Name: 一个实验性人体DIEP瓣模型，用于研究血管化复合同种移植和游离瓣的保存策略 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-12-05T13:15:00.000+00:00
Duration: 7 min 57 s
Description: 了解基于腹壁下动脉的人体穿支皮瓣获取技术，用于血管化复合同种移植和游离皮瓣保存研究。该方法为实验外科提供可靠的人体模型，有助于提高移植存活率并减少动物实验。

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所有患者均按照《赫尔辛基宣言》的规定接受了标准的人道关怀，研究方案已获得机构伦理委员会批准（项目编号：IRB00014528_2025_32）。患者已知情同意将其废弃的组织用于科研目的。
1. 术前护理
注意：这些皮肤穿支皮瓣（不包括筋膜和肌肉）来源于患者手术废弃组织，通常为减重术后患者，且仅可在既往接受过腹壁皮肤脂肪切除术并具有可预测脐部移位（即存在显著腹部悬垂赘皮）的情况下获取。术中计划进行吸脂者为排除标准。同时进行腹直肌分离修复并非禁忌，因该操作在皮瓣切取后实施。腹部悬垂赘皮通常至少可部分覆盖耻骨区域。患者必须无血栓栓塞病史，且体重指数（BMI）须低于30 kg/m²，因更高数值提示肥胖，且在全身麻醉下进行择期非生命必需手术的风险-获益比不利。既往有腹部手术史（吸脂术除外）通常不构成禁忌，前提是可通过多普勒检查识别穿支或术中直接观察到穿支。对于真正的临床单侧DIEP游离皮瓣重建术，也应避免实施本项研究性操作，因该类手术本身已较为耗时且复杂，额外增加术前步骤将不合理并增加手术风险。
<ol>
	<li>患者取站立位，使用皮肤记号笔进行术前皮肤脂肪标记。从耻骨联合至剑突确定中线，并在阴阜联合上方约7 cm处画一条横线。将此线向两侧各延伸约7 cm，轻柔向上弯曲，连接至髂前上棘稍下方。</li>
	<li>患者取仰卧位，使用手持式多普勒超声探头（8–10 MHz）定位脐周穿支血管。 
	注意：在皮肤上涂抹少量无菌超声耦合剂，以确保良好的声学接触。将探头以45°角轻触皮肤，避免压力过大而减弱信号。听到强而清晰的三相脉动音提示存在动脉穿支。使用无菌标记笔在皮肤上标记每一处穿支位置，建立穿支分布图，此步骤为DIEP皮瓣切取前的常规操作。</li>
	<li>使用皮肤记号笔勾画出所需大小的椭圆形皮瓣轮廓，确保其内侧边缘包含已标记的穿支，并跨越脐部两侧（图1）。</li>
	<li>按常规腹部手术标准，使用无菌手术巾对从剑突至大腿上1/3，包括会阴区域的手术野进行消毒铺巾。</li>
</ol>
<img alt="整形外科手术规划与实施，术前示意图及手术设置。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69392/69392fig1.jpg" data-altupdatedat="1784001604000" data-alt="图1"> 
图1：减重术后腹部皮肤软组织切除术联合DIEP皮瓣切取的术前评估。（A）使用多普勒超声仪和皮肤标记笔进行术前标记，以识别并勾画出腹中线两侧的脐周穿支血管。（B）术者展示拟切除的腹部皮肤及皮下组织的松弛程度，沿横向标记线切开前，明确突出的脂肪皮肤皱襞。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69392/69392fig1large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
2. 皮瓣获取
<ol>
	<li>使用15号手术刀片，沿脐周作环形切口至皮下组织层，将脐部从腹壁上分离。</li>
	<li>在脐缘两侧各放置一根长而松的不可吸收缝线。</li>
	<li>使用梅奥剪刀从浅层向深层垂直解剖脐部，直至完全游离，同时保留其脐蒂。 
	注意：此步骤中助手的协助至关重要。应使用Gillies拉钩暴露脐部，同时对长的不可吸收缝线施加轻柔的纵向牵引，以利于解剖。脐蒂周围的脂肪形成一条坚实的索状结构，在脐部游离过程中易于触诊，有助于精确识别并保护脐蒂。</li>
