2024年10月18日
本文介绍了通过免疫印迹法简洁评估细胞外囊泡(EVs)中自噬体标志物LC3-II水平的方法。对EVs中LC3-II水平、自噬溶酶体形成以及omegasome形成的分析表明,当自噬体与溶酶体融合受阻时,STX6在释放LC3-II阳性EVs中具有新的作用。
我们的研究聚焦于以核蛋白TDP-43在细胞质中异常积聚为特征的进行性神经退行性疾病,例如肌萎缩侧索硬化症(ALS)或TDP-43蛋白病变型额颞叶变性(FTLD-TDP)。我们致力于阐明TDP-43病理如何以类似朊病毒的方式在脑内扩散。我们先前发现,TDP-43通过细胞外囊泡释放的过程由自噬功能失调所介导。
FTLD-TDP 中的颗粒蛋白原(progranulin)促进此过程。下一步的挑战是阐明自噬如何调控含 TDP-43 的细胞外囊泡的生成与释放,这可能为肌萎缩侧索硬化症(ALS)或 FTLD-TDP 发现治疗靶点。首先,取培养的 HeLa 细胞,使用细胞计数器计数,并将一乘十的六次方个细胞接种至含培养基的六厘米培养皿中。
将细胞在37摄氏度、5%二氧化碳及受控湿度条件下孵育24小时。接着,配制20微摩尔的siRNA溶液。取100微升低血清培养基与3微升siRNA于低吸附离心管中混合,制备溶液A。然后,取100微升低血清培养基与5微升转染试剂于低吸附离心管中混合,制备溶液B。随后,将溶液A与溶液B混合,并在室温下孵育5分钟。
现在将溶液A和溶液B的混合物加入用于培养HeLa细胞的培养基中,孵育24小时。次日,用PBS洗涤细胞,并在37摄氏度、5%二氧化碳及受控湿度条件下,用500微升0.25%胰蛋白酶和1毫摩尔EDTA溶液处理细胞5分钟。接着,向细胞中加入2.5毫升培养基,使用带有20微升吸头的巴斯德转移移液管,制备单细胞悬液。
计数细胞后,将一乘以十的六次方个细胞接种至十厘米培养皿中,并按先前所示进行孵育。孵育结束后,准备含有溶剂对照或100纳米摩尔巴佛洛霉素A1的培养基。随后将细胞暴露于含有溶剂对照或100纳米摩尔巴佛洛霉素A1的培养基中,继续孵育24小时。次日,收集十厘米培养皿中的全部培养基。
将收集的培养基转移至15毫升离心管中,在4°C条件下以3,000 G离心10分钟,以去除细胞碎片。为分离P1细胞外囊泡组分,将3,000 G离心后的上清液转移至离心管中,在4°C条件下以20,000 G离心1小时。
为了分离P2细胞外囊泡组分,将20,000 G离心后的上清液转移至超速离心管中,在4°C条件下以110,000 G离心1小时。用实验室擦拭纸擦去离心管内壁多余的水分后,将离心管中残留的沉淀物重悬于50 µL的两倍浓度上样缓冲液中,以制备P1细胞外囊泡组分。
然后通过倾倒法去除上清液。用实验室擦拭纸擦去管内多余的水分,并将超速离心管中剩余的沉淀物重悬于50 µL的2倍上样缓冲液中,以制备P2细胞外囊泡组分。将P1和P2细胞外囊泡组分置于95–100 °C金属浴中孵育10分钟。
将培养基从10厘米培养皿转移至15毫升离心管后,用PBS清洗10厘米培养皿中的细胞。随后在37摄氏度、5%二氧化碳及受控湿度条件下,用2毫升0.25%胰蛋白酶和1毫摩尔EDTA溶液处理细胞5分钟。向细胞中加入8毫升生长培养基。
使用带有200微升移液枪头的巴斯德转移移液管吹打细胞,制备单细胞悬液。将细胞悬液转移至15毫升离心管中,在4摄氏度下以1,000 G离心10分钟。然后使用吸液装置移除上清液。
向细胞沉淀中加入 PBS,于 4 摄氏度、1,000 G 离心 5 分钟。去除 PBS 后,在含有 1% sarcosil 的 1 毫升 A68 缓冲液中对细胞沉淀进行超声处理。取 300 微升细胞裂解液与 100 微升 4 倍上样缓冲液混合。
将混合物置于加热块上,在 100 摄氏度下孵育 10 分钟,以制备细胞组分。
本研究探讨了TDP-43在神经退行性疾病中的作用及其通过细胞外囊泡(EVs)释放的机制。研究强调了自噬在调控TDP-43释放中的参与,这可能为肌萎缩侧索硬化症(ALS)和TDP-43蛋白病型额颞叶变性(FTLD-TDP)提供潜在的治疗靶点。
通过细胞外囊泡(EVs)释放LC3-II的定量评估,可为自噬依赖性蛋白质转运提供一种机制性研究窗口,该过程与神经退行性疾病的进展相关。本方案可帮助生物制药团队探究病理性蛋白质扩散的分子决定因素,支持靶点验证以及神经退行性疾病项目组合中的风险调整型推进。该方法在自噬调控与EV介导的生物标志物释放的交汇点上,增强了预测的可信度。
本方案通过实现对自噬和细胞外囊泡生物学的定量、机制性读取,融入了从发现到临床前研究的连续过程。