2020年7月30日
淡水涡虫表现出三种运动方式(滑行、收缩蠕动和蜷缩运动),可通过定量行为分析加以区分。我们描述了一种利用多种有害刺激诱导蜷缩运动的方法,对其定量分析,并与收缩蠕动和滑行相区分。通过基因敲降实验,我们证明了蜷缩运动作为定量表型读数的特异性。
该方案通过将定量行为分析与分子和化学干扰相结合,使研究人员能够阐明涡虫的行为及其行为背后的机制。该技术易于掌握,适用于所有技术水平的研究人员,因为其无需使用高级仪器或专用软件即可获得自由移动涡虫的定量行为读数。收缩行为可用于研究涡虫的异常反应,并可作为检测外源性物质和疾病引起神经系统功能紊乱的敏感终点指标。
首先将一个可调光的LED面板放置在平坦的表面上,以提供均匀的白色背景,并可作为可调节的光源以获得适当的对比度。将直径100毫米的培养皿实验区域置于LED面板上。将相机安装在实验区域上方的铁环架上,并根据需要调整其位置、高度和焦距,使整个实验区域位于视野中央且清晰对焦。
用约 25 毫升适当的暴露培养基填充实验区域以达到最大体积,打开 LED 面板,并关闭所有可能影响录制质量的其他光源。使用移液管将一只涡虫放置于实验区域中央。当测试化学溶液时,应尽量减少涡虫所携带的涡虫培养水,以避免显著改变化学物质的浓度。
开始以 Fiji 原生格式记录图像序列数据。对于滑行实验,记录一到两分钟的滑行行为;对于收缩或蠕动实验,记录足够长时间以捕获至少三次连续的、沿直线发生的振荡。实验完成后,停止记录。
如果涡虫在未满足终止条件的情况下到达了实验区域的边界,则用移液器将涡虫移回实验区域的中心。在 Fiji 中打开某项实验的原始图像序列,将其转换为 8 位,并使用图像堆栈底部的箭头工具或滑块浏览图像序列。为了提取特定时间段和感兴趣区域,使用矩形工具绘制一个包含涡虫完整运动路径的感兴趣区域。
右键单击图像堆栈并选择“复制”,勾选“复制堆栈”框。输入感兴趣序列的第一帧和最后一帧,然后单击“确定”。对于滑行实验,提取一段涡虫滑行的时期,期间涡虫移动距离至少为其体长的两倍;对于收缩或蠕动实验,则提取相应的运动阶段。
提取涡虫沿直线完成至少三次连续且完整身体摆动的实例。对复制的图像序列应用阈值,以实现图像二值化并从背景中提取涡虫;调节滑动条,使整个涡虫被红色高亮显示。具体数值取决于成像质量。
保留暗背景、叠加直方图的选项,并取消勾选重置范围。滚动浏览图像堆栈以确保阈值范围合适,然后点击应用。在“将堆栈转换为二值图像”窗口中,将方法设置为默认,背景设置为亮。
取消勾选此窗口中的所有复选框,然后点击确定。将出现一幅二值化图像,显示白色背景上的黑色涡虫。确保在图像序列的每一帧中,整个涡虫均清晰可见。
通过点击“分析”并选择“设置测量”来设定测量参数。勾选面积、质心、堆栈位置和拟合椭圆的选项框,然后点击确定。选择打开的图像堆栈,然后依次选择“分析”和“分析颗粒”。
在“分析颗粒”窗口中,选择“显示”和“掩膜”,以打开一个新堆栈,显示使用所选参数检测到的所有对象。通过输入涡虫的近似面积来设置大小过滤器,以去除不需要的噪声。然后勾选“显示结果”和“清除结果”复选框,点击“确定”。
使用面板底部的滑块浏览掩膜图像堆栈,确保没有噪声或不含涡虫的帧。在结果窗口中,通过“文件”和“另存为”保存数据,将文件名添加 CSV 扩展名,以逗号分隔值格式保存数据。图像堆栈的数据保存后,关闭相应的图像堆栈结果窗口和掩膜窗口。
为了通过有害温度诱导涡虫收缩,将涡虫培养用水置于玻璃烧杯中,在加热板上加热至65摄氏度。将一只涡虫放置在观察区域中央,等待其调整为正立方向并开始滑行后,开始记录。使用P200移液器,缓慢且稳定地将100微升预热的涡虫培养水滴加到涡虫咽后部的尾端,以诱导其发生收缩反应。
一旦收缩停止,即停止记录。将涡虫放入恢复容器中,若需继续进行实验,则更换培养皿中的培养液为新鲜的室温涡虫用水。若需通过截肢诱导收缩,将一条涡虫转移至行为检测区域中央,等待涡虫调整为直立方向并开始滑行。
然后开始录像,使用洁净的剃刀片将涡虫截断,确保每次实验中的切割位置保持一致。当前段部分停止收缩后,停止录像。
将两部分取出,放入单独的容器中,使其再生七天。待截肢的涡虫完成再生后,可将其重新放回原容器中。本实验方案用于检测近紫外光照射是否会在 S.mediterranea 和 D.japonica 涡虫中诱导卷曲行为。结果显示,D.japonica 涡虫在近紫外光照射下会发生卷曲,而 S.mediterranea 涡虫则表现为尾部变细或无任何反应。
对表现出至少三次连续直线收缩的日本三角涡虫(D.japonica)的收缩参数进行量化,揭示了该物种特有的收缩参数特征。相比之下,在小鼠中暴露于250微摩尔肉桂醛(一种未知的TRPA1激动剂)会引起收缩行为,且在地中海涡虫(S.mediterranea)中也观察到类似现象。而日本三角涡虫则表现出蛇形运动与振荡运动的混合模式,其间被滑行或剧烈的头部转向所打断。对至少出现三次连续振荡的样本进行量化分析,结果显示四个参数中有三个显著低于日本三角涡虫收缩行为的预期值,表明所观察到的振荡运动并非收缩行为。
RNAi 验证了地中海涡虫(S.mediterranea)在肉桂醛暴露下收缩反应的特异性。在涡虫水中暴露180秒内,所有对照RNAi组涡虫均出现收缩,而SMTRPA-1 RNAi组涡虫则无一发生收缩,表明地中海涡虫在肉桂醛作用下的收缩反应依赖于SMTRPA-1。
在操作动物时保持一致性和规范性至关重要,这有助于减少噪声并确保行为测量结果的可重复性。本项目可进一步扩展,以包括体型分析,从而能够识别和量化本研究中未捕捉到的其他涡虫行为。
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本研究利用定量行为分析,探讨了淡水涡虫的不同运动步态(滑行、蠕动和收缩运动)。所建立的实验方案可通过多种有害刺激诱导涡虫产生收缩运动,从而提供一种量化并区分该行为与其他步态的方法。
涡虫收缩行为为评估遗传可操作模型中的神经毒性和伤害性反应提供了一个可量化的生物学行为终点。该方法通过将行为表型与特定分子靶点(如TRPA1直系同源物)相关联,能够在早期阶段对化合物进行机制性风险排除。该技术可支持神经药理学研发流程中的靶点验证和检测方法的开发。
该方案适用于早期发现阶段的工作流程,支持神经生物学中的假设验证,并通过化合物对涡虫行为影响的表型筛选,实现先导化合物的鉴定。