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Methodenartikel

Optische Abbildung von Langendorff-perfundierten Rattenherzen

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DOI:

10.3791/1138

11. August 2009

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieser Artikel beschreibt ein hoher zeitlicher und räumlicher Auflösung Technik optisch Bild Aktionspotential Bewegung auf der Oberfläche von Langendorff-perfundierten Rattenherzen mit einem potentiometrischen Farbstoff (di-8-ANEPPS).

Zusammenfassung

Optische Abbildung der Herz-Oberfläche mit Spannungs-Fluoreszenzfarbstoffe ist zu einem wichtigen Werkzeug, um elektrische Erregung in experimentellen Modellen zu untersuchen, die Reichweite in der Skala von Zellkulturen ganzen Organe

Protokoll

Teil 1: Bereiten Sie Lösungen und der isoliert perfundierten Herzen System

  1. Am Morgen des Experiments beträgt 4,0 L von Krebs-Henseleit-Lösung hergestellt wie zuvor beschrieben [5, 6] beschrieben.
  2. 11 mmol / L 2,3-Butandion Monoxim (BDM) ist in 1,0 L von Krebs-Henseleit-Lösung aus dem Perfusat in Schritt 1.1 hergestellten dekantiert aufgelöst.
  3. Eine zusätzliche 150 ml Krebs-Henseleit ist aus dem Perfusat in Schritt 1.1 hergestellten entfernt und mit 5 mol / l di-8-ANEPPS (verdünnt aus einer 10 mmol / L Lager in Dimethylsulfoxid (DMSO) gelöst).
  4. 5% CO 2-Gas; Diese 3 Lösungen sind auf Wasser-ummantelten Glas Reservoire (Radnoti), wo sie sind auf 41,0 ° C vorgewärmt und mit Sauerstoff mit einem getauchten Bubbler (Radnoti) mit 0,2 um-gefiltert 95% O 2 übertragen. Lösungen aus den 3 stock Stauseen an der Wand montiert Langendorff-System mit Masterflex ™ L / S Schlauchpumpen und Low-Absorption Silikonschlauch (Cole-Parmer) gepumpt.
  5. Vor der Montage ist die Langendorff System Glaswaren (Radnoti) sorgfältig mit E-TOXA-CLEAN-Reagenz (Sigma-Aldrich) gewaschen und gründlich mit 0,1 M / L HCl, 100% Ethanol und destilliertem Wasser gespült.
  6. Die Nicht-Rückführung Langendorff-Apparatur wurde konstruiert, um 70 mm Hg bei konstantem Druck von 3 separate Sauerstoff Stauseen, die aus dem Herzen mit Wassermantel Heizschlangen und Blasenfallen getrennt zu liefern (Radnoti) [7]. Die 3 unabhängigen Perfusion Linien oberhalb des Herzens in zwei 3-Wege-Hähne konvergieren, so dass wir genau kontrollieren Lieferung der Lösungen in Schritten von 1,1 bis 1,3 zubereitet. Wasser-ummantelte Glas wird in Reihe mit Masterflex PharMed BPT-Schläuche (Cole-Parmer) angeschlossen und erwärmt auf 39 ° C mit destilliertem Wasser mit zwei E100-Umwälzpumpen (Lauda). Der Wärmeverlust durch die platin-veredelten Silikonschlauch (Cole-Parmer), dass der Druck-Kopf-Reservoirs verbindet sich mit dem Heizschlangen und Blasenfallen resultierte in einer 37 ° C Perfusat bis ins Herz reichen.

