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Methodenartikel

Einbettung adulter Drosophila-Köpfe in Paraffin: Vorbereitung von Gewebe für die Histologie

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30. April 2023

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Sunderhaus, E. R., Kretzschmar, D. Massenhistologie zur Quantifizierung der Neurodegeneration bei Drosophila . J. Vis. Exp. (2016).

Dieses Video beschreibt, wie man Drosophila-Köpfe in Paraffin einbettet, indem man die Kragenmethode verwendet, eine Technik, die Fliegenköpfe für das serielle Schneiden vorbereitet. Paraffinschnitte werden für histologische Untersuchungen der Anatomie des Gehirns und zur Beurteilung der Neurodegeneration verwendet. Das vorgestellte Protokoll zeigt, wie mehrere Fliegen in einem Präparat verarbeitet werden können, wodurch die Zeiteffizienz erhöht und experimentelle Artefakte minimiert werden.

Protokoll

Dieses Protokoll ist ein Auszug aus Sunderhaus und Kretzschmar, Mass Histology to Quantify Neurodegeneration in Drosophila, J. Vis. Exp. (2016).

1. Befestigen des Kopfes an Kragen und Einbetten in Paraffin

HINWEIS: Alle Schritte des Fixierungsprozesses sollten in einem Abzug durchgeführt werden. Methylbenzoat stellt zwar kein Gesundheitsrisiko dar, hat aber einen sehr ausgeprägten Geruch, der überwältigend sein kann, wenn es nicht in einem Abzug gehandhabt wird.

  1. Bevor Sie die Fliegen betäuben, stellen Sie 50 ml Carnoy-Lösung her, indem Sie 15 ml Chloroform und 5 ml Eisessig zu 30 ml 99%igem Ethanol hinzufügen (Chloroform und Essigsäure nicht mischen). Gießen Sie es in einen Glasbehälter mit flachem Boden, z. B. eine Kristallisationsschale, um sicherzustellen, dass die Manschetten flach aufliegen können und vollständig von der Lösung bedeckt sind.
  2. Betäuben Sie die Fliegen mit CO2 oder Äther.
  3. Der Faden fliegt (bei den meisten Halsbändern bis zu 20) am Hals mit einer Pinzette in die Halsbänder. Denken Sie daran, alle Köpfe in der gleichen Ausrichtung auszurichten, wie in Abbildung 1 A zu sehen, und seien Sie vorsichtig, um sicherzustellen, dass der Kopf oder die Augen nicht beschädigt werden.
  4. Fügen Sie Sinus-Oculis-Fliegen (Pfeile, Abbildung 1A) an zufälligen Positionen ein, damit die Reihenfolge der Fliegen in den Abschnitten leicht erkennbar ist. Wenn die Versuchsfliegen eine helle oder weiße Augenfarbe haben, fädeln Sie außerdem einige Rotaugenfliegen, wie z. B. Wildtyp, zwischen sie ein, um sicherzustellen, dass genügend Pigment vorhanden ist, um den Objektträger zu färben. Notieren Sie die Reihenfolge der Fliegen auf einem Protokollblatt zusammen mit der Halsbandnummer, wenn Sie mehr als ein Halsband verwenden.
  5. Sobald ein Halsband fertig ist, legen Sie es für 3,5 - 4 h in die vorbereitete Carnoy-Lösung.
  6. Kippen Sie die Carnoy-Lösung in den entsprechenden Entsorgungsbehälter und beginnen Sie mit dem Waschen von Ethanol. Achten Sie darauf, langsam zu gießen, um die Platzierung der Manschetten im Behälter nicht zu stören.
  7. Waschen Sie die Halsbänder 30 Minuten lang zweimal in 99% Ethanol.
  8. Waschen Sie die Halsbänder 1 h lang in 100% Ethanol. Achten Sie darauf, die Wäschen rechtzeitig zu wechseln, um eine Überdehydrierung zu vermeiden.
  9. Legen Sie die Manschetten in Methylbenzoat O/N bei RT. Verschließen Sie den Behälter mit Parafilm, um die Verdunstung des Methylbenzoats zu verhindern.
  10. Gießen Sie das Methylbenozat in den entsprechenden Einwegbehälter im Abzug. Eine zuvor vorbereitete Mischung aus Paraffinwachs (56 - 57 °C) 1:1 mit niedrigem Schmelzpunkt (56 - 57 °C) wird zugegeben. Ab diesem Zeitpunkt müssen die Manschetten in einem Inkubator bei 65 °C aufbewahrt werden, um sicherzustellen, dass das Paraffin nicht aushärtet.
  11. Gießen Sie die Mischung aus Methylbenozat und Paraffin in den entsprechenden Einwegbehälter und gießen Sie geschmolzenes reines Paraffinwachs, das bei 65 °C aufbewahrt wird, auf die Halsbänder.
  12. Wechseln Sie das Paraffin nach 30 min und wiederholen Sie dies mindestens 5 Mal. Es sollten mindestens 6 - 8 Wäschen durchgeführt werden.
  13. Sobald die Wäschen abgeschlossen sind, legen Sie die Manschetten in eine Gummi-Eiswürfelschale mit Schlitzen, die ungefähr so groß sind wie die Halsbänder. Gießen Sie geschmolzenes Paraffin darüber, bis sie vollständig bedeckt sind, und lassen Sie es O/N aushärten (versuchen Sie, Luftblasen zu vermeiden).
  14. Entfernen Sie die Paraffinblöcke mit den Manschetten aus der Eiswürfelschale. Trennen Sie den Paraffinblock mit einer Rasierklinge vom Halsband und brechen Sie den Kragen vorsichtig ab. Die Köpfe befinden sich im Paraffinblock, während die Körper im Kragen bleiben. Die Blöcke können bei Raumtemperatur aufbewahrt werden.
  15. Um die Halsbänder zu reinigen, weichen Sie sie in einem Entparafinisierungsmittel bei 65 °C ein, um das Paraffin zu entfernen, reinigen Sie sie mit leichtem Schrubben und waschen Sie sie vor der Wiederverwendung in Ethanol.