	<li>沿术前标记线，在阴阜联合上方约7 cm处作一低位横向皮肤切口，两侧轻柔地向前后上髂棘方向弯曲，使用15号或21号手术刀片完成。</li>
	<li>从下切口开始，在皮下平面掀起上腹部整形皮瓣，并向头侧推进至脐部。使用尖头单极电凝设备，设定为凝固模式下约50–70 °C和80 W，将腹直肌前筋膜与覆盖其上的皮下组织和皮肤分离，同时在整个解剖过程中严格维持止血。</li>
	<li>当解剖接近先前游离的脐蒂时，将电凝温度降至约20–30 °C，功率仍保持在凝固模式下的80 W，并改用Metzenbaum剪刀进行精细解剖，以避免损伤脐蒂。</li>
	<li>识别并仔细游离两条主要的脐旁穿支血管，它们起源于深部腹壁下动脉系统。在直视下使用Stevens剪刀或小型Metzenbaum剪刀对每条穿支进行环周解剖，保留其血管蒂。解剖范围不得超出腹直肌前腱膜水平（图2）。 
	注意：穿支的选择依据其大小；在直视下显得较粗大且有搏动者优先选用。围绕脐部的解剖必须精细，以避免损伤这些穿支。</li>
	<li>使用15号刀片沿中线纵向切开脂肪皮肤组织瓣（adipocutaneous panniculus），从下部耻骨切口中心向上至脐部，随后使用设定为约50–70 °C的单极电凝继续分离。</li>
	<li>继续使用设定为约50–70 °C的电凝设备向头侧解剖至剑突区域，并沿侧肋缘扩展，保持皮瓣血管蒂完整，不予以切断（图3）。 
	注意：若因血管蒂影响导致脐上区域解剖困难，出于操作便利考虑，此第9步可延后进行；也可在第12步切断血管蒂后再执行，具体根据术中情况决定。</li>
	<li>使用标准单极电凝设备（凝固模式下约50–60 °C、80 W）进行中等强度凝固，控制轻微出血，以实现精确止血。</li>
	<li>根据初始标记，使用皮肤标记笔重新调整皮肤皮瓣的轮廓，确保在第8步纵向切开的脂肪皮肤组织瓣两侧，穿支血管位于皮瓣内侧边缘（图4）。 
	注意：为避免因测试溶液暴露表面积不同而产生偏差，若获取两个皮瓣，则两者必须大小相同。皮瓣厚度由皮瓣自身的皮下组织决定，手术中无法减薄而不危及皮瓣完整性。</li>
	<li>使用可吸收3-0缝线或自动夹夹闭并结扎腹壁下动脉穿支血管蒂，在筋膜上方切断穿支，不进行筋膜下解剖。记录暖缺血开始时间。 
	注意：在完全分离皮瓣并注射细胞保护剂前，通常会经历约10分钟的皮瓣缺血期。</li>
	<li>将脐上皮肤及皮下脂肪向下推进，并使用不可吸收缝线将游离的腹部皮瓣在中线处固定于下切口边缘，缝合时留一端线尾较长。 
	注意：此步骤中应将患者置于半屈曲体位。对上腹部皮瓣施加向下的牵引有助于判断需切除的多余皮肤量。</li>
	<li>利用连接脐上区与耻骨区的中线不可吸收缝线的长端作为引导，用皮肤标记笔在多余的脂肪皮肤组织瓣上画出切除线，向两侧延伸至前后上髂棘，方法同常规腹壁成形术。DIEP皮瓣位于此标记切除线的下方（补充图1）。</li>
	<li>使用15号手术刀片沿术前标记线切开皮瓣。按照预先设计的方案获取穿支皮瓣，使用单极电凝设备（凝固模式下约50–60 °C、80 W）进行分离（图5）。 
	注意：此为最精细的步骤之一，必须确保穿支完全包含在皮瓣内。建议助手提供轻柔牵引，同时术者在整个解剖过程中持续直视观察穿支。不建议使用冷刀解剖，因其可能破坏皮瓣完整性并导致血管渗漏。</li>
	<li>将穿支皮瓣与周围废弃组织完全分离。 
	注意：若获取两个皮瓣并施加不同处理，可通过在其中一个皮瓣上缝合标记线加以区分。</li>
	<li>切除与腹壁成形术中去除的多余皮肤和脂肪相对应的冗余真皮脂肪组织。 
	注意：若出于操作便利考虑，在切除多余真皮脂肪组织后才获取穿支皮瓣，可使用一次性无菌电池供电电凝笔（大头，温度约1,200 °C）完成最终分离。此时无法使用回路电极，因为组织已完全脱离患者。获取DIEP皮瓣后，手术团队将皮瓣交给手术室内等候的研究团队，随后继续进行腹壁成形术，沿预先标记的切除线解剖，分离并移除多余的脂肪皮肤组织瓣。</li>
</ol>
<img alt="使用牵开器进行组织解剖的外科手术过程，医学操作背景。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69392/69392fig2.jpg" data-altupdatedat="1784001604000" data-alt="图2"> 
