2024年7月19日
本文描述了使用油酸诱导的HepG2细胞作为代谢功能障碍相关脂肪性肝病的模型。
我们的研究方向是传统蒙古药学。通过建立代谢功能障碍相关脂肪性肝病的细胞模型,研究常用疗法的作用及其机制。本研究的发现将有助于未来提升相关优势,推动建立代谢功能障碍相关脂肪性肝病的细胞模型,并深入探究该疾病的潜在发病机制。
未来的研究将基于代谢功能障碍相关脂肪性肝病细胞模型,以探讨克罗恩病降低铅水平的作用机制。首先,在96孔板的每个孔中接种过夜培养的HepG2细胞,每孔加入100 µL DMEM培养基。将细胞置于37°C、5% CO₂条件下孵育24小时。
第二天,弃去上清液,根据指定的分组每孔加入100微升油酸。对于对照组,每孔加入100微升DMEM。将细胞在37摄氏度下孵育24小时。
孵育后,向每孔加入10微升细胞计数区域溶液,轻轻混匀,并在避光条件下孵育2小时。将培养板放入酶标仪中,在450纳米波长下测定吸光度。根据光密度计算HepG2细胞的GI`50值。
与对照组相比,油酸在0.125、0.25、0.5和1毫摩尔浓度下均降低了HepG2细胞的存活率,其中0.5和1毫摩尔浓度下的差异具有统计学显著性。首先,将过夜培养的HepG2细胞接种于含DMEM培养基的6孔板中。将细胞在37摄氏度条件下培养24小时。
孵育后,向每个孔中加入含有油酸的2毫升细胞培养基。在37摄氏度下将细胞孵育24小时。第二天,移除培养基,并用PBS洗涤细胞两次。
向每个孔中加入1毫升苏丹红O固定液,孵育30分钟。弃去固定液,用蒸馏水洗涤细胞两次。向每个孔中加入1毫升60%异丙醇,孵育30秒。
弃去异丙醇后,加入一毫升新配制的油红O染色液,孵育20分钟。随后加入一毫升60%异丙醇,孵育30秒。用蒸馏水洗涤细胞五次,以去除多余的染料。
显微成像后,在计算机上观察覆盖蒸馏水的细胞。成像完成后,从孔板中移除水分,使其自然干燥。向每个孔中加入 2 毫升异丙醇,并在摇床中震荡 10 分钟。
将100微升细胞悬液转移至96孔板中,每组16个孔,在酶标仪上于510纳米处测定光密度以计算脂质含量。与对照细胞相比,经油酸处理的HepG2细胞显示红色染色强度增加,表明脂滴形成增多。
随着油酸浓度的升高,HepG2 细胞中的脂滴和脂质含量增加。首先,将总甘油三酯检测试剂盒在室温下平衡 20 分钟。收集过夜培养的 HepG2 细胞上清液,在 1,570 ×g 条件下离心 10 分钟。
设置标准品孔和待测样品孔。向标注为标准品的孔中加入50微升油酸。除空白孔和标准品孔外,向样品孔中加入10微升细胞培养物。
然后,向每个孔中加入 40 微升样本稀释液。接着,向每个孔中加入 100 微升辣根过氧化物酶检测抗体。用酶标板封板膜密封,于 37 摄氏度恒温箱中孵育。
孵育一小时后,弃去上清液,并在无尘纸上吸干。向每个孔中加入洗涤液,在室温下孵育一分钟。然后,向每个孔中加入50 µL底物A和50 µL底物B。
轻轻混匀,在37摄氏度下孵育15分钟。加入50 µL终止液,并在15分钟内于450 nm处测定吸光度。
以标准品浓度为横坐标(X轴),对应的吸光度值为纵坐标(Y轴)作图,进行线性回归分析,得到标准曲线方程,用于计算各样本的浓度值。与对照组相比,用不同浓度油酸处理HepG2细胞后,细胞上清液中的总甘油三酯含量显著增加。
本研究探讨使用油酸诱导的HepG2细胞作为代谢功能障碍相关脂肪性肝病的模型。通过分析油酸对这些细胞的作用,旨在阐明该肝脏疾病背后的发病机制。
利用油酸诱导的 HepG2 细胞在体外模拟脂肪沉积,为研究代谢功能障碍相关脂肪性肝病(MASLD)的潜在机制提供了一个可控的实验系统。该细胞模型可用于代谢性疾病项目早期阶段的靶点验证和机制性风险评估。细胞活力和脂质检测所得的定量结果,有助于提高转化医学研究和化合物筛选的预测可靠性。
该细胞模型可整合到代谢疾病项目的发现流程中,贯穿从早期机制研究到先导化合物鉴定及临床前验证的全过程。