2025年7月8日
该协议概述了利用荧光发光适配体 DAP-10-42 作为信号报告基因的分离杂交探针的设计,以及它们在核酸检测和单核苷酸取代靶标之间区分的应用。
我们正在开发用于序列特异性核酸分析的新型荧光杂交探针。最近,杂交分析工具通过利用 CRISPR-Cas 系统的检测进行了扩展。目前,最先进的杂交探针,如TaqMan和分子信标探针,最常用于分析核酸靶标。
准确检测单核苷酸取代和核酸靶标仍然具有挑战性。我们的方案可确保所需的细胞活性水平,同时提供无标记荧光信号读数。首先,设计构成 SLAS 的两条未修饰的 DNA 寡核苷酸链的序列。
使用含有核苷酸的片段来处理 DAP-10-42 的 6 至 39 个。通过去除第 5 位鼓起的胸腺嘧啶,将茎缩短至四个碱基对并添加末端胞嘧啶-鸟嘌呤碱基对,将由核苷酸 1 至 8 和 36 至 42 组成的茎 1 转化为茎 1 引物。在一条 SLAS 链中包括核苷酸 9 至 29,在另一条 SLAS 链中包括核苷酸 30 至 35。
通过添加脱氧GGTCAT将片段的三个主要末端序列与核苷酸9延伸至29。然后用脱氧TGACC延伸30至35片段的五个主要末端序列,形成六碱基对茎2。现在用脱氧 TT 连接子和与核酸靶标互补的 DNA 序列在两条链上延伸茎 1 引物。
这产生了构成探针的链 SLAS-U 和 SLAS-S 序列。使 SLAS-S 与 7 到 10 个核苷酸区域互补。这包括单核苷酸取代位点。
然后确保 SLAS-U 的靶结合臂与 SLAS-S 区域相邻的 15 至 25 个核苷酸片段互补。使用 UNAFold Web 服务器评估目标结合双链体的熔解温度。单击 INAMelt 选项卡。
转到应用程序并选择两态熔化杂交。在左右框中以五个素数到三个素数顺序输入相互作用的序列。然后将测定温度调节至22摄氏度,并将一价和二价阳离子浓度分别输入至20毫摩尔和25毫摩尔离子。
调整相应框中相互作用序列的浓度。按提交并查看相应双链体的吉布斯能量变化、焓、熵和熔化温度值。确认完全匹配的靶标和 SLAS-S 和 SLAS-U 的靶标结合臂的熔解温度高于测定温度 22 摄氏度。
确保 SLAS-S 和不匹配的靶标之间的双链体产生低于测定温度的熔解温度,以保持特异性。如有必要,调整目标绑定臂的长度以满足这些条件。从商业 DNA 供应商处获取最终的 SLAS-U 和 SLAS-S 寡核苷酸链,或使用自动 DNA 合成器在内部合成它们。
制备 Auramine O、SLAS-S、SLAS-U 和测定缓冲液的储备溶液。制备包含除靶标之外的所有测定组分的预混液。将无核酸酶水添加到预混液的最后五乘六体积中。
然后涡旋并旋转预混液。将 50 微升分配到每个样品管中。接下来,将一个样品标记为无目标空白,将一个样品标记为阳性对照。
将 10 微升含靶标样品加入装有预混液的试管中,制成 60 微升样品。对于空白,加入 10 微升无核酸酶水。然后将含有靶序列的 10 微升合成 DNA 寡核苷酸移液到阳性对照管中。
使用微量离心机在离心机中短暂混合所有样品。然后将试管在22摄氏度下孵育10至60分钟。使用荧光分光光度计在 475 纳米激发时测量 540 纳米的荧光。
SLAS 专为靶向 NANOGP8 基因的特定片段而定制。靶标 M 与 SLAS-S 链完全互补,而靶标 MM 具有胞嘧啶核苷酸位置 1, 423,导致与 SLAS-S 不匹配。添加完全互补的靶标 M 后,荧光稳步增加,并在 45 至 50 分钟后趋于稳定。
然而,在10分钟内可以检测到清晰的信号,信白比为10 SLAS显示出完全匹配的靶标的高荧光信号,但对不匹配的靶标或空白则不然。荧光输出随目标浓度线性增加,最高可达 500 纳摩尔,从而能够定量和确定检测限。PCR 扩增样品显示不同水平的信号,只有样品 2 超过荧光阈值 2。
根据校准曲线,样品2中NANOGP8扩增子的浓度估计为124+或13纳摩尔。SLAS信号的荧光检测在台式分光光度计和便携式荧光计上都是一致的。使用紫外线还目视观察到高于 20 的信白比。
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本协议描述了用于特定核酸分析的荧光杂交探针的开发,重点关注DAP-10-42作为信号报告器的使用。它解决了检测单核苷酸替换的挑战。
Sequence-specific nucleic acid analysis using split hybridization probes with DNA fluorescent light-up aptamers (FLAPs) addresses the persistent challenge of detecting single-nucleotide substitutions with high specificity and quantitative confidence. This approach enables label-free, cost-effective, and scalable fluorescence-based readouts, supporting robust target validation and mechanistic de-risking in early discovery and screening workflows. The method's selectivity and quantitative outputs are directly relevant for portfolio triage and risk-adjusted advancement decisions in biopharma R&D.
This split hybridization probe platform integrates from early discovery through lead identification and preclinical research, supporting hypothesis testing, assay development, and translational biomarker validation.