图2：腹壁皮肤脂肪切除术术中视图，显示腹壁下深部穿支血管蒂的骨骼化。 图像显示脐上解剖前及脐下纵向切开前的手术视野。两条主要的双侧脐旁腹壁下深部穿支血管已暴露，并以手术器械标示。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69392/69392fig2large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="外科手术、筋膜层暴露、腹部手术、医疗操作、临床技术。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69392/69392fig3.jpg" data-altupdatedat="1784001604000" data-alt="图3"> 
图3：脐上分离后术中视野，显示双侧腹壁下深动脉穿支。 穿支未被结扎，在轻柔牵拉下可更清楚地观察其筋膜下走行路径及长度（白色箭头所示）。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69392/69392fig3large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="手术切口规划；术前组织标记、医疗操作对比、示意图。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69392/69392fig4.jpg" data-altupdatedat="1784001604000" data-alt="图4"> 
图4：术中视图，显示在结扎前于皮肤上以椭圆形勾画出的DIEP皮瓣轮廓。（A）使用皮肤标记笔（白色圆圈）将皮瓣区域调整并以椭圆形勾画，以确保每侧脂肪皮肤皱襞的皮瓣内侧边缘均包含穿支血管。（B）放大视图，显示DIEP皮瓣轮廓及根据术前多普勒定位以“x”标记的穿支血管（白色箭头）。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69392/69392fig4large.jpg" target="_blank">请点击此处查看此图的放大版本。</a>
补充图1：对上腹部皮瓣施加向下的牵引有助于确定需要切除的多余皮肤范围。 连接脐上区域与耻骨区域的中线不可吸收缝线的长端被用作参考引导。使用皮肤标记笔，沿该缝线的走行方向在多余的脂肪皮肤组织（皮赘）上画出切除线（白色箭头），并将此线向外侧延伸至两侧的髂前上棘。DIEP皮瓣位于该标记切除线的下方。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69392/Supplementary%20figure%201.pdf" target="_blank">请点击此处下载该文件。</a>
<img alt="DIEP皮瓣手术的术前规划与切口标记，标尺显示尺寸。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69392/69392fig5.jpg" data-altupdatedat="1784001604000" data-alt="图5"> 
图5：游离腹壁下深动脉穿支（DIEP）皮瓣在切取过程中、血管蒂结扎后的术中视野。 （A）在定位穿支血管后，使用手术标记笔勾画出大小约为10 cm × 6 cm的DIEP皮瓣轮廓。（B）沿预先标记的线条进行皮肤切开及皮瓣切取。初始切口使用15号刀片完成，随后在凝血模式下使用单极电刀（温度设定约为50–60 °C，功率80 W）进行解剖，此时多余的皮肤脂肪组织仍与患者身体相连。当组织完全游离后，采用无菌、一次性、电池供电的电凝笔（大头尖端，温度约1,200 °C）完成最终分离。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69392/69392fig5large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
