2025年1月10日
猪角膜 离体 器官培养与上皮伤口愈合为检测化学物质的眼部毒性提供了经济、符合伦理、可重复且可定量的方法。同时,该方法有助于阐明上皮化及组织修复调控机制,并可用于评估治疗糖尿病性角膜病变及延迟性伤口愈合的治疗方法。
我们正在研究糖尿病伤口愈合过程中角膜的固有免疫。具体而言,我们的目标是理解为何糖尿病患者更容易受到细菌感染,以及高血糖导致伤口愈合延迟的原因。我们发现,IL-1β 与 IL-1 受体拮抗剂之间,以及 TGF-β1 与 TGF-β3 之间的平衡对角膜伤口愈合具有重要作用。
这可能为糖尿病性角膜病变提供新的治疗方法。我们的模型模拟了糖尿病患者中人类伤口愈合延迟的情况,使我们能够研究细胞程序性死亡通路并开发靶向治疗策略。
首先,取置于1升烧杯中的猪眼。用镊子夹住眼球,在无菌培养皿中用剪刀去除眼外组织。进行上皮损伤时,使用无菌无尘纸巾固定眼球,并用6毫米角膜环钻标记角膜中心位置。
然后,使用小型解剖刀或尖角钝化的软质剃须刀片,轻轻刮除角膜环钻标记圈内的上皮细胞。清除所有细胞碎片,同时确保基底膜保持完整。随后,用棉签清洁伤口区域。
使用手术刀和剪刀沿角膜巩膜缘切开眼球进行解剖。然后,将角膜放入含有磷酸盐缓冲液(PBS)的无菌500毫升烧杯中冲洗。接着,将切除的角膜倒置放入无菌模具中。
用含有1%琼脂糖(保持在48摄氏度)的最低必需培养基(MEM)填充角膜内皮腔。然后将角膜倒置并转移至35毫米培养皿中。以滴加方式在中央角膜表面加入2毫升MEM,可含或不含待测试剂,确保覆盖角膜缘结膜区域,同时使上皮暴露于空气中。
然后,将培养皿置于37°C、含5%二氧化碳的湿化培养箱中。在损伤后40小时,用Richardson染色液对受损的培养角膜进行染色。染色后,在拍照前用PBS洗涤角膜。
然后,使用相同尺寸的环钻标记原始伤口,并用小型手术刀刮取标记圈内的上皮细胞。收集刮下的细胞并转移至预冷的离心管中。
与使用溴芬酸 0.09% 和酮咯酸 0.45% 处理的角膜相比,使用奈帕芬酸 0.1% 处理的角膜剩余伤口面积显著更大。在高葡萄糖条件下,用 LL-37 在 0.2 和 0.5 微克/毫升浓度下处理的角膜与未处理的角膜相比,伤口愈合显著加快。
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本研究探讨糖尿病伤口愈合过程中角膜的先天免疫,重点关注糖尿病患者对细菌感染的易感性及愈合延迟的问题。该研究鉴定了可能为糖尿病性角膜病变提供新疗法依据的关键分子平衡机制。
器官培养的猪角膜为评估眼部毒性和治疗性伤口愈合提供了一个具有转化相关性的体外平台,能够高度模拟人角膜的生理特性。该系统有助于对候选药物进行作用机制层面的风险评估,并提升早期眼科药物研发中预测结果的可信度。该模型通过定量的伤口愈合数据和分子分析结果,为项目筛选及基于风险评估的推进决策提供依据。
这种离体猪角膜模型可融入从发现到临床前研究的连续过程,支持眼用治疗药物的靶点验证和先导化合物的筛选。