Name: 用于小鼠皮层深部经颅成像的头戴式光学透明颅窗（HOTS） (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-06-05T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 44 s
Description: 了解头戴式光学透明颅窗（HOTS）技术，用于清醒自由活动小鼠的深层皮层双光子成像。该方法通过优化HOTS-S1和HOTS-S2试剂实现颅骨透明化，支持Thy1-GFP-M和Thy1-GCaMP6s小鼠的结构与功能成像，成像深度可达约800微米。

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本工作由科技创新重点研发计划资助&amp;中国重庆自然科学基金（CSTB2024TIAD-STX0004）、深圳医学研究基金（D2404004）、国家自然科学基金（62475278, 62305369, 62405351, 92359303）；广东省基础与应用基础研究基金（2024A1515012517, 2020B121201010）；中国科学院青年创新促进会（2023377）；深圳市基础研究计划（RCJC20200714114433058, RCYX20210609104445093, JCYJ20241202124924033, ZDSY20130401165820357）。我们感谢中国科学院深圳先进技术研究院脑认知与脑疾病研究所杨展教授（Yang Zhan）提供Thy1-GFP-M小鼠。

所有动物护理和实验程序均经广东省动物护理与使用委员会批准，并遵循中国科学院深圳先进技术研究院动物实验伦理委员会的指导方针进行。本方案中使用的试剂和设备列于材料表中。
注意：本方案适用于6周龄小鼠（体重约20 g），其颅骨厚度约为100 µm。
1. 颅骨透明化溶液的制备
<ol>
	<li>配制颅骨透明化溶液 S1（10% wt/v EDTA，15% wt/v D-甘露糖，10% wt/v 磺酰胺，0.5% wt/v Tween 20；折射率：1.38；终末 pH：7.0–7.4）
	<ol>
		<li>称取 0.35 g 氢氧化钠（NaOH），加入盛有 20 mL 去离子水的烧杯中，搅拌至完全溶解。此步骤可提高溶液 pH，有助于后续 EDTA 的溶解。 
		&#8203;注意：NaOH 具有腐蚀性，操作时需佩戴适当的个人防护装备（手套、实验服、护目镜），并在化学通风橱中进行。</li>
		<li>将 4 g 乙二胺四乙酸（EDTA）加入 NaOH 溶液中，将烧杯置于 40 °C 水浴中，持续搅拌直至 EDTA 完全溶解。</li>
		<li>将混合物冷却至室温，加入 6 g D-甘露糖、4 g 磺酰胺和 0.2 g Tween 20，室温下搅拌至所有组分完全溶解。</li>
		<li>加入去离子水定容至终体积 40 mL，充分混匀，得到溶液 S1。 
		注意：S1 可在室温下保存数月。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>配制颅骨透明化溶液 S2（70% wt/v D-甘露糖，5% wt/v 磺酰胺，0.5% wt/v Tween 20；终末折射率：1.44；终末 pH：7.0–7.4）
	<ol>
		<li>称取 28 g D-甘露糖、2 g 磺酰胺和 0.2 g Tween 20，转移至洁净烧杯中。</li>
		<li>加入约 30 mL 去离子水，室温下搅拌至所有组分完全溶解。</li>
		<li>加入去离子水定容至终体积 40 mL，充分混匀，得到溶液 S2。 
		&#8203;注意：轻微加热（25–30 °C）并持续搅拌可加速 D-甘露糖的溶解。S2 可在室温下保存数月。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 手术准备
<ol>
	<li>将所有手术器械进行高压灭菌，并使用75%酒精彻底消毒操作区域。</li>
	<li>通过腹腔注射1%（w/v）戊巴比妥钠（每20 g体重150–200 µL）对小鼠进行麻醉。 
	注意：可使用其他可逆性麻醉剂或适当的麻醉/镇痛方案替代戊巴比妥钠。</li>
	<li>通过脚趾夹捏反射测试监测麻醉深度，并确保小鼠在开始手术前已完全麻醉。</li>
	<li>将小鼠固定于立体定位仪中，并用耳杆固定头部。</li>
	<li>使用加热垫维持小鼠体温在37 °C。</li>
	<li>在双眼涂抹眼用软膏，以防止角膜干燥。 
	注意：在整个操作过程中需持续监测呼吸、麻醉深度及反射反应。若观察到麻醉深度不足的迹象，应暂停操作，确保达到适当麻醉水平后再继续。如必要，特别是出现呼吸抑制时，可给予辅助供氧。</li>
</ol>
3. 手术与头固定板的安装
<ol>
	<li>颅骨暴露与清洁（图1Ba）
	<ol>
		<li>使用精细镊子和手术剪去除整个颅骨背侧表面的头皮。向两侧修剪皮肤，以暴露颞肌边缘，并向后延伸至颈部肌肉区域。</li>