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Ergebnisse

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Abbildung 1: Paraffin-Serienschnitte. A) Mit der Kragenmethode können Versuchs- und Kontrollfliegen als eine Probe verarbeitet werden, indem sie auf einen Kragen aufgefädelt werden. Zur Orientierung werden augenlose Sinus-Oculis-Fliegen eingesetzt (Pfeile). B) Schematische Darstellung der Ausrichtung der Fliegenköpfe im Kragen. C) In diesem Bild sind Schnitte...

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
KragenGenesee ScientificTS 48-100Wir verwenden maßgefertigte Halsbänder, die aus einem Stück Metall bestehen, anstatt aus Schichten wie die von Genesee.
Gummi-Eiswürfelschale zum EinbettenHaushaltslagerDie Größe kann durch Einkleben zusätzlicher Wände angepasst werden
Kristallisierende SchaleFisher Scientific UnternehmenTel.: 08-762-3
ÄtherFisher Scientific UnternehmenNr. E138-1
EthanolDecon Laboratories Inc.Nr. 2701
CholoroformFisher Scientific UnternehmenNr. C298-500
EisessigFisher Scientific UnternehmenNr. A38-212
MethylbenzoatFisher Scientific UnternehmenM205-500Ausgeprägter Geruch - Verwendung in Abzügen!
Paraffinwachs mit niedrigem SchmelzpunktFisher Scientific UnternehmenNr. T565Achten Sie darauf, dass das geschmolzene Wasser in einem 65 °C warmen Wasserbad aufbewahrt wird.

Tags

ParaffineinbettungKragenmethodeGewebefixierungCarnoy-LösungEthanol-DehydrierungMethylbenzoatParaffininfiltrationSerienschnitthistologische Untersuchung