2021年9月10日
本方案介绍了在淡水涡虫地中海涡虫(Schmidtea mediterranea)中分离卵巢的步骤。分离得到的卵巢可用于抗体免疫染色以及透射电子显微镜下的超微结构分析,以研究卵母细胞和体细胞的细胞生物学,其成像深度和质量是以往难以达到的。
本方法的目的是分离地中海涡虫(Schmidtea mediterranea)的卵巢,用于通过透射电子显微镜(TEM)或抗体染色对卵母细胞生物学进行细胞和亚细胞水平的分析。该方案采用短暂的固定步骤,以帮助定位和分离涡虫的卵巢,从而获得以往难以实现的成像深度和质量。对于从未操作过该技术的研究者而言,最大的挑战在于固定后卵巢的定位。
在实验前熟悉两性涡虫的解剖结构将有助于实验的顺利进行。实验前,每周两次用有机肝糊喂养两性涡虫,以使其达到性成熟。将性成熟的涡虫置于培养皿中,在室温下用5%的N-乙酰-L-半胱氨酸(NAC)处理五分钟。
用 10 毫升新配制的 4% 多聚甲醛替换 NAC,在室温下轻轻振荡固定线虫一小时。在加入 4% 多聚甲醛后 10 分钟开始解剖,此时线虫正处于固定过程中。观察上皮色素沉着,以定位腹神经索;腹神经索表现为两条色素较浅的纵行条带,从头部前端的脑神经节延伸至尾部。
通过观察色素沉着定位假定的卵巢,并验证其位置。使用两把手术刀,在卵巢的后方和前方分别进行切割,以完全移除虫体的前段和后段。用一把刀固定虫体,另一把刀进行解剖操作。
清洁用于切割的刀片。为分离两个卵巢,沿卵巢片段的中线进行切割,然后将片段腹面朝下翻转。使用两把5-SA型尖头镊子剥离背部组织,以暴露肠道。
用镊子尖端或软毛刷轻轻移除位于腹侧组织上方的肠道分支,以暴露卵巢。去除周围组织,取出卵巢。将卵巢取出后转移至1.5毫升离心管中,用1毫升PBS洗涤。
利用背部和腹部的色素分布模式来确定卵巢的位置。逐步修剪去除多余的组织。一旦暴露卵巢,即修剪去除其周围的组织。
含有多种体细胞类型的卵巢被用于超微结构分析和免疫荧光染色。解剖得到的卵巢可用于对卵母细胞的细胞及亚细胞结构进行高质量成像。该操作步骤可用于开展RNA干扰实验,以研究卵母细胞生物学过程中的分子调控机制。
该技术促使人们发现了一种在扁形虫卵母细胞中的新现象,即核膜并非保持完整(即闭合式有丝分裂)或破裂成碎片(即开放式有丝分裂),而是解体为包裹着核蛋白的囊泡。
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本方案详细描述了淡水涡虫Schmidtea mediterranea卵巢的解剖步骤,旨在实现对卵母细胞生物学的细胞及亚细胞水平分析。该方法通过透射电子显微镜(TEM)和抗体免疫染色等技术,提高了成像的质量与深度。
直接获取完整的涡虫卵巢,可实现对生殖细胞发育的高分辨率分析,有助于在早期发现阶段降低机制性风险。本方案支持对卵母细胞生物学进行定量成像和分子层面的探究,从而提高生殖系研究的预测可靠性。该方法可为生殖生物学研究流程中的靶点验证和功能基因组学提供重要依据。
该解剖方案可整合到早期发现和靶点验证阶段,支持后续的超微结构和免疫染色分析。它适用于从假设验证到种系系统中基因功能评估的各项工作流程。