		<li>使用精细镊子轻柔地去除颅骨表面的骨膜。</li>
		<li>用湿润的棉签清洁颅骨表面，并用柔和的气流吹干颅骨。</li>
		<li>若需精确定位大脑皮层功能区域，可使用立体定位仪在颅骨表面标记间距为1 mm的参考点。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>牙科水泥与头固定板的安装（图1Bb）
	<ol>
		<li>根据制造商说明配制牙科水泥。建议选用粘附性强、耐久性好的牙科水泥，以确保长期固定的稳定性。</li>
		<li>在暴露的颅骨表面及周围组织上涂抹一层薄薄的牙科水泥以提供保护，但预留出用于开窗的区域不得涂覆水泥。 
		注意：将牙科水泥的粉剂与液剂按1:1体积比混合后，等待约10秒，待其粘附于牙签尖端时再进行涂抹，可降低流动性并提高操作性。涂抹时应从周围区域向预定开窗区推进，确保开窗区域完全无水泥残留。开窗区域的范围由颅骨表面的牙科封闭材料（牙科水泥与软衬材料）边界决定，因此其大小可调节，但受限于颅骨缝线或帽状结构的尺寸。通常在单侧半球应用时，开窗区域直径约为3–5 mm。</li>
		<li>使用牙科水泥将小型钛合金头固定板（用于在后续成像过程中将头部固定于定制夹具）牢固地固定在颅骨上。 
		注意：可采用不同设计的头固定板实现头部固定。本研究中，商业可得的头固定板以及定制的双孔钛板均成功应用。无论何种设计，头固定板均应为后续成像提供足够的机械稳定性，且不得遮挡预定的开窗/成像区域。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. 创建高阶思维技能窗口
<ol>
	<li>使用自固化牙科软衬材料密封颅骨（图1Bc）
	<ol>
		<li>待牙科水泥完全固化约5分钟后，将自固化牙科软衬材料以薄层覆盖于水泥层上（清除窗口区域除外），在颅骨上形成连续密封。 
		&#8203;注意：软衬材料可增强密封效果，减少在长期接触透明试剂过程中发生泄漏的风险。</li>
		<li>沿预定的透明窗口边缘平滑地塑形自固化牙科软衬材料，为盖帽形成平整的密封表面。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>安装盖帽（图1Bd）
	<ol>
		<li>剪下一次性塑料移液器头端（聚乙烯，PE），制成一个顶部封闭、底部开口的小圆柱形盖帽。PE具有良好的化学稳定性，在透明过程中与S1或S2透明溶液接触时无明显降解或反应。 
		注意：从1 mL移液器头剪下的盖帽直径通常约为12 mm，高度约为10–14 mm。</li>
		<li>将盖帽置于指定的透明窗口区域上方，并轻轻压入软衬材料中。 
		&#8203;注意：盖帽尺寸大于透明区域，盖帽下方未用于透明区域的部分颅骨可涂抹牙科封闭剂，以保护颅骨免受透明试剂影响。</li>
		<li>在盖帽基部周围使用额外的软衬材料将其固定，确保盖帽与颅骨之间的连接处完全密封。</li>
		<li>使用带有26 G针头的1 mL注射器在盖帽壁上刺出一个或多个小孔，作为注入和抽出透明溶液的通道。</li>
		<li>让软衬材料完全固化。确认盖帽牢固附着，且盖帽与颅骨界面无可见缝隙。</li>
		<li>将小鼠从立体定位仪上取下，放入保温笼中直至从麻醉中完全恢复。 
		注意：在麻醉恢复期间，应将小鼠置于加温的恢复笼中，并监测其呼吸、翻正反射恢复、自主运动及行走能力。如临床需要，可皮下注射0.2 mL无菌等渗盐水作为支持性液体治疗。麻醉恢复后应继续进行术后监测，并根据临床指征提供额外的支持性护理。此步骤为HOTS操作中的合适暂停点。透明阶段仅可在牙科水泥和软衬材料完全固化、且小鼠已充分从初始麻醉中恢复后开始。在我们的常规操作中，HOTS窗口可在下午安装，透明阶段于次日早晨启动。在此期间应持续进行术后监测。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. 清醒自由活动小鼠的颅骨透明化
注意：在透明化阶段，小鼠保持清醒状态，并在其家笼中自由活动。仅在通过头部安装的帽进行溶液注射和更换时，使用短暂的异氟烷麻醉。
<ol>
	<li>S1 的初始加载
	<ol>
		<li>将小鼠放入诱导室中，使用 3–4% 异氟烷（溶于空气）以 300–500 mL/min 的流速诱导短暂麻醉，直至小鼠不再活动。无需维持麻醉。</li>
		<li>轻柔固定小鼠，并用手稳定头部安装的帽状装置。</li>
		<li>使用带 26 G 针头的 1 mL 注射器，缓慢向头部帽状装置中注入约 1 mL 的 S1。</li>
		<li>将小鼠放回饲养笼，使 S1 作用于颅骨 2 小时。 
		&#8203;注意：在 S1 和 S2 孵育期间，应将小鼠单独饲养于标准笼具中。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>S1 的更换
	<ol>