3. 皮瓣的制备
<ol>
	<li>使用显微外科器械在放大镜下解剖血管蒂，并辨认动脉和静脉（图6）。用微血管扩张器轻柔地打开动脉管腔。 
	注意：准备皮瓣时，应使用配备显微外科器械的专用无菌操作台。从动脉末端修剪2-3 mm，以获得清洁、规则的边缘，便于插管。</li>
	<li>在获取皮瓣的同时称量每块皮瓣，以便后续定量评估水肿形成情况。</li>
	<li>使用18-24 G套管对动脉进行插管，并用5-0丝线结扎固定于管腔内（图7）。 
	注意：本实验中采用24 G套管进行插管，因研究涉及通过单次注射评估细胞保护剂。对于ex vivo机械灌注或体外膜肺氧合（ECMO）应用，应使用较大的18-20 G套管进行插管。在ex vivo灌注过程中如发生导管阻塞，可用肝素化生理盐水轻柔冲洗或更换套管以恢复灌注。维持低灌注压（&lt;25 mmHg）有助于防止再次阻塞。</li>
	<li>通过导管向穿支动脉内注射造影剂，并在透视下评估皮瓣（图8）。 
	注意：造影剂应使皮瓣内小毛细血管均匀显影，表明所选血管蒂提供了充分的灌注区域。在此阶段，若出现无灌注区域，可能提示该模型不适合进一步研究使用，或需切除皮瓣远端部分。获取的皮瓣随后可用于实验方案，可置于灌注机、ECMO设备上，或注射测试溶液作为细胞保护剂。可在不同时间点进行穿刺活检（直径范围为1 mm至8 mm），且不影响皮瓣完整性，从而实现对组织内组织学变化的动力学评估。</li>
</ol>
<img alt="外科移植过程；A，组织测量；B，移植物制备；医疗程序示意图。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69392/69392fig6.jpg" data-altupdatedat="1784001604000" data-alt="图6"> 
图6：研究用DIEP皮瓣取材后的观视图。（A）显示已获取的DIEP皮瓣，使用显微外科镊子解剖并分离血管蒂。动脉末端修剪数毫米以获得整齐切口，并用显微扩张镊子轻柔打开管腔。（B）放大视图，显示显微外科镊子固定优势穿支动脉，一根24G导管插入管腔用于对比剂注射。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69392/69392fig6large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="用于医学操作分析中尺寸评估的手术组织样本及注射器。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69392/69392fig7.jpg" data-altupdatedat="1784001604000" data-alt="图7"> 
图7：DIEP皮瓣血管蒂的插管。（A）使用5-0丝线将导管固定到位，结扎时动作轻柔，以避免阻塞血管蒂管腔。（B）未连接注射器时的导管位置视图，显示导管插入血管腔的程度。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69392/69392fig7large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="冠状动脉造影，心脏血管可视化，诊断成像，医学研究。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69392/69392fig8.jpg" data-altupdatedat="1784001604000" data-alt="图8"> 
图8：DIEP皮瓣收获后的X线透视图像，显示其血管解剖结构。（A，B）通过24G导管向主要穿支动脉注入造影剂，显示分支模式及血管化区域，证实两个不同皮瓣的存活能力。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69392/69392fig8large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>

