2024年2月9日
腺相关病毒在悬浮细胞培养中生产,并通过两次碘克沙醇密度梯度离心进行纯化。本方法包含多个步骤,可提高病毒总产量,降低病毒沉淀风险,并进一步浓缩最终病毒产物。预期最终滴度可达 1012 病毒颗粒/mL,适用于临床前的 体内 实验应用。
我们采用定向进化方法,筛选对特定人类细胞类型具有更高趋向性的腺相关病毒衣壳。通过此项研究,旨在开发出转导靶细胞效率更高、在基因治疗领域更具临床应用价值的重组腺相关病毒载体。我们课题组近期通过引入天然具有较低肝趋向性的腺相关病毒血清型的衣壳残基,成功使多种AAV血清型对肝脏的靶向性降低。
如果能够成功扩展到更多血清型,这将为通过外周注射降低rAAV临床使用剂量并减少患者不良反应奠定基础。碘克沙醇纯化方法虽然成本较低,但难以实现规模化放大。此外,在后续应用中,定向进化方法通常通过动物模型或体外实验进行。
因此,通过定向进化分离的衣壳在人体内对靶标的转导效率可能不如在临床前模型中那样显著。本方案成本低廉,适合规模较小的实验室采用。此外,该方法可获得高纯度的重组腺相关病毒,可用于后续临床前的体内应用。
首先,从培养的细胞中获取澄清的病毒。将超速离心管放置在多通道蠕动泵输出端的支架上。使用刻度移液管,小心地将10毫升澄清病毒分装至每根超速离心管中。
然后将15%碘克沙醇组分的22毫升转移至一个洁净的50毫升锥形管中。将毛细管的右端放入泵的管中,并启动泵。当碘克沙醇组分到达泵输出端毛细管末端时,停止泵的运行。
将输出毛细管插入每支含有澄清病毒的超速离心管中,并启动泵。当15%的组分即将被吸入输入毛细管时,停止泵。接下来,将25%碘克沙醇组分中的22毫升转移至50毫升锥形管中。
开启泵后,让整个组分进入进样毛细管,然后停止泵。如有需要,可添加更多60%组分,将每根管子加至裂解液在管口形成弯月面但不溢出为止。停止泵,并小心移除出样毛细管。
用垫片盖紧超速离心管,并将其装入70 Ti型转子中。离心后,将超速离心管固定在支架上。使用无绒布擦拭去除超速离心管的管帽。
然后将一支20号针头连接到5毫升注射器上,将针头刺入超速离心管管壁,位置位于40%与60%碘克沙醇界面下方约3毫升处。缓慢吸取界面层及部分40%组分。用一根手指堵住超速离心管的开口端,拔出注射器,将吸取的AAV组分转移至50毫升锥形管中。
最后,用AAV裂解缓冲液将吸取的病毒组分稀释至原体积的二分之一,总体积为40毫升。冲洗蠕动泵管路后,将20毫升稀释后的AAV组分加入新的超速离心管中,进行第二轮分步离心。
本研究聚焦于腺相关病毒(AAV)衣壳的定向进化,以增强其对特定人类细胞类型的嗜性。该研究旨在开发可提高靶细胞转导效率的重组AAV载体,这对于基因治疗应用至关重要。
悬浮培养生产结合碘克沙醇密度梯度纯化重组腺相关病毒(rAAV),可为临床前体内研究提供高纯度的病毒载体,支持基因治疗研发管线的推进。该方法不依赖血清型,适用于生成多种AAV衣壳,包括经工程化改造以改变嗜性(tropism)的衣壳,为转化型载体开发提供了可重复的实验基础。该方法操作便捷且产量稳定,对于早期病毒载体优化及候选载体筛选至关重要。
该方案通过提供高质量的重组腺相关病毒(rAAV),连接早期发现与临床前验证,适用于机制研究和转化研究。该方案被定位为载体工程、筛选及体内概念验证工作流程中的核心技术能力。