Methodenartikel

Laser Mikrodissektion Angewandt auf Gene Expression Profiling von Untergruppe von Zellen aus dem Drosophila Wing Disc

10.6K Ansichten

DOI:

10.3791/1895

30. April 2010

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Laser Mikrodissektion wurde angewandt, um Gene Expression Profiling in bestimmten Kompartimenten des Drosophila Flügel Scheibe analysieren unterzogen, um lokalisierte RNAi In vivo. RNA aus entsprechenden Bereichen zum Schweigen gebracht und unsilenced Fächer extrahiert wurde durch quantitative RT-PCR analysiert, um vergleichende Genexpressionsanalysen im Rahmen der nativen Gewebe Mikroökologie bestimmen.

Zusammenfassung

Heterogene Natur des Gewebes hat sich ein limitierender Faktor bei der Menge an Informationen, die aus biologischen Proben erzeugt werden können, Kompromisse Downstream-Analysen. Angesichts der komplexen und dynamischen zellulären Verbänden bestehende in vielen Geweben, um die in vivo Interaktionen gründliche molekulare Analyse rekapitulieren muss man in der Lage sein bestimmte Zellpopulationen in ihrer Muttersprache Kontext zu analysieren. Laser-vermittelte Mikrodissektion kann dieses Ziel zu erreichen, so dass eine eindeutige Identifizierung und erfolgreichen Ernte der Zellen von Interesse unter der direkten mikroskopischen Visualisierung unter Beibehaltung molekulare Integrität. Wir haben diese Technologie angewendet, um die Genexpression in definierten Gebieten der Entwicklungsländer Drosophila Flügel Disc, die ein vorteilhaftes Modellsystem, um Wachstum zu kontrollieren, der Zelldifferenzierung und Organentwicklung Studie stellt analysieren. Larven Imaginalscheiben sind frühzeitig in die vorderen und hinteren, dorsalen und ventralen Kammern durch Abstammung Einschränkung Grenzen unterteilt. Die Nutzung der induzierbaren GAL4-UAS binärer Ausdruck System, jedes dieser Fächer können gezielt in transgenen Fliegen Ausdruck einer UAS-GFP-Transgen unter der Kontrolle der entsprechenden GAL4-Treiber bauen gekennzeichnet werden. In den transgenen Discs können Genexpressionsanalysen von diskreten Untergruppen von Zellen genau nach Laser-vermittelte Mikrodissektion bestimmt werden, mit dem fluoreszierenden GFP-Signal an lasergeschnittenen führen.

Unter der Vielzahl der nachgelagerten Anwendungen, konzentrierten wir uns auf RNA-Transkript Profilierung nach lokalisierten RNA-Interferenz (RNAi). Mit dem Aufkommen der RNAi-Technologie können GFP-Markierung mit lokalisierten Knockdown von einem bestimmten Gen gekoppelt werden, so dass der Transkriptions-Reaktion eines diskreten Zellpopulation, die Gen-Silencing bestimmten. Zur Validierung dieses Ansatzes haben wir entsprechende Bereiche der Scheibe aus dem hinteren (gekennzeichnet durch die GFP-Expression) zerlegt, und die anterior (unbeschriftet) Fach auf regionaler Silencing in der P-Fach eines ansonsten ubiquitär exprimierten Gen. RNA wurde aus mikrodissezierten zum Schweigen gebracht und unsilenced Bereichen und vergleichende Genexpressionsanalysen mittels quantitativer real-time RT-PCR bestimmt extrahiert. Wir zeigen, dass diese Methode effektiv für eine genaue Transkriptomik von Teilmengen von Zellen innerhalb des Drosophila Imaginalscheiben angewendet werden. In der Tat, während der massive Scheibe Zubereitung als Quelle der RNA in der Regel davon ausgegangen Zelle Homogenität, ist es bekannt, dass transkriptionelle Expression kann stark variieren innerhalb dieser Strukturen in Folge der Positionsinformationen. Mit lokalisierten fluoreszierenden GFP-Signal an lasergeschnittenen Führer, können genauere transkriptionelle Analysen durchgeführt werden und profitabel zu verschiedenen Anwendungen, einschließlich Abschrift Profilierung der verschiedenen Zelllinien in ihrer Muttersprache Kontext angewendet.

