右心室压力波形。

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医学

小鼠右心室系统及缺氧诱发肺动脉高血压的侵入性血液动力学评估

本文介绍了一种特异性强且快速的实验方案，可同时研究右心功能、肺部炎症及免疫反应，可作为学习工具。视频和图示以系统化的团队协作方式描述了生理学检测和显微解剖技术，该方法可灵活适用于从小规模到大规模的各种研究。...

小鼠右心室收缩压测量联合肺组织与免疫组织样本采集

本文提供了一种用于评估小鼠右心室大小和肺动脉高压的超声心动图检查方案。应用范围包括心肌病和肺血管疾病转基因及毒素诱导小鼠模型的表型确定以及系列评估。...

小鼠右心的超声心动图评估

右心室（RV）功能障碍在心血管疾病的发病机制中至关重要，但目前可用于评估右心室功能的方法十分有限。近年来超声成像技术的进步为长期纵向研究右心室提供了无创且准确的选择。本文中，我们详细描述了一种利用右心室压力超负荷小鼠模型进行的逐步超声心动图检测方法。...

经胸超声心动图评估肺动脉缩窄小鼠模型中右心室结构与功能

肺动脉高压（PAH）是一种累及肺小动脉的疾病，可导致肺小动脉闭塞并引发右心室衰竭。啮齿类动物PAH模型对于理解PAH的病理生理机制至关重要。本文展示了在小鼠和大鼠中通过右心导管术和超声心动图进行血流动力学表征的方法。...

肺动脉高压啮齿类动物模型的血流动力学表征

我们介绍了一种通过诱导急性呼吸窘迫综合征（ARDS）在猪模型中建立右心室功能障碍的实验方案。我们展示了通过在主动脉和肺动脉周围放置血流探头来侵入性监测左心室和右心室心输出量的方法，以及在主动脉和肺动脉内进行血压测量的技术。...

ARDS 大动物模型中主动脉与肺动脉血流动力学的有创监测

本方案描述了一种基于低氧暴露并联合注射血管内皮生长因子（VEGF）受体拮抗剂来诱导小鼠肺动脉高压（PH）的方法。动物在启动方案后3周内发展出肺动脉高压及右心室（RV）肥厚。本文还介绍了该模型的功能学和形态计量学特征表征。...

利用低氧/SU5416模型在小鼠中诱导和表征肺动脉高压

本文提供了一种研究右心室衰竭机制的有效方法。通过使用自制的手术器械，建立了一种更为简便且高效的肺动脉缩窄方法。此外，还提供了利用超声心动图和导管插入术评估该方法质量的技术。...

通过肺动脉缩窄诱导小鼠右心室衰竭及右心室功能评估

本方案描述了在肺动脉高压大鼠模型中，对右心室形态和功能进行超声心动图表征的方法。...

肺动脉高压大鼠模型中右心室功能的全面超声心动图评估

本方案提供了在小鼠中进行多次静脉推注给药及有创血流动力学监测的逐步操作流程。研究人员可利用本方案开展未来针对肺动脉高压的治疗性化合物筛选。...

低氧诱导小鼠肺动脉高压模型中的多次静脉推注给药与侵入性血流动力学评估

详细介绍右心室功能评估方法将提升肺动脉高压研究的质量和可靠性，为未来的研究提供坚实的框架，并增强不同实验室之间的可重复性。...

肺动脉高压实验模型中右心室功能的评估

学习小鼠右心室及肺动脉侵入性血液动力学评估方法，采用开胸手术技术同步测量右心室压与肺动脉压。该方案适用于肺动脉高压模型的研究，为心血管功能研究提供可靠数据。

小鼠右心室系统侵入性血流动力学评估及缺氧诱导的肺动脉高压

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