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</ol>

作者无任何披露信息。

人体模型有助于将动物研究的结果转化为临床实践，从而提高临床前研究的相关性和预测性16,17,18。这些模型必须经过精心设计，以确保安全性和符合伦理规范，这通常限制了实验的范围和侵入性17。在获取的四个皮瓣中，均无需额外解剖，且所有病例的手术时间均未出现显著延长。该皮瓣血管的直径相对较大（平均1.2 mm），与动物模型相比，更易于进行插管。通过腹壁皮肤观察皮瓣灌注情况也相对更为简便。与临床实践中常用的皮瓣（DIEP 和腹直肌横行肌皮瓣 [TRAM]）不同，该实验模型不涉及腹直肌筋膜的切开或肌肉组织的取材。因此，尽管所述皮瓣的蒂较短，但其长度仍足以满足实验性保存研究的需要（图10）。
关于最后一步和皮瓣插管，具体操作取决于保存研究的类型。对于细胞保护剂注射研究，可通过动脉蒂使用22或24 G导管...

血管化复合组织异体移植（VCA）为存在复杂组织缺损的患者，特别是面部和上肢缺损患者，提供了一种前景广阔的重建治疗方案1。然而，VCA 极易受到缺血-再灌注损伤的影响，这可能损害移植物的存活能力并影响长期预后2。在此背景下，诸如细胞保护剂注射、ex vivo 机械灌注以及超低温保存等器官保存技术已逐渐发展成为延长保存时间、优化移植物质量，并在移植前评估其活性的重要策略3,4,5,6,7。尽管常温下ex vivo 器官灌注技术在过去十年中已成功从实验性实验室技术转化为临床实践，并取得了令人鼓舞的结果8，但在 VCA 领域，该技术目前仍主要局限于研究阶段9。
迄今为止，大多数关于血管化复合组织移植（VCA）灌注方案的研究依赖于动物模型，尤其是猪或啮齿类动物的复合组织模型10。尽管这些模型提供了有价值的见解，但由于解剖学、免疫学和生理学上的差异，其可重复性和转化应用价值本质上受到限制11,12。人体组织模型可提供更具相关性的信息，但用于研究的脑死亡供体新鲜组织极难获取，需要复杂的后勤协调、严格的监管审批，并引发伦理方面的担忧13,14。理想的替代方案应是一种非尸体来源、符合伦理要求、基于人体的皮瓣模型，该模型不应具备完整VCA手术的复杂性或风险，且对患者完全安全。尤为重要的是，该模型还应易于获取，以促进可重复、可扩展的研究开展。
本文描述了一种用于血管化复合组织移植（VCA）保存研究的人类深部下腹壁穿支（DIEP）皮瓣模型，该模型利用腹部整形手术中废弃的组织，对患者无任何额外风险。

<table><tbody><tr><td>1 mL 和 5 mL 鲁尔锁注射器</td><td>Becton Dickinson</td><td>https://www.bd.com/zh-cn/产品与解决方案/产品/产品页面.309646</td><td></td></tr><tr><td>11.5&amp;rdquo; 中型和小型 Premium Surgiclip II 自动缝合血管夹施夹器</td><td>Covidien</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>22&amp;ndash;24 G 血管套管钝头</td><td>美敦力公司</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>5-0 丝线缝合线&amp;nbsp;</td><td></td><td>N/A</td><td>任何兼容的缝合线</td></tr><tr><td>一次性电池供电的 disposable 电灼笔&amp;nbsp;</td><td>Helpmedical，欧洲</td><td>N/A</td><td>1200 &amp;deg;C，大口径吸头</td></tr><tr><td>Adson 镊子</td><td>多光子显微术</td><td>106-2112A</td><td></td></tr><tr><td>双极电凝钳</td><td>Olsen</td><td>20-1320I</td><td></td></tr><tr><td>一次性手术刀 #15 &amp;& #21</td><td>Sklar</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>伊红&amp;nbsp;</td><td>Microm 微型技术</td><td>U/C0363</td><td></td></tr><tr><td>法拉伯夫拉钩</td><td>Medicta Instruments</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>细针电凝术</td><td>Cormedica</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>OEC MiniView Max</td><td>GE Healthcare</td><td>N/A</td><td>X线透视系统</td></tr><tr><td>镊子扩张器</td><td>WPI</td><td>15910</td><td></td></tr><tr><td>苏木精&amp;nbsp;</td><td>Microm 微技术</td><td>U/C0303</td><td></td></tr><tr><td>碘海醇 300 mg I/mL</td><td>GE Healthcare Canada Inc.</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>微型剪刀</td><td>WPI</td><td>504492</td><td></td></tr><tr><td>Valleylab 单极电刀</td><td>美敦力公司</td><td></td><td></td></tr><tr><td>非离子型碘造影剂，Omnipaque 300 mg I/mL</td><td>GE Healthcare</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>便携式声学多普勒仪，8 MHz</td><td>Parks 医疗电子公司</td><td>https://www.parksmed.com/</td><td></td></tr><tr><td>0.9% 生理盐水溶液</td><td>GenDepot</td><td>S0600-101</td><td></td></tr><tr><td>标准整形外科器械套装</td><td>Aesculap</td><td>N/A</td><td>包括3号手术刀柄、梅岑鲍姆剪刀、梅奥剪刀、艾德森镊子、吉里斯镊子、解剖剪、止血钳和持针器。</td></tr><tr><td>斜视剪刀</td><td>Surtex</td><td>102-4109</td><td></td></tr><tr><td>外科标记笔</td><td>卡地纳健康</td><td>212PR</td><td></td></tr><tr><td>缝线 Ethilon 4.0 和 3.0</td><td>Ethicon</td><td>1667G</td><td></td></tr><tr><td>组织镊</td><td>多光子显微术</td><td>106-0511</td><td></td></tr></tbody></table>