		<li>在初次加载 S1 后 2 小时，再次使用异氟烷对小鼠进行短暂麻醉。</li>
		<li>使用 1 mL 注射器从帽状装置中吸出 S1。</li>
		<li>使用 1 mL 注射器向帽状装置中重新注入新鲜 S1。</li>
		<li>将小鼠放回笼中，使 S1 继续作用 2 小时。</li>
		<li>在初次加载后 4 小时重复步骤 5.2.1–5.2.4，进行第二次 S1 更换。</li>
		<li>第二次更换后，继续使 S1 作用，直至总暴露时间达到 6 小时。 
		&#8203;注意：本方案（1 mL S1 作用 6 小时）已针对 6 周龄小鼠（约 20 g）优化。对于颅骨较厚的老龄动物，可逐步延长 S1 孵育时间。任何调整均需密切监测动物福利状况及最终成像质量，以避免颅骨过度软化。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>S2 的应用
	<ol>
		<li>经过 6 小时 S1 处理后，使用异氟烷对小鼠进行短暂麻醉。</li>
		<li>使用 1 mL 注射器从帽状装置中吸出 S1，并替换为 0.7 mL 的 S2。</li>
		<li>将小鼠放回笼中，使 S2 作用于颅骨 1 小时，以进一步提高透明度并实现折射率匹配。 
		注意：在此条件下，S1 与 S2 联合的透明化阶段通常在 7 小时内完成（6 小时 S1 + 1 小时 S2）。透明化成功的标志是颅骨表面明显透明且无出血。透明化后颅骨可能略有软化；用精细镊子轻触时应表现出轻微顺应性，但仍保持结构完整。避免对颅骨表面施加过大压力。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
6. 成像准备
<ol>
	<li>成像用麻醉与头部固定
	<ol>
		<li>S2 孵育结束时，通过腹腔注射 1% (w/v) 戊巴比妥钠对小鼠进行麻醉，剂量为每 20 g 体重 150–200 µL。</li>
		<li>使用脚趾夹捏反射测试确认麻醉深度是否充分。</li>
		<li>将钛制头固定板拧紧至自行设计的头部固定装置上，以固定小鼠头部。</li>
		<li>在双眼上涂抹眼用软膏，防止成像过程中角膜干燥。</li>
		<li>使用加热垫维持小鼠体温在约 37 °C。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>暴露透明化颅骨表面（图 1Be,Bf）
	<ol>
		<li>用注射器从帽中吸除 S2 溶液。</li>
		<li>使用精细剪刀小心剪开塑料帽，并用镊子将其移除，注意避免对颅骨施加过大压力。</li>
		<li>轻轻剥离围绕透明窗口的软质内衬材料，完全暴露已透明化的颅骨区域。</li>
		<li>在透明化颅骨表面直接滴加少量 S2 溶液，作为成像时的折射率匹配浸没介质。 
		注意：本研究使用了标准水浸物镜，包括 16×/NA 0.8 物镜（N16XLWD-PF，Nikon）和 25×/NA 1.1 物镜（N25X-APO-MP，Nikon）。当使用 S2 作为浸没介质时，若物镜具备校正环，应将其调节至与 S2 折射率相匹配的适当位置，以减少球面像差。在本实验中，透明化颅骨在约 2 小时的双光子成像过程中保持足够的光学清晰度，在树突棘观察期间未见明显的图像质量下降。约 2 天后，需重新进行透明化处理以继续成像，且再透明化所需时间显著短于初次透明化，从而实现对同一只动物的高效重复成像。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>清醒状态下头部固定成像（可选） 
	&#8203;注意：若进行清醒成像，应在实验前使小鼠适应头部固定操作。短暂使用异氟烷麻醉小鼠，然后将其植入的头固定板固定于固定装置上，每次持续 15–30 分钟，并连续重复 2–3 天。
	<ol>
		<li>使用短暂的异氟烷麻醉以方便操作。仅将植入的头固定板固定于装置上，使小鼠身体可在跑步轮或平台上自由活动。</li>
		<li>按照步骤 6.2.1–6.2.4 暴露透明化颅骨表面，并在成像前滴加 S2 溶液。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
7. 恢复
<ol>
	<li>成像完成后，轻柔地吸除颅骨表面残留的S2溶液。</li>
	<li>用磷酸盐缓冲液（PBS）多次冲洗透明化处理的颅骨区域，以促进颅骨逐渐恢复原有的不透明状态。</li>
	<li>使用无菌棉签轻轻吸干颅骨及周围组织上的残留液体，避免对骨组织造成机械损伤。</li>
	<li>若动物需存活以进行后续实验，应在颅骨窗口处覆盖一层生物相容性密封剂Kwik-Cast（WPI），以保护颅骨在存活期间不受损伤。</li>
	<li>让保护层完全固化。</li>
	<li>将小鼠从头部固定装置上取下，并置于温暖的笼子中。密切监测动物直至其从麻醉中完全恢复，然后将其放回原饲养笼中。</li>
</ol>

