2025年5月23日
本文介绍了通过向气道注射博来霉素建立与肺纤维化相关的肺动脉高压(PF-PH)大鼠模型的方法。同时提供了对该动物模型进行验证的逐步操作流程。
本研究探讨与肺纤维化相关的三型肺动脉高压的发病机制,重点关注其分子机制。与肺动脉高压不同,间质性肺疾病相关肺动脉高压的潜在机制目前仍知之甚少。该领域的最新进展包括在逆转血管重塑方面的有效性。研究发现了类似癌症的内皮细胞表型以及代谢方面的发现,将氨基酸和脂质代谢紊乱与肺动脉高压的发病机制联系起来。批量和单细胞I-A测序代谢组学以及功能检测(如耐药性测试)是绘制肺动脉高压异质性图谱并识别治疗靶点的关键技术。
[讲师] 首先,使用PE-50导管对大鼠进行气管插管,插入深度为3厘米,即从声门至导管末端的距离。用1毫升注射器配26号针头吸取0.2毫升博来霉素,通过套管单次注入气道。将大鼠置于仰卧位,以确保博来霉素均匀分布。轻轻握住大鼠并缓慢旋转,左右交替倾斜30度至45度角。每次旋转维持10至15秒,重复3至4次。打开PFT软件,检查设备是否被识别。然后打开主控仪器开关,并确保每个信号放大器开关处于关闭状态。设置气流时,打开吸气气流调节螺母,将吸气设为5;再打开呼气气流调节螺母,将缓慢呼气设为-4。将压力值设为60。按照FRC流量、流量、高流量和肺压力的顺序校准仪器,误差应小于5%。麻醉大鼠后,沿颈部中线切开皮肤。逐层分离肌肉,暴露颈段气管上部。在气管软骨环之间做一横向切口。迅速将金属套管插入气管切口,确保位置正确,并用4-0丝线固定。将大鼠放入PFT动物舱内,将气管套管连接至仪器外部的气流通道接口。点击开始按钮,检测用力肺活量(FVC)和动态肺顺应性。检测右心室收缩压(RVSP)时,将麻醉后的大鼠腹部朝上固定于实验台上。用手术剪在颈部右侧做一条长约4厘米的切口。用显微外科镊子轻柔分离颈外静脉,确保隔离出约1厘米长度。在分离静脉的远端和近端各穿两根手术线。用4-0丝线结扎颈外静脉远端。轻轻提起近端手术线,将其置于远端静脉壁上。用小剪刀做约0.3毫米的小切口。将PE-50导管插入颈外静脉后,用4-0丝线将PE-50导管与静脉一起结扎,防止血液泄漏。在记录仪上观察静脉压力波形。缓慢推进导管进入右心房,继续前进至右心室,以显示右心室压力波形。当压力稳定后,记录一分钟的右心室压力,并保存数据用于分析。开胸后,用镊子取出完整的大鼠心脏。用剪刀剪除心房及心脏周围的结缔组织。沿肺动脉方向剪开右心室游离壁。此组织为右心室,其余部分为左心室加室间隔。分离后,用滤纸吸干右心室以及左心室加室间隔表面的液体。使用分析天平分别称量右心室和左心室加室间隔的重量,然后计算其重量比。该图展示了博来霉素诱导的肺纤维化相关肺动脉高压(PF PH)大鼠模型中观察到的血流动力学改变、肺血管重构及肺功能受损情况。与对照组相比,模型组的右心室收缩压及右心室与左心室加室间隔重量比显著升高。组织学染色显示,模型组肺动脉周围蓝色染色区域更多,提示胶原沉积增加。与对照组相比,模型组的用力肺活量和动态肺顺应性显著降低。模型组肺动脉加速时间与射血时间比值、三尖瓣环平面收缩位移(TAPSE)、右心室面积变化分数(FAC)及心输出量均显著降低。模型组羟脯氨酸浓度显著升高,提示肺组织中胶原含量增加。对照组与模型组之间的肝脏和肾脏重量无显著差异。
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本研究介绍了一种通过博来霉素注射在大鼠模型中诱导与肺纤维化相关的肺动脉高压(PF-PH)的方法,并详细阐述了验证该动物模型的逐步操作流程。
建立经过验证的与肺纤维化相关的肺动脉高压(PF-PH)大鼠模型,填补了三类肺动脉高压临床前研究中的关键空白。该模型可用于机制性风险排除及治疗靶点验证,推动针对这一存在高度未满足需求且预后较差的疾病领域的药物研发。可靠的动物模型对于提升生物制药研发早期阶段的预测可信度和项目筛选能力至关重要。
该大鼠模型通过支持假说验证、靶点确证以及对PF-PH干预措施的转化评估,融入了从发现到临床前研究的连续过程。