Teil 2: Harvest der Ratte Herz und Set-up Langendorff Perfusion

  1. Um tiefe allgemeine Betäubung in 200-250 g Lewis Ratten zu induzieren, ist 100 mg / kg Ketamin und 10 mg / kg Xylazin in die Bauchhöhle injiziert. Zu dieser Mischung, fügen wir 500 U / kg Heparin auf die Blutgerinnung und Myokardischämie während der Explantation Verfahren zu verhindern.
  2. Für einen einfachen Zugriff auf das Herz und die großen Gefäße, ist die vordere Brustwand entfernt. Danach wird das umliegende Gewebe sorgfältig seziert und die pericardial Sack öffnete.
  3. Nach der Identifizierung der unteren Hohlvene, ist dieses Schiff mit 5-0 Seide (Ethicon) und das gesamte Herz-Lungen-Block ist explantierten ligiert. Das Gewebe wird sofort in eiskaltem Krebs-Henseleit-Lösung in einem 50 mL Becherglas auf Eis enthielt.
  4. Die aufsteigende Aorta ist schnell identifiziert und seziert aus dem umgebenden Gewebe. Eine ausreichend große Kanüle (Harvard Apparatus) ist in die Aorta eingeführt, wobei darauf zu achten unterbrechen obligatorischen Perfusion der Koronararterien durch Einsetzen der Kanüle zu weit in die Aortenwurzel. Die Kanüle ist an der aufsteigenden Aorta mit 5-0 Seide (Ethicon) gesichert.
  5. Die Ratte Herz wird dann auf der Langendorff-Apparatur, ohne dabei Luftblasen in die Kanüle gelegt. Retrograde koronaren vaskulären Perfusion ist nun mit dem warmen, sauerstoffreichen Krebs-Henseleit-Lösung aus der Druck-Kopf in Schritt 1.6 beschrieben aufgebaut.
  6. Extra-Gewebe, einschließlich der Lunge, ist nun entfernt und das Herz für 20 Minuten perfundiert, um Wiederherstellung der Funktion zu ermöglichen und stabilisieren den Rhythmus. Während dieser Zeit ist eine sehr dünne Thermoelement Temperaturfühler (Cole-Parmer) in die linke Herzkammer Kavität eingebracht und vernäht mit 5-0 Prolene Naht (Ethicon). Die Sonde ist mit einer thermo-Regler (Digi-Sense) angeschlossen, um die Temperatur des Herzens zu gewährleisten ist bei 37 ° C durch eine Anpassung der Einstellungen des Wassers Kreislauf pumpen. Motion von Perfusat tropft von der Herzspitze ist, indem ein Stück Gaze in das Abwasser Behälter minimiert.

Teil 3: Load Herz mit potentiometrischer Farbstoff und erwerben elektrografischen und optische Signale

  1. Di-8-ANEPPS (Invitrogen) ist in das Herz durch die Umstellung auf die Perfusion Zeile mit dem Krebs-Henseleit gemischt mit dem Fluoreszenzfarbstoff mit einem Hahn geladen. Darüber hinaus ist eine 18G Kanüle in der linken und / oder rechten Vorhof und zusätzlich 50 ml Farbstofflösung gelegt wird langsam in jeder dieser Kammern verabreicht, weil sie nicht ausreichend mit Farbstoff durch die Koronararterien eingeführt perfundiert.
  2. Während des Ladevorgangs werden 3 EKG-Ableitungen (Harvard Apparatus) sanft auf der Oberfläche des Herzens, die nicht in die Richtung der Optik für die Projektion verwendet gelegt. Electrode N o 1 ist auf der hinteren apikalen Teil des linken Ventrikels, N o 2 auf dem linken Vorhof und N positioniert p> o 3 als Referenz-Elektrode auf der Aortenwurzel (Abbildung 1). Die atriale und ventrikuläre elektrografischen Signale werden anschließend verstärkt, digitalisiert und angezeigt neben optischen Signalen mit Hilfe der Software (Redshirt Imaging) (Abbildung 2). Ein Oszilloskop (Tektronix TDS Modell 1002) wird auch verwendet, um die Oberflächen-EKG s in Echtzeit zu visualisieren und zu angemessenen Tempo zu gewährleisten.
  3. EKG-Verstärker (Hugo Sachs Elektronik) Einstellungen: High Pass Filter: 0,1 Hz
    Low Pass Filter: 150 Hz
  4. Die CMOS-Kamera (Redshirt Imaging) und Makroskop positioniert ist mit der XYZ Anpassungen, so dass die Oberfläche des Herzens im Fokus ist und zentriert in der Akquisition Rahmen. Die Kamera und Optik sind auf einer Schwingungsisolierung Tabelle (Minus K Technology), um Resonanzfrequenzen zu minimieren montiert. Zur gleichen Zeit, einen koaxialen Stimulationselektrode (Harvard Apparatus) mit einem isolierten, S48 Elektro-Stimulation Einheit (Grass) kontrolliert wird, ist auf dem rechten Vorhof platziert und das Herz ist Tempo bei 300 Schlägen pro Minute (Abbildung 1).
  5. Elektrische Stimulation (Grass) Einstellungen:
    Rate: 5 Impulse pro Sekunde
    Delay: 0,2 ms
    Dauer: 2 ms
    Volt: 6-12 V
    Modus: Wiederholen
    Pulse: Single
  6. Für optische Aufnahmen, die Bewegungsartefakte Mangel von Kontraktion, muss das Herz elektromechanisch abgekoppelt werden. Wir tun dies, indem wieder Einschalten Perfusion Zeilen Krebs-Henseleit-Lösung, die 11 mmol / L BDM enthält. Zwischen Akquisitionen, ist das Herz mit unverfälschten Krebs-Henseleit perfundierten zur Erhaltung Lebensfähigkeit der Zubereitung.
  7. Die Aufnahme-Parameter werden mit Hilfe der Software (Redshirt Imaging) mit folgenden Einstellungen Akquisition:
    Konfiguration: 2.000 Hz; 128x128 Pixel-Array
    Frame Interval: 0,5 ms
    Kamera Amplifier Gain: 5x
    On-Chip Gain: 8x-12Me-well
    Shutter: 500 ms Verzögerung
    Anzahl der Frames: 4000
    Dauer: 2000 ms
  8. Alle Zimmer und Ausstattung Lichter ausgeschaltet oder abgeschirmt, um Hintergrundgeräusche während der Aufnahme zu vermeiden. Die LED-Beleuchtung des Herzens nur bei der optischen Aufnahme auf Foto-Bleich-und Farbstoff Toxizität zu verringern. Die Lichtquelle Verschluss ist mit einem 5-V-Impuls über das Control Panel durch ein D-to-A Board in den Rechner (Redshirt Imaging) geliefert gesteuert.