<ol>
	<li>Lee, J., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Longitudinal+intravital+imaging+of+cerebral+microinfarction+reveals+a+dynamic+astrocyte+reaction+leading+to+glial+scar+formation.">Longitudinal intravital imaging of cerebral microinfarction reveals a dynamic astrocyte reaction leading to glial scar formation.</a> Glia. 70 (5), 975-988 (2022).</li><li>Hierro-Bujalance, C., Bacskai, B. J., Garcia-Alloza, M. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+imaging+of+microglia+with+multiphoton+microscopy.">In vivo imaging of microglia with multiphoton microscopy.</a> Front Aging Neurosci. 10, 218 (2018).</li><li>Fan, J. L., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-speed+volumetric+two-photon+fluorescence+imaging+of+neurovascular+dynamics.">High-speed volumetric two-photon fluorescence imaging of neurovascular dynamics.</a> Nat Commun. 11 (1), 6020 (2020).</li><li>Fan, X., Zheng, W., Singh, D. J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Light+scattering+and+surface+plasmons+on+small+spherical+particles.">Light scattering and surface plasmons on small spherical particles.</a> Light Sci Appl. 3 (6), e179 (2014).</li><li>Kneipp, M., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+the+murine+skull+in+optoacoustic+brain+microscopy.">Effects of the murine skull in optoacoustic brain microscopy.</a> J Biophotonics. 9 (1-2), 117-123 (2016).</li><li>Holtmaat, A., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term,+high-resolution+imaging+in+the+mouse+neocortex+through+a+chronic+cranial+window.">Long-term, high-resolution imaging in the mouse neocortex through a chronic cranial window.</a> Nat Protoc. 4 (8), 1128-1144 (2009).</li><li>Drew, P. J., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+optical+access+through+a+polished+and+reinforced+thinned+skull.">Chronic optical access through a polished and reinforced thinned skull.</a> Nat Methods. 7 (12), 981-984 (2010).</li><li>Yang, G., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thinned-skull+cranial+window+technique+for+long-term+imaging+of+the+cortex+in+live+mice.">Thinned-skull cranial window technique for long-term imaging of the cortex in live mice.</a> Nat Protoc. 5 (2), 201-208 (2010).</li><li>Xu, H. T., Pan, F., Yang, G., Gan, W. B. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Choice+of+cranial+window+type+for+in+vivo+imaging+affects+dendritic+spine+turnover+in+the+cortex.">Choice of cranial window type for in vivo imaging affects dendritic spine turnover in the cortex.</a> Nat Neurosci. 10 (5), 549-551 (2007).</li><li>Roth, T. L., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcranial+amelioration+of+inflammation+and+cell+death+after+brain+injury.">Transcranial amelioration of inflammation and cell death after brain injury.</a> Nature. 505 (7482), 223-228 (2014).</li><li>Dorand, R. D., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+intravital+thinned+skull+and+cranial+window+approaches+to+study+CNS+immunobiology+in+the+mouse+cortex.">Comparison of intravital thinned skull and cranial window approaches to study CNS immunobiology in the mouse cortex.</a> Intravital. 3 (2), e29728 (2014).</li><li>Zhang, C., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+large,+switchable+optical+clearing+skull+window+for+cerebrovascular+imaging.">A large, switchable optical clearing skull window for cerebrovascular imaging.</a> Theranostics. 8 (10), 2696-2708 (2018).</li><li>Zhao, Y. J., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Skull+optical+clearing+window+for+in+vivo+imaging+of+the+mouse+cortex+at+synaptic+resolution.">Skull optical clearing window for in vivo imaging of the mouse cortex at synaptic resolution.</a> Light Sci Appl. 7, 17153 (2018).</li><li>Li, D. Y., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+through-intact-skull+(TIS)+chronic+window+technique+for+cortical+structure+and+function+observation+in+mice.">A through-intact-skull (TIS) chronic window technique for cortical structure and function observation in mice.</a> eLight. 2 (1), 15 (2022).</li><li>Liu, X., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SeeThrough:+a+rationally+designed+skull+clearing+technique+for+in+vivo+brain+imaging.">SeeThrough: a rationally designed skull clearing technique for in vivo brain imaging.</a> Nat Commun. 16 (1), 7584 (2025).</li><li>Liu, L. N., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural+and+functional+mouse+brain+imaging+facilitated+by+a+head-mounted+optically+transparent+skull+(HOTS)+window+allowing+offline+clearing.">Structural and functional mouse brain imaging facilitated by a head-mounted optically transparent skull (HOTS) window allowing offline clearing.</a> Optica. 12 (12), 1946-1960 (2025).</li><li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multidimensional+dynamic+optical+imaging+unveils+anesthetic-driven+hemispheric+lateralization+in+blood-brain+barrier+homeostasis.">Multidimensional dynamic optical imaging unveils anesthetic-driven hemispheric lateralization in blood-brain barrier homeostasis.</a> Sci Adv. 11 (49), eady6275 (2025).</li><li>Qin, W., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Amphiphilic+hemicyanine+molecular+probes+crossing+the+blood-brain+barrier+for+intracranial+optical+imaging+of+glioblastoma.">Amphiphilic hemicyanine molecular probes crossing the blood-brain barrier for intracranial optical imaging of glioblastoma.</a> Sci Adv. 11 (3), eadq5816 (2025).</li><li>Pang, W., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+monitoring+of+whole-brain+electrodynamics+via+high-spatiotemporal-resolution+photoacoustics+with+voltage-sensitive+dye.">Direct monitoring of whole-brain electrodynamics via high-spatiotemporal-resolution photoacoustics with voltage-sensitive dye.</a> Laser Photonics Rev. 18 (10), 2400165 (2024).</li><li>Paoletti, P., Ellis-Davies, G. C. R., Mourot, A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+control+of+neuronal+ion+channels+and+receptors.">Optical control of neuronal ion channels and receptors.</a> Nat Rev Neurosci. 20 (9), 514-532 (2019).</li><li>Deisseroth, K. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optogenetics:+10+years+of+microbial+opsins+in+neuroscience.">Optogenetics: 10 years of microbial opsins in neuroscience.</a> Nat Neurosci. 18 (9), 1213-1225 (2015).</li></ol>