一种用于研究血管化复合异体移植物和游离皮瓣保存策略的实验性人体diep皮瓣模型

An Experimental Human DIEP Flap Model to Investigate Preservation Strategies for Vascularized Composite Allografts and Free Flaps

近年来，保存方法如细胞保护剂注射， 离体 机器灌注与超冷保存已成为通过减轻缺血和缺氧损伤来增强标准及边缘器官长期保存效果的策略。尽管前景良好，这些技术在血管化复合组织异体移植（VCA）领域的应用仍主要局限于临床前研究。迄今为止，大多数针对VCA灌注策略的研究依赖于动物模型，尤其是猪或啮齿类动物的复合组织。虽然这些模型可提供重要的机制性见解，但其在解剖学、免疫学和生理学方面的差异限制了研究结果在人体应用中的可重复性与转化价值。
本方案详细描述了为保存研究获取人类腹壁下深部穿支（DIEP）皮瓣所需的每一步手术操作。穿支血管在筋膜上方被切断，不进行任何筋膜下解剖，从而获得一段虽短但足以用于插管的血管蒂。该模型利用标准腹壁成形术中废弃的组织，不会对患者造成额外风险。文中明确了关键操作步骤，以确保获取功能完整的皮瓣，同时不延长手术时间或影响患者安全。在实验使用前，通过功能性影像学检查确认皮瓣的存活能力，还可进行连续组织活检以评估组织完整性。该模型特别适用于保留肌肉的血管化复合组织移植（VCA）手术研究——例如部分面部移植——同时也可用于自体游离皮瓣保存的研究。

本研究共采集了六名女性患者的11个皮瓣。皮瓣解剖由两名在皮瓣手术和腹壁成形术方面经验丰富的资深整形外科医生完成。其中一名患者因解剖困难而仅采集了单侧皮瓣。所采集皮瓣的平均重量为198.6 ± 24.4 g（n = 11），平均尺寸为10 cm × 6 cm，符合这些皮瓣所用于的保存研究的样本要求。在轻度张力下测量的蒂部长度平均为3.85 ± 0.74 cm, 使用卡尺测量的外部血管直径为1.2 ± 0.3 mm. 导管插入深度平均为1.75 cm（n = 2）。动脉造影显示所有皮瓣均灌注良好，皮瓣内血管充盈均匀且完全，评估方法与既往研究一致。15.
在六例患者的病例系列中，采用脐部移位的标准腹壁成形术的平均总手术时间为123 ± 24分钟。这六例手术之间的手术时间差异无统计学意义（p = 0.61）。为评估与不进行研究性皮瓣切取的标准手术相比是否存在差异，回顾性地查阅了在大学医院接受类似手术（腹壁成形术伴腹部移位）的另外六例患者的病历资料。其平均手术...

