Methodenartikel

Nematoden-Synchronisation: Eine Methode, um Populationen von Würmern in identischen Entwicklungsstadien zu erhalten

30. April 2023

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Quelle: Sarasija, S. und Norman, K. R. Messung der Sauerstoffverbrauchsraten bei intakten Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (2019).

In diesem Video zeigen wir eine Methode, um eine entwicklungssynchronisierte Population von sterilen adulten C. elegans zu erzeugen. Das Beispielprotokoll synchronisiert Würmer, um den Sauerstoffverbrauch bei lebenden Tieren zu untersuchen.

Protokoll

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Dieses Protokoll ist ein Auszug aus Sarasija und Norman, Measurement of Oxygen Consumption Rates in Intact Caenorhabditis elegans, J. Vis. Exp. (2019).

>1. Wachstum und Synchronisation der Nematodenpopulation

Diese Tiere erreichen das L4-Larvenstadium nach ~42 h. Zu diesem Zeitpunkt werden die L4-Larven mit einem Platinpickel auf OP50-NGM-Platten mit 0,5 mg/ml 5-Fluor-2'-Desoxyuridin (FUdR) gebracht, um zu verhindern, dass sie Nachkommen produzieren.
HINWEIS Stellen Sie sicher, dass innerhalb eines Experiments alle Stämme für einen ähnlichen Zeitraum synchronisiert sind. Die FUdR-Behandlung sterilisiert die Tiere und verhindert die Eiablage und die Nachkommenproduktion, was die OCR beeinflussen könnte. Diese sterilisierten Tiere werden am nächsten Tag (Tag 1, adulte Tiere nach ~66 h) für den Assay analysiert. Es wurde berichtet, dass FUdR die Physiologie und Lebensdauer bestimmter mutierter Würmer beeinflusst. Daher sollte dies berücksichtigt werden, wenn das Medikament zur Sterilisation verwendet wird. Würmer können auch mit Hilfe von feminisierenden Mutationen wie fem-1(hc17) oder fem-3(e2006) sterilisiert werden. Diese Mutationen können sich jedoch auf die mitochondriale Funktion auswirken.

  1. Übertragen Sie L4-Larven mit gewünschtem genetischen Hintergrund (z. B. N2 [Wildtyp] und Sel-12-Tiere) auf Nematoden-Wachstumsmedien (NGM)-Platten (siehe Tabelle 1 für das Rezept), die frisch mit einem Rasen von Escherichia coli (OP50) besät wurden. Verwenden Sie mindestens zwei 100-mm- oder drei 60-mm-Platten für jeden Stamm. Inkubieren Sie die Würmer bei der entsprechenden Wachstumstemperatur (zwischen 15–25 °C) für 3–4 Tage oder bis die Platten mit einer großen Anzahl von Eiern und trächtigen Würmern konzentriert sind.
  2. Waschen Sie die Eier und Würmer von den Platten mit ca. 6 ml M9-Puffer (Rezept siehe Tabelle 1) pro 100-mm-Platte Nematoden und überführen Sie sie mit Pasteur-Glaspipetten in einzelne 15-ml-Zentrifugenröhrchen für jeden Stamm. Drehen Sie diese Röhrchen 3 Minuten lang bei 6.180 x g herunter und saugen Sie den M9-Puffer ab, wobei nur die Tier- und Eierpellets erhalten bleiben.
  3. Geben Sie 3–4 ml Bleichlösung (siehe Tabelle 1 für das Rezept) in jedes Röhrchen und wirbeln Sie es intermittierend für 6 min. Fügen Sie M9-Puffer hinzu, um jedes Röhrchen zu füllen, und drehen Sie es 1 Minute lang bei 6.180 x g und aspirieren Sie den Überstand. Wiederholen Sie diese Wäsche mit M9 dreimal und geben Sie das Eipellet in ein frisches 15-ml-Röhrchen mit ca. 9 mL M9-Puffer
  4. .
  5. Synchronisieren Sie die frisch geschlüpften Würmer, indem Sie 16–48 h bei 20 °C nutieren. Schleudern Sie diese Röhrchen 1,5 min lang bei 6.180 x g herunter und legen Sie die synchronisierten L1-Tiere auf einzelne NGM-Platten, die frisch mit einem Rasen von OP50 besät wurden (ca. 6.000–10.000 Tiere pro 100 mm Platte) und halten Sie sie bei 20 °C.

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Ergebnisse

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Tabelle 1: Rezepte für NGM-Platten, M9-Puffer und Bleichlösung.

M9 Puffer (1 L)
dH2O1.000 mL
NaCl5 g
KH2PO43 g
...

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Offenlegungen

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Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
100 mm; 60 mm PetrischalenKord-Valmark Labware Produkte2900; 2901
15 mL konische RöhrchenCorning430791
50 mL konische RöhrchenCorning430829
AgarFisher ScientificNr. BP1423-2
Bacto PeptonBd; Bacto211677
Bacto TryptonBd; Bacto211705
Bacto-Hefe-ExtraktBd; Bacto212705
Bleichegenerisch
Calciumchlorid-Dihydrat (CaCl2,2H2O)Fisher ScientificNr. C79-500
CholesterinFisher ScientificNr. C314-500
Deionisiertes Wasser (dH2O)
Glass Pasteur PipettenKrackeler ScientificTel.: 6-72050-900
Magnesiumsulfat-Heptahydrat (MgSO4,7H2O)Fisher ScientificNr. BP213-1
Kaliumphosphat zweibasisch (K2HPO4)Fisher ScientificNr. BP363-1
Kaliumphosphat einbasig (KH2PO4)Fisher ScientificNr. P285-500
NatriumchloridFisher ScientificNr. BP358-10
Natriumhydroxid (NaOH)Fisher ScientificNr. BP359-500
Natriumphosphat, zweibasisch, wasserfrei (Na2HPO4)Fisher ScientificNr. BP332-1

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Schlagwörter

C elegansL1 LarvenL4 LarvenBleichbehandlungM9 PufferFUdR BehandlungNematoden WachstumsmediumSauerstoffverbrauchsterile Adulte

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