作者声明无利益冲突。

HOTS 方法利用一种头戴式光学透明颅骨（HOTS）窗口，该窗口结合了含有透明试剂的帽状装置和两步颅骨透明化处理，可在保持成年小鼠颅骨完整性的前提下增强其透明度。在标准方案下（6 周龄小鼠在 S1 中处理 6 小时，随后在 S2 中处理 1 小时），所形成的窗口可稳定支持深部经颅双光子成像，能够清晰观察到软脑膜下约 800 µm 深处的结构。
获得稳定且透明的窗口需要多个关键操作步骤。颅骨必须保持清洁和干燥，需仔细去除头皮和骨膜，以确保牙科水泥能够牢固地黏附于骨面，并在后续成像过程中稳固固定头板。水泥层应覆盖暴露的骨组织及周围组织，以提供坚固的基础。随后在牙科水泥表面及窗口区域周围涂布一层薄薄的自固化牙科软衬材料，以防止后续透明化试剂发生泄漏。HOTS窗口应尽可能避开颅骨缝，因为在骨缝上方直接进行透明化处理可能引起毛细血管出血，并常导致窗口失败。若窗口必须靠近骨缝，可用软衬材料封闭缝线以降低该风险。成像过程中，使用S2作为浸没介质和折射率匹配介质；如有配备，应调节物镜的校正环以补偿折射率不匹配。
此处使用的透明化参数针对颅骨厚...