Protokoll

Teil 1. Vorbereitung von Drosophila Imaginal Flügel Discs unterzogen Spezifische und lokalisierte RNAi.

Als biologisches Material verwendeten wir Drosophila imaginalen Flügel Scheiben aus transgenen Larven unterzogen, um die lokale und spezifische Gen-Silencing durch die GAL4/UAS System 1 erhalten. Diese Larven Nachkommen entstammt das aus einer genetischen Kreuzung mit zwei elterlichen Linien: eine Durchführung der GAL4-Treiber, der zweite die UAS-Responder. Neben GAL4 in einem bestimmten zeitlichen und / oder räumliche Muster auszudrücken, trägt der Fahrer Linie ein UAS-GFP-Reporter, dass die GAL4 Ausdruck Domain visualisieren können. Die UAS-Responder Linie drückt, unter der Kontrolle des UAS-Sequenz, eine Haarnadel-Silencing RNA (hpRNA) in der Lage, gezielt ausgewählten Gen von Interesse (nennen wir es Gen X) 2. Einmal in der Zelle exprimiert wird, ist die hpRNA X gespalten small interfering RNA (siRNA) in der Lage, gezielt Stille des ausgewählten Gens zu erzeugen. In den Larven Nachkommen führt, dass beide Fahrer und Responder Transgene, die UAS-Silencing-Konstrukt nur in jenen Zellen, die das GAL4-Protein transkribiert wird, und ist somit in der Lage, eine räumlich beschränkte Schweigen des ausgewählten Gens X. induzieren

Unter der Vielzahl der möglichen Anwendungen, wandten wir diesen Ansatz zu einem ausgewählten Gen unseres Interesses (Gen X) unter der Kontrolle des engrailed-GAL4 (en)-Treiber, welche spezifischen Silencing in der hinteren Kammer des Flügels Scheibe 3 auslösen kann Stille , wurde dessen Gebiet durch die Expression der UAS-GFP-Transgen markiert.

Das Schweigen imaginalen Flügel Scheiben wurden von Hand zerlegt, wobei darauf zu achten Umgebung kontaminieren Geweben, insbesondere die Einhaltung Luftröhre zu beseitigen. Jeder isolierte Flügel Scheibe wurde dann schnell und schonend zu einem bereits behandelten, RNase frei Dissektion Rahmen für die sofortige Lasermikrodissektion ausgewählter Bereiche übertragen.

Part 2. Laser Mikrodissektion ausgewählte Bereiche aus dem Schweigen (posterior) und unsilenced (anterior) Fächer des Flügels Scheibe.

Sobald die Flügel Scheibe wurde auf der Membran-, Laser-Mikrodissektion von bestimmten Bereichen aus Schweigen (posterior; GFP-markierten) und unsilenced (anterior, GFP-unbeschriftet) Fächer wurde erreicht. Dies wurde durch Zeichnung einer Fläche, die leicht in beide passen könnte durchgeführt, die GFP-positiven und GFP-negativen Seiten der Scheibe. Unter dem Microdissector wir zunächst fokussiert den Laserstrahl auf die GFP-positiven Gewebe, so dass ein Schnitt entlang der gewählten Umfang. Die Microdissector Erlöse mit Schneiden in der gewählten Geschwindigkeit und Kraft, aber es ist möglich, das Schneiden von Hand zu suchen, bis der ausgewählte Bereich des Tissue fällt in die Röhre darunter. Diese Röhre enthält eine kleine Menge des TRI-Reagenz, so dass die GFP-positiven Gewebe bereit für die anschließende RNA-Extraktion ist.

Wir Anschließend wechselte der Schnittfläche auf die gegenüberliegende, GFP-negative Seite des Flügels Disc, um ein gleichwertiges Gebiet von der unsilenced, GFP-negativen Gewebe zu sezieren. Wieder einmal, nach der Abschaltautomatik, begaben wir uns zur Verfeinerung der Schnitt manuell. Sobald der Schnitt gemacht wurde, auch die GFP-negativen Gewebe wurde in der TRI Reagent erholt, bereit für die RNA-Extraktion.

