2023年3月3日
本文介绍了一种从水体中分离和鉴定耐药细菌的详细方案,以及对其耐药基因(ARGs)进行分子表征的方法。通过基于培养和非培养依赖性(宏基因组分析)技术的结合,可全面了解印度孟买淡水环境中细菌多样性的总体情况以及存在的各类耐药基因的总库。
本方法可回答若干关键问题,例如:水样中耐药细菌的总体负荷是多少?这些细菌的种类是什么?它们携带了哪些不同类型的耐药性特征和耐药基因?本方案的优势在于能够检测出即使在实验室条件下无法培养的细菌,而这类细菌在水样所含的总细菌中占有相当大的比例。
因此,从理论上讲,不会遗漏任何细菌或其耐药性特征。这种结合了基于培养和非培养依赖技术的组合方法,可针对来自污水、制药厂或医院排放物、临床及非临床环境等各类样本进行复制和定制。与Devika一同演示实验操作的还有Harshali Shinde和Maitri Mishra,她们均来自我的实验室,是高级研究学者。
首先,通过无菌操作将水样用无菌纱布过滤,以去除其中的颗粒物。然后,对过滤后的水样进行系列稀释,以便进一步分析。为测定总细菌数量,取100微升适当稀释度的过滤水样,分别接种于固体R2A琼脂平板及其重复平板上,并均匀涂布。
将所有样品涂布平板在35至37摄氏度下孵育48小时。孵育结束后,计数菌落,并以每毫升菌落形成单位(CFU/mL)表示总细菌负荷量。为测定耐药细菌数量,将抗生素分别加入含有20毫升无菌熔化的改良R2A琼脂(温度约为40摄氏度)的试管中。
在琼脂凝固前轻轻旋转混匀,并倒入无菌的培养皿中。为进行质量控制并检测抗生素的有效性,将100微升细菌悬液分别涂布于含有相应抗生素的改良R2A琼脂平板上。将平板在35至37摄氏度下培养48小时,然后测定细菌数量。
为准备用于PCR的DNA模板,使用无菌牙签挑取培养在培养皿上的单个分离纯菌落。将细菌菌落悬浮于微量离心管中100微升无菌双蒸水中,在沸水浴或干浴中100摄氏度加热10分钟。将悬浮液在10,000 g离心2分钟,使细胞碎片沉淀,然后将上清液转移至新的无菌微量离心管中,作为粗制DNA模板使用。
通过PCR扩增16S rRNA基因的V3区,在PCR管中配制40微升反应体系。将PCR管放入热循环仪的加热块中,运行相应的PCR程序。为分离并观察PCR扩增产物,取10微升扩增后的PCR产物与2微升6x上样缓冲液混合,将该混合物连同100 bp DNA分子量标记物一同加入1.5%琼脂糖凝胶的加样孔中,以估算扩增片段的大小。
在TAE电泳缓冲液中以80至100伏电压进行凝胶电泳,直至指示染料迁移至凝胶的3/4位置。随后在紫外透射仪下观察扩增产物条带。为制备接种物,使用无菌接种环无菌操作挑取一个分离的、纯化的抗生素抗性菌落,接种于2毫升不含任何抗生素的Luria-Bertani(LB)液体培养基中,于37摄氏度、80 rpm条件下过夜培养。
次日,将过夜培养的菌液 100 至 150 微升加入 2 毫升新鲜的非选择性 LB 肉汤中,培养 2 至 4 小时,直至 600 纳米处的光密度达到 0.4 至 0.5。使用无菌 0.85% 生理盐水溶液稀释新鲜培养的菌液悬液,并轻轻混匀,使细胞均匀分布,达到相当于 0.5 麦克法登标准的菌液浓度。稀释后 15 分钟内,将无菌棉签浸入菌液中,去除多余悬液,以避免平板接种过量。
然后用棉签将菌液均匀涂布于已准备好的穆勒-欣顿琼脂平板上,从顶部开始,来回涂布至边缘。接着将平板旋转60度,再次进行涂布。放置抗生素纸片时,使用经火焰灭菌的镊子,将抗生素纸片无菌转移至接种好的琼脂平板上。
轻轻按压纸片,确保其与琼脂表面完全接触。根据所用抗生素、目标微生物及平板大小,在琼脂平板上放置适量的抗生素纸片,避免抑菌圈重叠。在抗生素纸片贴附后15分钟内,将平板倒置,并于37°C下孵育过夜。
次日,以毫米为单位测量抑菌圈直径,并根据 EUCAST 提供的折点值进行判读。水样中总细菌负荷量为 3.0 × 10⁹ CFU/mL,且抗生素耐药菌负荷量较高。经测序鉴定,抗生素耐药菌的培养分离株属于肠杆菌科(Enterobacteriaceae),其中大多数为大肠杆菌(Escherichia coli)和肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae)。
此外,还鉴定出一些罕见的机会性细菌。通过纸片扩散法进行的抗生素敏感性试验显示,八个分离株的多重抗生素耐药指数约为 0.2,表明具有较高的耐药程度。然而,丛毛单胞菌属(Comamonas)和节杆菌属(Arthrobacter)物种对所测试的所有抗生素均未表现出耐药性。
可培养的分离菌株显示出存在编码抗β-内酰胺类、甲氧苄啶和氨基糖苷类抗生素的耐药基因。通过对总细菌多样性的宏基因组DNA分析,鉴定出50个门,表明细菌多样性较高,其中变形菌门(Proteobacteria)为最优势的门,包含α-变形菌纲(Alphaproteobacteria)、β-变形菌纲(Betaproteobacteria)和γ-变形菌纲(Gammaproteobacteria)。在目水平上,伯克霍尔德氏菌目(Burkholderiales)最为丰富,属于β-变形菌纲(Betaproteobacteria)。
在总体水平上,假单胞菌属(Pseudomonas)、不动杆菌属(Acinetobacter)、土壤杆菌属(Pedobacter)、柄杆菌属(Prosthecobacter)、湖泊生境杆菌属(Limnohabitans)、黄杆菌属(Flavobacterium)和丛毛单胞菌属(Comamonas)是一些丰度较高的细菌。宏基因组DNA分析还揭示了更多的抗生素耐药基因。在本方法中,连续稀释步骤至关重要,因为任何误差都可能导致对总菌落形成单位(CFU)及抗生素耐药菌负荷的错误解读。
此外,应仔细测量抑菌圈的直径,以准确判断该分离株是耐药还是敏感。利用这些方案,除了水样外,还可研究其他任何样本,无论是环境样本、食品样本还是临床样本。而且,除了细菌之外,还可采用类似方法研究任何生态系统中的其他微生物群落。
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本文介绍了一种从水中分离和鉴定耐药细菌的方案,并对其耐药基因(ARGs)进行分子表征。结合基于培养和非培养的技术,可对来自印度孟买的淡水样本中的细菌多样性及耐药基因进行全面分析。
对水传播的抗生素耐药菌进行全面检测和分子表征,对于制药和环境研发流程中的早期风险评估至关重要。结合基于培养和宏基因组学的方法,能够稳健地鉴定耐药基因,从而提高环境监测和靶点验证的预测可靠性。这一双方法工作流程可为企业的环境生物安全和产品组合风险管理决策提供科学依据。
本方案通过实现从环境样本中进行全面的抗性组分析,将早期发现、筛选和转化研究连接起来。