皮层神经元的活体监测对于理解脑结构与功能至关重要1双光子显微镜（TPM）是此类研究的关键工具 体内 研究2,3然而，由于覆盖在大脑皮层上方的不透明颅骨会产生强烈的光散射，其成像质量和成像深度受到严重限制4,5.
开颅窗6和磨薄颅骨窗7,8显著改善了对大脑皮层的光学通路，且已被广泛应用，但这两种方法均存在固有的局限性。开颅窗可能引发急性脑损伤和炎症反应9,10，而颅骨磨薄技术难度较高，且难以实现厚度的均匀一致11,12。
体内颅骨光学透明技术提供了一种微创替代方案，可在成年小鼠中实现轴突分辨率的双光子成像。然而，可达到的成像深度仍然有限（通常在软脑膜下 150–400 µm）12,13,14,15。在实际操作中，颅骨透明通常仅限于在麻醉和头部刚性固定条件下进行的短期实验，且针对颅骨成分系统优化透明试剂组合的研究仍较为不足12,13,14,15。
为克服这些局限，我们先前开发了一种头戴式光学透明颅窗（HOTS），可在自由活动的小鼠中实现长期、离体的颅骨透明化图1A)16该方法采用两步透明化流程，使用了两种试剂（S1 和 S2），这些试剂是通过我们先前工作中系统的化学筛选优化而得。16清除试剂的系统优化及其清除效果、可逆性、生物安全性表征和 体内 HOTS 窗口的成像性能已在我们先前的研究中报道过16，该结果也显示HOTS处理后具有良好的星形胶质细胞反应。本文中，我们提供了一种建立HOTS窗口的逐步操作方案，以实现成年小鼠深部经颅双光子成像。在代表性制备样本中，成像深度可达软脑膜下约800 µm，几乎与开颅窗口所能达到的深度相当。HOTS窗口可在Thy1-GFP-M小鼠中实现深部结构成像，并可在清醒的Thy1-GCaMP6s小鼠中进行功能性钙成像。

<table><tbody><tr><td>1 mL 一次性移液管</td><td>Beijing Biotopped&amp;nbsp; Science&lt;br/&gt; &amp;nbsp;&amp;amp; Technology&amp;nbsp; Co., Ltd.</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>牙科水泥</td><td>上海荣祥齿科材料有限公司</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>D-甘露糖</td><td>Macklin</td><td>D813082</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Aladdin</td><td>El 16428</td><td></td></tr><tr><td>异氟烷</td><td>RWD</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Kwik-Cast</td><td>WPI</td><td>N/A</td><td>一种生物相容性密封剂</td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Macklin</td><td>S832169</td><td></td></tr><tr><td>自凝&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;牙科&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;软衬材料</td><td>杨马湖生物科技（鹤壁）有限公司</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>戊巴比妥钠</td><td>Biopike</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>立体定位仪</td><td>RWD</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>无菌一次性注射器</td><td>Minank</td><td>N/A</td><td>1 mL；26 G 针头</td></tr><tr><td>环丁砜</td><td>Macklin</td><td>S817950</td><td></td></tr><tr><td>Thy1-GFP-M 小鼠</td><td></td><td>N/A</td><td>由 Yang Zhan 教授提供&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Thyl-GCaMP6s&amp;nbsp; 小鼠</td><td>Jackson Laboratory</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Vetec</td><td>V900548</td><td></td></tr><tr><td>水浸物镜&amp;nbsp;</td><td>Nikon</td><td>N25X-APO-MP</td><td>25&amp;times;/NA 1.1 物镜&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>水浸物镜&amp;nbsp;</td><td>Nikon</td><td>N16XLWD-PF</td><td>16&amp;times;/NA 0.8 物镜&amp;nbsp;</td></tr></tbody></table>

用于小鼠皮层深部经颅成像的头戴式光学透明颅窗（hots）

A Head-Mounted Optically Transparent Skull (HOTS) Window For Deep Transcranial Imaging of the Mouse Cortex

成年小鼠大脑皮层的高分辨率双光子成像受到颅骨光散射的严重限制，这种散射会衰减信号并限制活体内的成像深度。in vivo。尽管已开发出颅骨透明化方法，以实现通过完整颅骨对皮层进行光学访问，但其实际应用受限于较短的透明化时间以及不够理想的透明化试剂组合。本文详细介绍了一种头戴式光学透明颅骨（HOTS）窗口的实施方案。该方法采用头戴式帽装置，将透明化溶液持续维持在颅骨表面，从而避免长时间麻醉或物理束缚，实现在清醒、自由活动的小鼠中进行长时间（数小时）的颅骨透明化处理。此外，通过系统的化学筛选优化了两步透明化流程所用的试剂（HOTS-S1：10% wt/v EDTA、15% wt/v D-甘露醇、10% wt/v 磺酰烷、0.5% wt/v Tween 20；HOTS-S2：70% wt/v D-甘露醇、5% wt/v 磺酰烷、0.5% wt/v Tween 20）。我们提供了一步一步的操作流程，包括颅骨暴露与固定、头戴式帽的制备与安装、透明化试剂的递送与更换，以及后续成像前准备。在6周龄小鼠（约20 g）中，HOTS方案通常可获得高度透明的颅骨，支持对皮层结构进行双光子成像，成像深度可达软脑膜下约800 µm，接近开颅窗口的成像性能。HOTS窗口可用于Thy1-GFP-M小鼠的结构成像以及Thy1-GCaMP6s小鼠的功能性钙成像。我们认为，作为一种便捷且微创的方法，HOTS窗口将显著促进活体中深层经颅成像以及光遗传学、光药理学和其他基于光的操控技术的应用。in vivo

