February 19th, 2020
在这里,我们描述了一种通过使用定量PCR(qPCR)检测的表观遗传特征来确定免疫细胞特性和纯度的可靠方法。特定位点的脱甲基化作为特定细胞类型的唯一标识符,允许识别CD8+、调节或Th17 T细胞。
该协议为确定免疫细胞特性和纯度提供了一种标准化的方法,并解决了流式细胞学的局限性,如样品要求大、用户对用户变异性高、主观数据分析等。此检测包括一个自动化数据分析模板,允许用户客观地评估免疫细胞的身份和纯度。这与多重检测控制一起,为评估免疫细胞特性和纯度提供了一种易于标准化的交钥匙方法。
展示这项技术的将是杰里·古兹曼,一位实验室的科学家。从感兴趣的造血细胞样本中分离出基因组DNA后,使用基因组DNA的微升,通过获得260、280和230纳米的光学密度,测量分光光度计上样品的纯度。接下来,将400至1200纳米的基因组DNA样本稀释至142微升的最终体积,从基因组DNA分离试剂盒中用洗脱缓冲液。
将校准器的 75 微升添加到 67 微升的洗脱缓冲液中。将参考基因组DNA的1200纳米图稀释至142微升的微升和洗脱缓冲液。然后在56摄氏度下孵育管子5分钟,在热混合器中每分钟孵育900转。
对于双硫酸盐的转化,在所有管中加入270微升的二硫化铵和90微升的THFA。并涡流管,以确保彻底混合。简要地旋转样品以收集液体,并在 80 摄氏度和每分钟 900 转时将管放入热混合器中 45 分钟。
然后再次短暂地旋转样品,让样品冷却到室温三到五分钟。对于双硫纤维转化后DNA纯化,涡流DNA分离顺磁珠30秒。根据瓶子上列出的体积,在洗涤缓冲液中加入乙醇和异丙醇。
再次涡流,直到珠子被完全重新暂停,并在870微升的解结结合缓冲液和105微升的DNA结合顺磁珠到每个管。在短暂旋转样品之前,将管子搅拌。在每个管中加入570微升2丙醇,通过涡流混合。
在室温下孵育管7分钟,每分钟50 RPM,然后再次短暂地旋转管子,并将它们放在磁性机架上5分钟。在孵育结束时,在不干扰珠子的情况下取出超生。用缓冲液 1 清洗样品,然后旋转管。
短暂离心后,将管子放回机架中三分钟,在不干扰珠子的情况下取出超生。用洗涤缓冲液 2 清洗样品两次,在 65 摄氏度下干燥管管 15 分钟。接下来,向每个管添加 60 微升进化缓冲液。
在室温下孵育7分钟后,每分钟旋转1400次,短暂地旋转管子,将管子返回磁铁两分钟。在孵化结束时,55微升的二硫化基将含有的DNA转化为新管,而不会干扰珠子。若要在样本上运行定量 PCR,请在定量 PCR 软件中为每个标准分配任务标准,并根据表指定最终副本编号。
准备标准DNA的序列稀释,并为目标细胞类型准备一种定量PCR主混合鸡尾酒。和一个定量的PCR大师混合鸡尾酒为GAPDH,根据表。将模板DNA的三微升加载到96孔圆底板的适当孔中,然后装载7微升主混合。
当所有孔都已装载时,用定量 PCR 薄膜密封板,并在将板加载到定量 PCR 仪器上之前短暂旋转板。然后运行表中所示的反应。在运行完成时,将定量 PCR 数据导出为 txt 或 xlsx 文件。
净化双硫化转化的DNA后,如所证明的顺磁节拍,对25微升的DNA进行检测。将双硫酸盐转化的DNA转移到一个新的管中,并将样品的两微升添加到单独的PCR条管中。将两微升水添加到无模板控制管中,并根据表为所有样品准备预增母混合。
在每个管和盖、涡流中加入23微升主混合,然后短暂地旋转管子。然后使用加热盖在热循环器上运行预扩增协议。运行完成后,短暂旋转管,并转移到放大DNA的微升到新的管。
然后用78微升水稀释样品至1至40浓度,并运行样品的定量PCR,如所证明的。在这里,从CD8+T细胞测定获得的代表性数据,从分析外周血,单核细胞和T细胞从三个不同的捐赠者使用流细胞测定和甲基化测定显示。两种方法在两种细胞类型的所有捐赠者中的趋势相似。
来自 Treg 测定的这些代表性数据也显示了方法之间的类似结果。然而,在所有情况下,这种甲基化测定在刺激和不刺激条件下都产生了更高的值。通过"空白限值"、检测限值和定量值限制,证明了每种测定的灵敏度和特异性。
由于此分析提供了自动数据分析模板,因此它改进了客观分析并提高了标准化功能。这是细胞治疗制造的理想,标准化的方法对于创建一致的细胞治疗产品至关重要。
本文介绍了一种标准化的方法,用于通过定量PCR(qPCR)检测的表观遗传特征来确定免疫细胞身份和纯度。该方法解决了流式细胞术的局限性,并提供了一个用于客观评估的自动化数据分析模板。
Accurate immune cell identity and purity assessment is critical for cell therapy development, impacting both product consistency and regulatory compliance. This epigenetic-based qPCR method addresses the limitations of flow cytometry by enabling objective, high-throughput, and standardized quantification of immune cell subtypes. Its robust, automated analysis supports reliable in-process and product release testing, enhancing predictive confidence at key manufacturing inflection points.
This method integrates into the cell therapy pipeline from early discovery through manufacturing quality control, supporting both lead identification and product release.