2022年6月16日
本方案描述了一组用于合成微孔退火颗粒支架微凝胶构建单元的方法,该支架可用于多种再生医学应用。
高通量制备用于微孔退火颗粒支架的单一分散微凝胶构建单元,可增强对支架孔隙率的控制,从而影响孔径大小及后续的组织整合效果。本方案采用高通量微流控方法,生成其他方法(如流动聚焦微流控、批量乳化法和电喷雾法)无法实现的大体积单一分散微凝胶。
生成的微凝胶可形成微孔退火颗粒支架,由于具有细胞尺度的孔隙率,可实现快速组织生长,因此在再生医学应用中具有优势。首先,为每个PDMS微流控装置准备一块玻璃载片。使用胶带、过滤空气或异丙醇清洗,以去除载片上的任何灰尘。
将一块载玻片和一个PDMS装置设计的载玻片并排放置在96孔板盖上,然后放入等离子清洗仪中。关闭门和气流阀,启动真空泵。运行至少30秒后,关闭真空泵。
将氧气罐的气体管路连接至气流阀。让等离子腔体充入氧气30秒,然后关闭氧气并关紧气流阀。打开真空泵,并将射频功率调至高位。
等待腔室变为紫粉色,并持续30秒。计时结束后,关闭等离子体和真空,然后缓慢打开气流阀以释放真空。从等离子清洗仪中取出托盘。
轻轻将PDMS装置翻转到玻片上,使其粘合。粘合过程中,注意观察PDMS透明度的微小变化。为获得最佳效果,将粘合好的装置在60°C下保存,直至使用前立即取出。
通过稀释PFOCTS和Novec油来配制表面处理液,每三至四个装置使用一毫升。将该体积转移至一毫升注射器中,并连接25号针头。每个装置准备一段10至12厘米长的Tygon管。
截取一段长约一英寸的PEEK管。将PEEK管的两端各插入几毫米至Tygon管末端,以防止针头刺穿Tygon管的入口。将装置从加热室中取出,并将Tygon管非PEEK端插入水相入口孔中。
将表面处理注射器的针头插入PEEK管中,并覆盖油室出口孔。缓慢注入处理液,确保液体充满装置且无气泡。先等待水相室充满,随后是较细的通道,最后是油室。
从设备上取下Tygon管。设备充满后,在室温下静置10分钟。用仅含油的5毫升注射器抽取油液,并连接25号针头。
通过入口和出口将表面处理液从装置中吸出。将Tygon管插入水相入口。将装有油的注射器插入PEEK管,用油冲洗每个装置。
吸出装置中的油。重复油冲洗两次,并移除Tygon管。将Tygon管的非PEEK端插入微流控装置的入口。
将另一段未连接PEEK管的Tygon管插入微流控装置的出口。向一个5毫升塑料注射器中加入至少3毫升油,并将其连接到25号针头上。小心地将针头插入其中一段Tygon管入口的PEEK管中。
用油轻轻冲洗管路和装置。用锥形管收集出口处的油。对另一根Tygon进样管重复进行油冲洗。
将注射泵设置为所需的流速。使用25号针头将含有表面活性剂的注射器连接至油相入口,并缓慢注入足够的油以润洗管路及微流控装置的油相通道。一旦装置和油相入口准备就绪,向一支新的5毫升注射器中加入0.5毫升油,该注射器将用于盛装凝胶前驱体。
使用少量油帮助将前体溶液冲洗通过微流控装置。在锥形管中,加入1.5毫升PEG主链溶液和1.5毫升交联剂溶液。涡旋混合30秒,迅速将混合后的凝胶前体溶液转移至5毫升注射器中。
将装有凝胶前体溶液的注射器通过25号针头连接至水相入口。轻轻排出足够的溶液以润洗管路和水相通道。将注射器固定在注射泵上,然后启动运行。
从通道中观察大小均匀的颗粒。用锥形管从出口收集微凝胶。凝胶完成后,使用移液器小心地从管底去除油相。
将此物放入指定的含氟废物容器中。向微凝胶收集管中加入更多油。通过轻轻倒置收集管进行混合。
将收集管静置5分钟,使两相充分分离。观察底部的油相和顶部的水相微凝胶层。至少再重复油相洗涤两次。
按照之前的方法向凝胶中加入更多油,然后向凝胶中加入PBS。颠倒混匀数次。为分离各层,将离心管在2,000 RCF下离心约30秒。
观察离心管底部的油相、中间的凝胶层和顶部的 PBS。用移液器移除油相,并弃入废液容器中。重复油相和 PBS 洗涤两次。
在最后一次洗涤结束时,观察凝胶由不透明变为透明。去除所有油分,但不要从锥形管中移除 PBS。
在化学通风橱中,使用玻璃移液管向试管中加入与 PBS 等体积的己烷。涡旋混匀锥形管 30 秒,或直至充分混合。在 4,696 RCF 条件下离心 5 分钟。
分离后,观察上层为己烷,中层为磷酸盐缓冲液(PBS),底层为凝胶。移除上层己烷并弃置于有机废液容器中。用吸管吸除PBS层。
用 PBS 中的正己烷重复洗涤至少两次,直至凝胶几乎变为半透明。再用 PBS 洗涤一次,以去除残留的正己烷。在 4,696 RCF 下离心五分钟,并吸除 PBS 层。
约67-75%的20千道尔顿PEG马来酰亚胺被修饰上甲基丙烯酰胺功能基团,以确保较高的退火效率。修饰百分比通过分析1H NMR谱图峰确定。凝胶化的起始时间提供了关于微流控微凝胶生成持续时间的信息。
建议选择凝胶前体的 pH 值,使其在 30 分钟至两小时内启动凝胶化过程。纯化和溶胀后,微凝胶具有均匀的尺寸,多分散指数介于 1.00 至 1.02 之间,定义为单一分散体系。退火后,微凝胶形成多孔支架结构,可通过双光子显微镜观察。
正确地将PDMS装置键合到玻璃载片上,并对装置进行正确的表面处理,对于实现最佳的微流控装置性能至关重要。该技术可快速制备均匀的微凝胶构建单元,用于形成可用于多种体内再生应用(包括伤口愈合)的支架结构。
本方案描述了一种高通量微流控方法,用于合成单一分散的微凝胶构建单元,以制备微孔退火颗粒支架。由于此类支架具有可控的孔隙率以及增强的组织整合效果,因此在再生医学应用中具有显著优势。
高通量微流控合成单分散微凝胶可精确调控支架孔隙率,直接影响组织整合与再生效果。该技术通过标准化可注射性、细胞尺度多孔支架的基本单元,解决了生物材料发现中的一个关键转折点。该方法支持可扩展、可重复的实验流程,对转化型生物材料及先进再生医学研究具有重要意义。
这种微流控方法从早期发现到临床前支架验证实现了整合,支持迭代优化和快速转化。