2021年6月28日
该协议提供了从DNA提取到数字液滴PCR(ddPCR)实验设置的步骤,包括分析gRNA诱导的Cas9切割和DNA修复后靶位点的非同源末端连接(NHEJ)事件。该方法的其他用途包括多态性检测和基因编辑变异验证等应用。
该协议为NHEJ分析提供了高通量和可靠的组成,可以确定基因编辑蚊子种群中Indel突变的患病率和相对数量。与下一代或Sanger测序相比,ddPCR具有更快的结果周转时间,从而可以快速,完整地分析遗传变异以田间进行转基因生物。这种方法应普遍适用于所有实验系统。
演示该程序的将是来自Yang实验室的工作人员研究助理Thai Pham。首先,通过加入ddPCR超级混合物,正反引物,HEX或FAM探针,DNA和水以文本中描述的比例制备25微升的数字液滴PCR或ddPCR样品混合物。然后通过涡旋彻底混合反应。
使用50微升多通道移液器,将20微升的ddPCR样品混合物加载到墨盒的中间行中。然后使用200微升多通道移液器将70微升的油装入底排,而不会在整个移液过程中产生气泡。放置垫圈,仅接触边缘,避开中心凹陷区域,然后将板牢固地放在液滴发生器中,并合上盖子以开始运行。
要将浸入式混合物从墨盒的顶行转移到96孔板中,请使用多通道移液器,并以30至45度的角度滴下40微升液体样品3至5秒钟。然后以45度角缓慢地将混合物排出到孔中超过三秒钟,使其从侧面下降,然后转到移液器的第二个停止点以完全排出液体。使用铝箔热封,在180摄氏度下密封板五秒钟。
将密封的板放入热循环器中,并通过将初始变性设置为95摄氏度10分钟来设置NHEJ滴落指南的PCR条件。然后,设置40个周期,从94摄氏度持续30秒即可变性,将55摄氏度从一分钟设置为退火,并将60摄氏度设置为两分钟延长。40 个周期后,将保持温度设置为 98 摄氏度 10 分钟,最后保持在 4 摄氏度。
对所有步骤使用每秒两摄氏度的斜坡速率。退火温度会根据所使用的探头或底漆而变化。将板牢固地放在液滴读取器中,并在左上角标记了A1。
打开程序并通过指定FAM作为每个孔的未知参考通道来设置板。然后,更改每个示例的名称。在保存模板的同时,将液滴读数实验作为直接定量运行。
为软件分析指定正确的实验参数,即样品信息、超级混音、靶标名称、靶标类型、信号通道一、通道二。然后,将液滴计数的阈值设置为高于10, 000以获得可靠的结果。接下来,检查液滴选项卡中每个孔的液滴计数,确保所有孔都高于10, 000。
最后,检查一维幅度,以便有效地将信号与负极分离。在印版编辑器中,突出显示整个印版,并将实验类型设置为放弃。将 WT 目标设置为参考,为 FAM 指定通道 1,为 HEX 指定通道 2。
将 NHEJ 目标设置为未知,将通道 1 指定为 FAM,将通道 2 指定为无。在"2D 振幅"选项卡中,使用图形工具为每个样本设置聚类阈值。尾部通常与 NHEJ 测定的 WT 簇相关联。
在比率选项卡下,单击图表右上角的齿轮图标,然后选择分数丰度以绘制与NHEJ事件百分比相对应的点。15种不同的10只蚊子的抽取样品,每种样品含有不同的NHEJ等位基因,使用滴定测定法进行分析和鉴定,结果显示所有15个样品均含有100%Indel等位基因。在另一项实验中,用该ddPCR方案检查了11个野生型蚊子和NHEJ蚊子的抽取样本,这些样本具有不同的NHEJ百分比。
结果表明,鉴定的百分比与扩增子分析技术的Indel检测相对接近。缓慢移液以避免气泡,并让所有乳化液滴滴落到孔壁上。
本方案概述了数字滴定PCR(ddPCR)的步骤,用于分析Cas9切割后发生的非同源末端连接(NHEJ)事件。该方法可对基因修饰生物体中的插入缺失(Indel)突变进行可靠定量。
数字微滴PCR(ddPCR)可实现对基因改造蚊群中插入缺失突变的快速定量检测,支持对CRISPR-Cas9编辑保真度进行高通量评估。该方法为测序技术提供了一种可现场部署的替代方案,具有更快的周转时间,有助于在基因驱动和媒介控制项目中及时做出决策。通过提供群体水平的突变频率数据,ddPCR有助于降低基因构建体的风险,并在临床前开发阶段评估脱靶可能性。
通过在基因编辑后、表型筛选前实现定量突变分析,数字PCR(ddPCR)可支持基于编辑精确度的“进行/不进行”决策,从而融入发现研究的连续过程。