Teil 4: Analysieren Akquisition Informationen über Redshirt Imaging Software

  1. Nach dem Erwerb werden die Daten verarbeitet mit verschiedenen Filter-Einstellungen. Wir verwenden in der Regel die Standardeinstellungen außer bei der Einstellung der Band Stop / Pass-Filter, der mit der linken Grenze bei 44,0 und den rechten Rand auf 98,0 eingestellt ist. Danach werden die aufgenommenen Informationen verarbeitet und ein Film erzeugt wird (Redshirt Imaging).
  2. Daten aus einer Akquisition entspricht der lokalen elektrischen Aktivierung bei 16.384 Seiten im Herzen Oberfläche über einen Zeitraum von 2 Sekunden. Die Software ermöglicht es, diese lokalen Signale direkt miteinander und mit der atrialen und ventrikulären elektrografischen Aufnahmen verglichen werden. Die Daten werden dann visualisiert Mapping lokalen elektrischen Aktivierung, um Farbe und Darstellung dieser Informationen als Animation zeigt die raumzeitliche elektrischen Aktivierung der kardialen Oberfläche. Zum Erstellen einer solchen Animation, verwenden wir die Software an:
    • zeitlich und / oder räumlich die Daten filtern
    • wählen Sie eine Start-und Endzeit für die Animation
    • Karte optische Signale in Farbe auf ruhenden Lichtintensität der einzelnen Pixel auf
    • Overlay die resultierende Farbe von Daten mit einem Bild des Herzens
    • erzeugen die Animation

Teil 5: Repräsentative Ergebnisse

Wenn der perfundierten Herzen Vorbereitung war unbeweglich während der Aufnahme, zeigen die optischen Signale eine gesonderte Spitze für jedes Pixel in einer Veränderung der Emissionsintensität von di-8-ANEPPS beteiligt. Die entsprechenden Filme (Abbildungen 3 und 4) zeigen eine Anregung Wellenfront ausbreitet über die epikardialen Oberfläche des Herzens sowie die gleichzeitig erworbene elektrografischen Aufnahmen (Abbildung 2).

Langendorff-Herz-Setup-Diagramm für die Herzstimulationsstudie, wobei nummerierte Komponenten hervorgehoben sind.
Abbildung 1. Ein Foto von einer Langendorff-perfundierten Herzen Vorbereitung der Darstellung der Positionen der Stimulationselektrode auf den rechten Vorhof und die EKG-Ableitungen, wie in Schritt 3.2 beschrieben.

Biologisches Prozessdiagramm mit Signalen; Datenanalyse der Ergebnisse der Fluoreszenzmikroskopie.
Abbildung 2. Representative optische Signale und elektrografischen Aufnahmen von einer perfundierten Lewis Ratte Herzen. Panel A zeigt ein Bild der epikardialen Oberfläche für die optische Bildgebung verwendet. Die Position der Pixel ausgewählt, um die Veränderungen in der Fluoreszenz-Emission im Laufe der Zeit in Panel B zeigen, sind durch farbige Pfeile angedeutet. Elektrographische Signale werden in Panel C mit der roten Linie, die atriale Aktivierung und die hellblaue Linie entspricht der ventrikulären Signal angezeigt. Bitteve.com/files/ftp_upload/1138/Figure4.jpg "> Klicken Sie hier, um eine größere Version dieses Bild zu sehen.

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Diskussion

Die Entfernung des Herzens von narkotisierten Ratten müssen schnell durchgeführt werden, um Myokardischämie zu vermeiden. Wenn Ischämie oder unzureichender Koronarperfusion auftritt, wird das Herz wahrscheinlich entwickeln Arrhythmien und kann sich Infarkt. Darüber hinaus wird diese Herzen zeigen unzureichende Fluoreszenzemission für informative Aufnahmen und anschließende Analysen. Vor dem Einlegen der Farbstoff, müssen Herzmuskelzellen in angemessener Weise mit Krebs-Henseleit-Lösung perfundiert werden zur Schaffung u...