Teil 3. RNA-Extraktion und Transkription Profiling von mikrodissezierten Tissue Areas.

Wir gesponnen die Rohre, um die Flüssigkeit aus der Kappe lösen und fügte TRI-Reagenz bis zu 1 ml, dann erfolgt die RNA-Extraktion nach dem Standard TRI Reagenz-Protokoll. Um genügend Material zu sammeln, wiederholten wir den Schneidvorgang auf 100 imaginalen Flügel-Discs. Ausgehend von 100 Gebieten von etwa 5000 um je 2, war unsere Ausbeute von 1,5 pg RNA. Genauigkeit der manuellen Dissektion wurde dann, indem die GFP-Expression in den zum Schweigen gebracht und unsilenced Proben durch RT-PCR kontrolliert, mit Super-Script III (Invitrogen) zu synthetisieren cDNA mit Random Hexameren. Nachfolgende quantitative Analysen konzentrieren, um die Expression des Gens Schweigen X bestimmen, zusammen mit denen von vermeintlichen Ziele ihres Regulationsweg, wurden durch Real Time RT-PCR unter Verwendung von Master Mix (Invitrogen) durchgeführt.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Mit Bezug auf ihre basale Expression in der vorderen / hinteren Abteile unsilenced Flügel Scheiben erreicht, wurde die Aktivität des ausgewählten Gens X gefunden reduziert auf 40% bei Schweigen. Im Gegensatz dazu war eine seiner vermeintlichen Ziele (Gene Y) deutlich hochreguliert (7-facher Anstieg) gefunden, was uns zu der Hypothese bestätigen, dass es negativ wurde von Gen X. geregelt

Wir schließen daraus, dass die oben beschriebenen experimentellen Ansatz erfolgreich auf die Validierung v...

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Danksagungen

Die Autoren bedanken sich prof. Chiara Campanella und AMRA Center of Competence der Universität Neapel Federico II in Neapel, Italien, für die Bereitstellung von ihnen mit dem Einsatz des Lasers Microdissector, und Herr Vincenzo Vicidomini für die großzügige Hilfe bei der 3D-Animation.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Fly-Stämme

Drosophila UAS-silencing Linien können von VDRC RNAi-Sammlung 2 erhalten werden. Eine Sammlung von GAL4-Fahrer Linien ist an der Bloomington Drosophila Stock Center (Indiana, USA) zur Verfügung.

Ausstattung

Erforderliche Ausrüstung umfasst Laser Microdissector (Leica LMD6000), Coulter Microfuge 22R (Beckman), PCR (BIO-RAD Mein Cycler), Real Time PCR (BIO-RAD iQ5).

Werkzeuge

Benötigte Werkzeuge sind: Glas Brunnen, Pinsel, Pinzette Mikrodissektion, hängenden Tropfen gleitet, Insekten-Pins auf Injektionsnadeln, Metallrahmen mit PET-Membran-, Kunststoff-Rohre (50 ml, 05 ml, 0,25 ml) montiert.

Referenzen

  1. Elliott, D. A., Brand, A. H. The GAL4 System A Versatile System for the Expression of Gene. Dahmann, C. , Humana Press Inc. Totowa, NJ. (2008).
  2. Klein, T. Wing disc development in the fly: the early stages. Current Opinion in Genetics & Development. 11, 470-475 (2001).
  3. Dietzl, G. A genome-wide transgenic RNAi library for conditional gene inactivation in Drosophila. Nature. 448, 151-U1-151-U1 (2007).
  4. Martin, F. A., Morata, G. Compartments and the control of growth in the Drosophila wing imaginal disc. Development. 133, 4421-4426 (2006).
  5. Tabata, T. Genetics of morphogen gradients. Nature Reviews Genetics. 2, 620-630 (2001).
  6. Moreno, E. &, Basler, K. dMyc transforms cells into super-competitors. Cell. 117, 117-129 (2004).

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden

Genehmigung beantragen

Schlagwörter

RNA InterferenzGAL4 UAS SystemGFP MarkierungReal Time PCRRNA ExtraktionGewebedissektionFluoreszenzbildgebung

Verwandte Artikel