本方案描述了一种基于腹壁下深动脉蒂的人体穿支皮瓣模型的手术切取技术，旨在用于实验研究。

一种用于研究血管化复合异体移植物和游离皮瓣保存策略的实验性人体DIEP皮瓣模型

近年来，细胞保护剂注射、离体器官机械灌注以及超低温保存等保护策略已逐渐成为……

本研究旨在利用人类实验性皮瓣模型，提高血管化复合组织异体移植和游离皮瓣的保存效果与存活率。目前的研究主要依赖于动物的VCA和游离皮瓣模型，常使用啮齿类或大型动物的手部/肢体骨-肌-皮瓣。术前首先与患者共同进行皮肤脂肪切除术的标记，确定从耻骨联合至剑突的中线位置。在阴部联合上方约七厘米处画一条横线。将此线向两侧各延伸约七厘米，轻柔地向上弯曲，连接至前上髂棘稍下方。患者取仰卧位时，使用频率为8至10兆赫的手持式多普勒超声探头，识别脐周穿支血管。使用皮肤划线笔，在所需尺寸的椭圆形区域上标记皮瓣轮廓，将穿支血管包含在其内侧边缘，并跨越脐部两侧。使用无菌手术巾，按照标准腹部手术的常规方法，将手术区域从剑突准备并铺巾至大腿上三分之一，包括耻骨区域。沿术前标记线做一低位横行皮肤切口，切口位于阴部联合上方约七厘米处，并使用15号或21号手术刀片向两侧轻轻弧形延伸至髂前上棘。使用15号手术刀片，在脐周作环形切口至皮下层，将脐部从腹壁上分离。使用梅奥剪刀从浅层至深层垂直解剖脐部，直至完全游离，同时保留其脐蒂。在脐缘两侧各放置一根长而宽松的不可吸收缝线。从下部切口开始，沿皮下平面向上方脐部方向游离上腹部腹壁成形术皮瓣。使用尖端较细的单极电凝设备，将其设置为凝固模式，温度约为50至70摄氏度，功率80瓦，以分离腹直肌前筋膜与覆盖其上的皮下组织及皮肤，同时在解剖过程中严格维持止血。当解剖接近先前游离的脐部蒂部时，改用梅岑鲍姆剪进行精细解剖，避免损伤蒂部结构。识别并仔细游离来自腹壁下深动脉系统的两条主要脐旁穿支血管。在直视下使用Stevens剪刀或小型Metzenbaum剪刀对每条穿支血管进行环周解剖，保留其血管蒂。使用15号刀片从下部耻骨切口中心沿中线纵向切开脂肪-皮肤层至脐部，随后使用单极电凝仪在约50至70摄氏度条件下进行处理。继续向头侧解剖至剑突区域，并沿两侧肋缘进行，保持扁平的蒂完整且不分离。使用可吸收3.0缝线或自动夹夹闭腹壁下深动脉穿支蒂，并在筋膜上方切断穿支，不进行筋膜下解剖。将脐上皮肤及皮下脂肪向下推进，并使用不可吸收缝线将游离的腹部皮瓣固定于中线下方切口边缘，打结时留一端线尾较长。利用中线不可吸收缝线的长端，连接脐上区域与耻骨区域，作为标记多余脂肪皮肤组织切除线的引导。DIEP皮瓣位于该标记切除线的下方。将穿支皮瓣完全从周围废弃的组织中分离下来。切除与腹壁成形术中去除的多余皮肤和脂肪相对应的多余皮下脂肪组织。然后在放大镜下使用显微外科器械解剖血管蒂，辨认出动脉和静脉。用微血管扩张器轻柔地打开动脉管腔。使用18至24号套管插管动脉，并用5.0丝线结扎固定于管腔内。最后通过套管向穿支动脉内注射造影剂，并在透视下评估皮瓣情况。所获取的皮瓣平均重量约为198.6克，平均大小为10厘米×6厘米，蒂部长度约3.85厘米，外部血管直径为1.2毫米。血管造影证实，所有皮瓣均具有均匀且完整的血管充盈，表明灌注良好。在6例接受标准腹壁成形术并切取皮瓣的患者与6例回顾性对照病例（未切取皮瓣）之间，手术时间无显著差异。随访期间，6例患者均未出现术后腹壁功能缺损或感染。导管插入术后，皮瓣在真空密封袋中于4摄氏度保存，并根据灌注细胞保护剂或威斯康星大学溶液的情况分为处理组和对照组。不同时间点穿刺活检的组织学切片显示，储存后0至48小时内出现进行性缺血性改变。我们倾向于采用人体解剖学数据，以开展更贴近实际的血管化复合组织移植和游离皮瓣研究。目前的模型依赖动物实验，且无法充分反映临床手术的真实情况。我们的人体灌注模型减少了对动物的使用，提供了动物模型无法替代的解剖学和手术真实性，适用于游离皮瓣研究。该模型可实现对人皮肤皮瓣中细胞保护剂的术前测试，以评估其对缺血性损伤的保护作用。

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Medicine

医学

一个实验性人体DIEP瓣模型，用于研究血管化复合同种移植和游离瓣的保存策略

游离组织移植广泛应用于重建手术中，以在肿瘤切除或创伤后恢复形态与功能。手术前对组织进行预处理可能改善手术效果。本文描述了一种在大鼠体内实施的原位横腹直肌皮瓣（TRAM），用于测试组织预处理策略。...

