2025年3月7日
本研究建立了一种优化的小鼠系膜细胞(MCs)分离方案及其 离体 细胞培养。这些细胞可多次传代、冻存、复苏和培养,且不会影响细胞生长或蛋白表达。
我们的研究重点之一是多发性骨髓瘤相关的肾功能损害。为了支持这项研究,我们已建立并优化了小鼠系膜细胞原代培养的实验方案。该实验所需设备易于获取,操作步骤简便可行。
获取靶细胞仅需两到三周时间。该技术有助于肾脏研究,并支持针对疾病模型中系膜细胞功能、治疗开发或信号转导研究的探索。为从小鼠中分离小鼠系膜细胞(MCs),首先对已适当实施安乐死的动物,使用剪刀和镊子无菌地取出肾脏,并将其置于培养皿中。
用 Earle 平衡盐溶液冲洗肾脏,然后用镊子仔细去除结缔组织和肾包膜。用手术刀将肾脏纵向切成两半。向培养皿中加入三到四毫升 I 型胶原酶溶液,并用塑料细胞研杵充分研磨组织。
用移液器将培养皿中的所有组织和溶液转移至一个15毫升离心管中。用1至2毫升I型胶原酶溶液冲洗培养皿,以确保组织完全转移。将离心管置于37摄氏度摇床中,以每分钟120转的速度振荡30分钟。
然后,向混合物中加入等体积的终止液或培养基一。用移液器将溶液从离心管中吸出,并通过100微米细胞滤网过滤。将滤液收集至50毫升离心管中。
将滤液通过40微米细胞筛,仅保留筛网上的细胞。用培养基反复冲洗细胞筛,以最大限度收集细胞。将收集到的细胞从筛网转移至新的50毫升离心管中。
在室温下以600g离心5分钟。离心后,根据所需的细胞密度将细胞重悬于细胞培养皿中。将培养皿置于37摄氏度、含95%空气和5%二氧化碳的细胞培养箱中。
沿培养皿内壁加入一到两毫升 PBS 以冲洗细胞。用移液器从皿底吸除全部 PBS,然后沿皿内壁加入 10 毫升培养基。当细胞融合度达到 80% 时(通常在 7 至 10 天内),用无菌 PBS 洗涤细胞两次。
向培养皿中加入0.25%胰蛋白酶溶液以消化细胞。将培养皿置于37摄氏度的培养箱中。当大多数细胞呈现圆形并从表面脱落时,加入等体积的培养基二终止胰蛋白酶消化。
在室温下以 600g 离心 5 分钟,然后将细胞重悬于培养基二中。本研究中分离的 MC 细胞表现出 α-SMA、纤连蛋白和波形蛋白的显著高表达。在培养基二中培养 10 天后,对纯化并培养的 MC 细胞进行免疫荧光染色显示,超过 95% 的细胞同时表达 α-SMA 和波形蛋白。
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本研究致力于建立一种优化的小鼠系膜细胞(MCs)分离与培养方案,这些细胞对肾脏研究至关重要。该方法可在维持细胞生长和蛋白表达的同时,实现细胞的多次传代、冻存与复苏。
高效分离和纯化小鼠肾小球系膜细胞(MCs)可直接支持肾脏病学的早期研究和疾病建模。该优化方案能够快速获得高纯度的MCs,从而在肾脏病理生物学中实现可靠的靶点验证和机制研究。该方法缩短了实验周期,提高了可重复性,增强了下游治疗发现的预测可靠性。
该方案将MC的分离置于早期发现与临床前研究的交汇点,从而在肾脏疾病项目中实现从靶点验证到先导物发现的无缝衔接。