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Offenlegungen

Tierversuche wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien und Vorschriften her durch die Institutional Animal Care und Verwenden Ausschusses im Kinderkrankenhaus Boston gesetzt durchgeführt.

Danksagungen

Und Beiträge an die Reizleitung Fund an der Kinderklinik Boston; Diese Arbeit wird durch Forschungsmittel von den National Institutes of Health (HL088206 HL068915) unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
CardioCMOS-SM128fAusstattungRedShirtImaging, LLC
CardioPlex-SoftwareAusstattungRedShirtImaging, LLC
Lichtquelle LUXEON LED 460–490 nmAusstattungLumileds Lighting, US, LLC, San Jose, CA 95131 USALXHL-PB02
ECG-Verstärker Typ 689 Hugo Sachs ElektronikAusstattungHarvard Apparatus730149
Dichroischer Spiegel 505 nmAusstattungSemrockFF505-SDi01-25x36
Emotionsfilter 605 nm LangpassAusstattungSciMedia
THT SidewaysAusstattungSciMedia25 BM-8
Mini-KugelgelenkhalterAusstattungHarvard ApparatusBS4 73-0177
Kleine Stimulations-Elektroden-SetsAusstattungHarvard ApparatusBS4 73-0160
BM-6 Tischplattform zur SchwingungsisolierungAusstattungTechnology Inc., Inglewood, CA 9030125 BM-6
Monopolare EKG-ElektrodeAusstattungHarvard ApparatusBS4 73-0200
Rollenpumpe SCI 400AusstattungWatson-Marlow Pumps Group401U/D1
Rollenpumpe MasterFlex Easy Load IIAusstattungCole-ParmerModell 77201-60
Schlauch Marprene #14AusstattungWatson-Marlow Pumps Group902.0016.016
MasterFlex-SchlauchAusstattungPharMed, Westlake, OH 44145 USA06485-25
S48 Rechteckimpuls-StimulatorAusstattungGrass TechnologiesModell S48
SIU5 HF-TRANSFORMATOR-ISOLATIONSEINHEITAusstattungGrass TechnologiesModell SIU5
5-Liter-WassermantelreservoirAusstattungRadnoti Glass Technology Inc.120142-5
2-Liter-WassermantelreservoirAusstattungRadnoti Glass Technology Inc.120142-2
0,5-Liter-WassermantelreservoirAusstattungRadnoti Glass Technology Inc.120142-0
0,25-Liter-WassermantelreservoirAusstattungRadnoti Glass Technology Inc.120142-025
10-ml-HeizspuleAusstattungRadnoti Glass Technology Inc.158822
Komplianz-BlasenfalleAusstattungRadnoti Glass Technology Inc.130149
Luer-TrennkatheterAusstattungHarvard Apparatus72-1444
Dreiwegehahn, FLL auf MLT, ohne PortabdeckungenAusstattungHarvard ApparatusBS4 72-2630
Thermoelement-ThermometerAusstattungCole-ParmerWU-91100-40
Ultrafeine flexible Mikrosonde der IT-SerieAusstattungPhysiTemp Instruments Inc., Clifton, NJ 07013 USAIT-24P
Oszilloskop Tektronix TDS 1002AusstattungTektronix, Inc.TDS 1002B
2,3-ButandionmonoximReagenzSigma-AldrichB0753
Ketamin HClReagenzHospira Inc.RL-0065
XylazinReagenzLloyd, Inc.LB15705A
E-TOXA-CLEAN®ReagenzSigma-AldrichE9029
Di-8-ANEPPSReagenzInvitrogenD-3167

Referenzen

  1. Efimov, I. R., Nikolski, V. P., Salama, G. Optical imaging of the heart. Circ Res. 95 (1), 21-33 (2004).
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  4. Entcheva, E. Fluorescence imaging of electrical activity in cardiac cells using an all-solid-state system. IEEE Trans Biomed Eng. 51 (2), 333-341 (2004).
  5. Stamm, C. Rapid endotoxin-induced alterations in myocardial calcium handling: obligatory role of cardiac TNF-alpha. Anesthesiology. 95 (6), 1396-1405 (2001).
  6. Choi, Y. H. Cardiac conduction through engineered tissue. Am J Pathol. 169 (1), 72-85 (2006).
  7. Skrzypiec-Spring, M. Isolated heart perfusion according to Langendorff---still viable in the new millennium. J Pharmacol Toxicol Methods. 55 (2), 113-126 (2007).
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Nachdrucke und Genehmigungen

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