原位 横行腹直肌皮瓣：一种皮肌缺血再灌注损伤的大鼠模型

带血管复合组织异体移植（VCA）已成为临床现实。然而，VCA 的广泛应用受到长期多药免疫抑制治疗的限制。作者介绍了一种可靠且可重复的大动物模型，用于转化新型免疫调节策略，以减少甚至可能消除 VCA...

一种改良的异位猪后肢移植模型在转化性带血管复合组织异体移植（VCA）研究中的应用

小鼠背侧皮肤折叠窗模型展示了一个肌皮瓣急性持续性缺血区域的可视化图像。活体落射荧光显微镜技术可用于对微血管系统进行直接、重复的观察，并实现血流动力学的定量分析。形态学与血流动力学结果还可进一步与组织学及分子生物学分析结果进行关联。...

小鼠背侧皮肤折叠窗模型中的缺血性组织损伤：一种用于研究急性持续性缺血的皮瓣模型

迄今为止，厚层组织缺损通常通过自体组织瓣或工程化组织进行重建。在本方案中，我们介绍一种新的方法，用于构建带有自体蒂的血管化工程组织瓣，以作为自体组织瓣的替代方案。...

工程化带血管化肌瓣

本文介绍了在大鼠体内切取腹壁上腹直肌皮瓣并将其移植至颈部所需的操作步骤。...

一种游离组织移植模型：大鼠腹壁上动脉游离皮瓣

血管化复合组织异体移植为移植受者带来改变生命的效果，但移植物排斥反应和血管病变的生物学机制仍不甚清楚。本文介绍的啮齿类动物手术模型提供了一种可重复且具有临床相关性的移植模型，使研究人员能够评估排斥事件以及预防这些事件发生的潜在治疗策略。...

用于转化性血管化复合组织异体移植研究的大鼠改良异位后肢骨肌皮瓣模型

本文介绍了一种用于研究重建显微外科中缺血-再灌注损伤病理生理学的临床前动物模型。该模型基于大鼠浅表尾侧腹壁血管的游离皮瓣，还可用于评估不同疗法和化合物对缺血-再灌注损伤相关损害的拮抗作用。...

用于重建显微外科中缺血-再灌注损伤研究的临床前大鼠模型

本方案描述了猪的筋膜皮瓣模型及其在血管化复合组织研究中的潜在应用。...

一种可靠的用于血管化复合异体移植生物工程研究的猪筋膜-皮瓣模型

该方案描述了通过定制的灌注生物反应器，将十二烷基硫酸钠洗涤剂经皮瓣血管系统灌注，从而对手术获取的带血管猪皮瓣进行脱细胞处理的过程。...

定制灌注生物反应器中猪带血管皮瓣的获取与灌注脱细胞处理

本方案描述了在大鼠身上进行筋膜皮瓣的切取、缝合及监测，通过夹闭和结扎股血管，可清晰观察和调控经由浅表下腹壁血管的血流。这对于涉及缺血预处理的研究至关重要。...

用于研究大鼠模型中缺血预处理效应的浅表性腹壁下动脉轴型皮瓣

本方案详细介绍了用于获取和制备全脸异体移植物以移植给严重面部畸形患者的外科技术，主要关注软组织的获取，仅限于鼻部支架的少量骨组织采集。...

用于血管化复合组织异体移植的全软组织面部移植物获取的外科手术方法

了解基于腹壁下动脉的人体穿支皮瓣获取技术，用于血管化复合同种移植和游离皮瓣保存研究。该方法为实验外科提供可靠的人体模型，有助于提高移植存活率并减少动物实验。

一种用于研究血管化复合异体移植物和游离皮瓣保存策略的实验性人体DIEP皮瓣模型

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