根据该方案，头戴式光学透明颅骨（HOTS）窗口可在保持颅骨完整性的前提下，实现对成年小鼠的深部经颅双光子成像。成功的制备可通过两个关键结果来判断：（1）颅骨透明后，皮层血管结构可清晰可见（图1Bf）；（2）透明后的颅骨在轻微压力下出现轻微凹陷，表明脱钙和胶原松解效果良好。HOTS窗口必须置于完整的颅骨区域，并避开颅缝，以防止毛细血管出血——这是导致HOTS窗口失败的常见原因。另一种常见的失败情况是，盖帽与软衬材料界面密封不当，导致透明试剂泄漏，从而造成透明不完全。
为了评估光学透明化效果，我们观察了透明度的逐步改善情况 离体 和 体内. 离体 将颅骨碎片置于分辨率测试目标上成像，显示经 S1 和 S2 处理后清晰度逐步提高（图2A). 体内 明场成像通过透明化颅骨揭示软脑膜血管结构图2B）。通过HOT...

本方案描述了一种基于优化的两步法颅骨透明化处理的头戴式光学透明颅骨（HOTS）窗口。该方法可获得高度透明的颅骨，从而实现对成年小鼠大脑皮层深度达约800 µm的双光子成像。

用于小鼠皮层深部经颅成像的头戴式光学透明颅窗（HOTS）

成年小鼠大脑皮层的高分辨率双光子成像受到颅骨光散射的严重限制，这种散射会衰减信号并……

我们的研究开发了一种用于非侵入性新皮层成像的透明颅骨扫描方法，能够长期在活体中可视化大脑结构与功能。现有的颅骨成像方法通常具有侵入性，且仅限于固定状态的动物。本方案实现了自由活动小鼠的透明颅骨成像，提高了颅骨透明度，并延长了观察时间。首先，按照制造商的说明制备牙科水泥。将一层薄薄的水泥涂抹于麻醉小鼠暴露的颅骨表面及周围组织，以提供保护，同时保持预定用于透明窗口的区域不被覆盖。使用牙科水泥将一小块钛制头板固定在颅骨上。待牙科水泥固化约5分钟后，在其表面（除透明窗口区域外）覆盖一层自固化牙科软衬材料，以在颅骨上形成连续密封。随后，将自固化牙科软衬材料沿预定的透明窗口边缘平滑塑形，为盖帽提供平整的密封面。剪切一次性塑料移液器的头部，制成一个顶部封闭、底部开口的小圆柱形盖帽。将盖帽置于指定的透明区域上方，并轻轻压入软衬材料中。使用额外的软衬材料固定盖帽底部，确保盖帽与颅骨之间的连接处完全密封。使用1毫升注射器配合26号针头，在盖帽壁上刺出一个或多个小孔，作为灌注和回收透明化溶液的通道。待软衬材料完全固化后，确认盖帽牢固附着，界面处无可见缝隙。随后，将小鼠从立体定位仪中取出，使其恢复。短暂麻醉小鼠后，轻轻固定小鼠，并用手稳定头部安装的帽盖。使用带有26号针头的1毫升注射器，缓慢向头部帽盖中注入约1毫升S1。将小鼠放回其饲养笼中，使S1作用于颅骨持续两小时。短暂麻醉后，从帽盖中吸出S1，并重新注入新鲜S1，然后将小鼠放回笼中，继续作用两小时。重复该操作一次，在S1处理六小时后，将S1替换为0.7毫升S2，随后将小鼠放回笼中，使S2作用于颅骨一小时，以进一步增强组织透明度并实现折射率匹配。麻醉后，在S2孵育结束时，通过脚趾夹捏反射测试确认小鼠已达到充分麻醉状态。为固定小鼠头部，将钛制头板拧紧至自行设计的头部固定装置上。在双眼涂抹眼用软膏，以防止成像过程中角膜干燥。为暴露已透明化的颅骨表面，使用注射器从帽状结构中吸出S2溶液。用精细剪刀小心剪开塑料帽，再用镊子将其移除，注意避免对颅骨施加过大压力。随后，轻轻剥离围绕透明窗口的柔软内衬材料，完全暴露已透明化的颅骨区域。在透明化的颅骨表面直接滴加少量S2溶液，作为成像过程中匹配折射率的浸没介质。轻轻吸除颅骨表面残留的S2溶液。用PBS多次冲洗透明化处理的颅骨区域，以促进颅骨逐渐恢复其天然的不透明状态。使用无菌棉签轻轻吸干颅骨及周围组织上的残留液体，注意避免对骨组织造成机械损伤。若动物需存活以进行后续实验，应在颅骨窗区域覆盖一层快速固化树脂以保护骨组织，并在恢复期间让保护层完全固化。将小鼠从头部固定装置上取下，置于温暖的饲养笼中。对置于分辨率测试靶上的颅骨片进行离体成像，结果显示经过S1和S2处理后透明度呈逐步提高。活体明场成像可透过透明化颅骨清晰观察到软脑膜血管结构。通过HOTS窗口进行双光子成像，可观察到神经元结构。HOTS窗

