2025年6月13日
我们描述了一种高通量克隆方法的方案,即基于 CRISPR 的穿梭克隆(CRISPR穿梭克隆),它允许在载体之间转移感兴趣的 DNA 片段,而无需对 DNA 片段进行 PCR 扩增。
我们描述了高通量克隆方法CRISPRshuttle的方案。这涉及在载体之间转移目标 DNA 片段,而无需对 DNA 片段进行 PCR 扩增。现有技术,如门户输注和单载体克隆 PCR 扩增。这种方法需要特定片段的程序,包括初级设计和分泌验证。这些标签是劳动密集型且耗时的。CRISPR 穿梭消除了 PCR,同时将载体之间的目标 DNA 片段转移到连续的试管反应中。该方法超越了对特定片段处理的需求,从而加快了样品的构建。
[旁白]首先,通过组合屏幕上显示的试剂,为给定数量的消化反应制备预混液。将正确标记的 0.2 毫升管放在冰上的铝制冷却块中。通过混合适量的 CAS9、sgRNA、10、CAS9 缓冲液和 DEPC 处理水,制备用于 N 次反应的预混液。将预混液彻底混合并旋转。将 3.75 微升预混液等分到每个反应管中。将 0.75 微升 0.03 微摩尔 PLX 304 ORF 质粒加入每个彻底混合的试管中,并将试管在 37 摄氏度下孵育一小时。通过混合 0.14 微升 3.36 微摩尔线性化 pBIDC-UASC-pLXvect 和 1.8 微升 Gibson 组装预混液来制备预混液。将预混液彻底混合并旋转。现在将 1.94 微升预混液等分到每个试管中。将 1.66 微升 CAS9 切割质粒加入每个试管中。充分混合并在 50 摄氏度下孵育一小时。在冰上解冻细菌感受态细胞。将 10 微升解冻的细胞等分到每个预冷的 1.5 毫升管中。轻轻地将 10 微升感受态细胞与 1 微升 Gibson 组装产物混合。将试管放在冰上 30 分钟。在 42 摄氏度下对试管进行热电击一分钟,然后在冰上冷却两分钟。将 100 微升预热的 SOC 培养基加入每个试管中,并在 37 摄氏度下以 250 RPM 摇动一小时。最后,将细胞置于含有每毫升氯霉素15微克的LB琼脂平板上,并在37摄氏度下孵育过夜。该图显示了使用 CRISPRshuttle 系统生成的 UAS-cDNA/ORF 质粒限制性分析的代表性结果。在该分析中,对 15 个 UAS-cDNA/ORF 构建体的 PVU2 限制性酶切表明,所有样品在大约 1072 个碱基对和 1,820 个碱基对处表现出预期的片段模式。
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本文介绍了一种基于CRISPR的穿梭克隆(CRISPRshuttle cloning)高通量克隆方法的实验方案。该创新技术能够在无需PCR扩增的情况下,实现DNA片段在不同载体之间的转移。
高通量生成全基因组范围的质粒文库是系统性基因功能研究和生物制药研发中靶点验证的关键推动因素。基于CRISPR的穿梭克隆技术(CRISPRshuttle)无需PCR扩增,简化了DNA片段在不同载体间的转移过程,显著加快了文库构建速度。该技术能力在关键发现阶段提升了预测的可靠性与操作效率。
CRISPRshuttle 克隆技术整合了早期发现与先导识别的环节,能够实现从假设驱动的基因筛选到高通量构建体生成与筛选的无缝衔接。