2023年4月28日
本文介绍了一种实验方案 体内 利用三维荧光显微镜对幼年斑马鱼进行全脑成像。实验步骤包括样品制备、图像采集和可视化。
我们正在开发光学免疫系统和计算算法,以高空间和时间分辨率记录并分析整个大脑的神经活动。由于幼年斑马鱼具有光学透明性,并且拥有多种可用的遗传工具,因此它是理想的研究模型动物。然而,由于样品固定时使用的琼脂糖凝胶会引入像差,可能导致光学图像质量下降;此外,斑马鱼在记录过程中可能发生移动,从而在图像中产生运动伪影,或阻碍从图像中准确提取信号。
公开的实验方案仅简要概述了实验流程,缺少许多关键细节,例如琼脂糖凝固过程、精确的样品固定技术以及简单的定位方法。因此,亟需一种有效且可重复的实验方案,以获得噪声最小、运动伪影最少的高质量图像数据。本方案提供了一种经过优化且可重复的实验操作流程。
本方案可实现长时间的活体全脑成像以及所获取成像数据的可视化。该工作流程主要聚焦于全脑成像,但也可轻松应用于斑马鱼幼体其他器官的成像。我们的目标是揭示神经计算的潜在原理。
为此,我们将继续致力于构建一个涉及大规模神经活动与结构成像,并通过计算分析实现系统性脑图谱绘制的流程。首先,准备斑马鱼固定与定位所需的实验材料与设备。在体视显微镜下观察已麻痹的斑马鱼幼体,确认其运动已停止。
通过观察幼鱼的心跳来目视评估其健康状况。然后使用移液管将一条幼年斑马鱼放入含有琼脂糖凝胶的1.5毫升微量离心管中。将琼脂糖凝胶倒入培养皿中,形成1至2毫米厚的涂层。
使用移液枪将幼虫从微量离心管转移至培养皿中,注意将幼虫放置在培养皿中央。用镊子调整幼虫的方向,使其头部和尾部平展。然后用镊子旋转幼虫,使两只眼睛处于同一水平位置。
凝胶完成配准后,等待琼脂糖凝胶完全凝固,再向培养皿中加入卵水。将含有包埋幼虫的培养皿置于显微镜载物台上进行成像。打开显微镜,将幼虫调整至视野中央。
使用图像采集软件设置成像参数。如果图像出现饱和,则降低激光功率。接下来,通过移动载物台找到幼虫的大脑,并在软件的实时预览模式下,通过手动上下调节焦平面来确定其厚度。
设定体积的下限和上限。然后,对设定的视野进行图像采集。对于三维结构成像,通过依次获取每个 z 平面的二维图像,来获得整个大脑的三维图像。
对于单个 z 平面的功能成像,在特定深度采集大脑神经元活动的时间序列图像。安装 napari 和 napari-animation 后,创建一个新的 Jupyter 笔记本文件。为了可视化图像并生成斑马鱼大脑的三维图像动画,请加载 3D 图像并打开 napari 窗口,然后连接 napari-animation 插件。
接下来,在图层控制中设置参数,如体素大小、颜色映射和对比度范围。在画布中调整查看器设置。然后,要捕获渲染后的图像,请点击动画向导中的“捕获”按钮。
为了生成渲染体积的动画,请调整查看器设置并添加关键帧。添加关键帧后,在动画向导中设置关键帧之间的帧数。最后,保存渲染后的动画。
表达泛神经元标记物GCaMP7a的幼年斑马鱼脑部的体积成像视野覆盖了前脑、中脑和后脑区域。在幼年斑马鱼全脑中,延髓、小脑板、视顶盖、缰核以及端脑背侧的神经元细胞体清晰可见。在二维功能成像中,神经元细胞体在背景以及叠加的神经活动信号中均清晰可辨。
本文介绍了一种利用三维荧光显微镜对幼年斑马鱼进行活体全脑成像的详细实验方案。斑马鱼模型因其光学透明性及易于进行遗传操作,被广泛用于研究神经计算与神经活动。本方案针对常见的问题(如运动伪影和琼脂糖凝胶畸变)进行了优化,以确保高质量图像数据的获取。
对幼年斑马鱼大脑进行三维荧光成像,能够实现高分辨率的活体神经结构与活动图谱绘制,支持神经科学早期研究发现。本实验方案致力于提高可重复性并减少伪影,为神经生物学研究中的机制性风险评估和靶点验证提供可靠基础。其良好的可扩展性与定量输出特性,使其成为面向神经环路分析和功能筛选的企业级研发流程中可重复利用的技术手段。
该成像方案可融入从发现到临床前研究的连续流程,支持在脊椎动物神经科学模型中进行假设验证、通路绘制和定量分析。