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Research

科研

JoVE Journal

Neuroscience

神经科学

头戴光学透明颅骨（HOTS）窗口，用于对小鼠皮层进行深度经颅成像

在本视频及补充材料中，我们展示了一种利用磨薄颅骨制备法对完整大脑进行长期在体成像的实验方案。...

使用磨薄颅骨制备法对小鼠视觉皮层进行长期成像

我们介绍一种在小鼠颅骨上制备成像窗口的方法，该窗口可跨越数毫米，并且在数月内保持稳定，且不会引起脑部炎症。该方法非常适合利用双光子显微镜进行血流、细胞动态以及细胞/血管结构的长期研究。...

一种经过抛光和加固的减薄颅窗，用于小鼠大脑的长期成像

本视频介绍了一种在小鼠模型中植入颅窗的手术方法，以实现对大脑不同区域的稳定光学观测。...

小鼠颅窗植入术：一种用于稳定光学接触小鼠脑区的玻璃盖片植入手术方案

关键词：颅窗植入，小鼠模型，光学成像，玻璃盖片，脑部手术，活体成像

本视频展示了通过转基因小鼠颅骨上的光学窗口记录大脑神经活动的过程。这些小鼠表达一种荧光蛋白，可用于检测神经活动。通过小心移除一小部分颅骨以安装光学窗口，随后用黑色水泥覆盖颅骨，以在成像前阻断光线。...

在转基因小鼠脑内植入光学窗口以成像神经活动

我们介绍一种在小鼠模型中制备薄颅骨皮层窗（TSCW）的方法 体内...

减薄颅骨皮层窗技术 体内 光学相干断层成像

本文描述了一种在淀粉样斑块积聚过程中追踪脑血管重塑的方法 体内...

纵向的 体内 脑血管成像：与中枢神经系统疾病的相关性

我们描述了一种通过双侧初级躯体感觉皮层（S1）上方的双光窗记录神经元活动的实验方法 Thy1- 使用双光子（2P）显微镜的GCaMP6s转基因小鼠 体内.

使用 Thy1-GCaMP6s 转基因小鼠对初级躯体感觉皮层中的神经活动进行成像

本文介绍了一种用于在清醒且头部固定的活体小鼠中对脑细胞进行长期成像的慢性颅窗植入实验方案。...

植入颅窗以实现重复观察 在体实验 清醒小鼠成像

本文介绍了一种结合腺相关病毒注射与颅窗植入的技术方案，用于在清醒小鼠中同时成像小胶质细胞动态与神经元活动。...

清醒小鼠中小胶质细胞动态与神经元活动的同步成像

本方案描述了制备一个大型（6 x 3 mm）2) 使用食品保鲜膜、透明硅胶和盖玻片制作颅窗。该颅窗可允许 体内...

体内 宽场与双光子钙成像技术在小鼠大颅窗中的应用

了解头戴式光学透明颅窗（HOTS）技术，用于清醒自由活动小鼠的深层皮层双光子成像。该方法通过优化HOTS-S1和HOTS-S2试剂实现颅骨透明化，支持Thy1-GFP-M和Thy1-GCaMP6s小鼠的结构与功能成像，成像深度可达约800微米。

用于小鼠皮层深部经颅成像的头戴式光学透明颅窗（HOTS）

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