Schwanzveneninjektion: Eine Methode zur Verabreichung von Krebszellen für Metastasierungsstudien in einem Mausmodell

1. Schwanzveneninjektion von markierten Krebszellen

HINWEIS: Schritt 1.2.4 wurde für 4T1-Zellen optimiert, die in syngenen BALB/c-Mäusen wachsen. Werden andere Krebszelllinien und Mausstämme verwendet, sollten zunächst die Anzahl der injizierten Zellen und die Länge des Assays optimiert werden.

1. Expandieren Sie die in Schritt 2 erzeugten 4T1-Zelllinien auf zwei 15-cm-Schalen in vollständigem Wachstumsmedium, so dass überschüssige Zellen am Tag der Injektion verfügbar sind.
2. Bereiten Sie die Zellen wie folgt für die Schwanzveneninjektion vor:
   1. Saugen Sie das Medium an und spülen Sie die Zellplatten mit 1x PBS.
   2. Trypsinisieren Sie die Zellen mit 5 ml Trypsin pro 15 cm Platte für 2-5 Minuten (die Zellen sollten den Boden der Vertiefung frei abspülen). Übertragen Sie alle Zellen in ein konisches Röhrchen. Waschen Sie die verbleibenden Zellen aus der Gewebekulturschale mit genügend vollständigem Wachstumsmedium, um das Trypsin zu löschen, und geben Sie die Wäsche in dasselbe konische Röhrchen.
   3. Zählen Sie die Zellen mit einem automatischen Zellzähler, um die Gesamtzellzahl zu bestimmen.
   4. Zentrifugieren Sie die Zellen 3 Minuten lang bei 122 x g, aspirieren Sie den Überstand und resuspendieren Sie die Zellen in 1x PBS in der gewünschten Konzentration. Hier werden in jede Maus 2,5 x 10⁴ Zellen in 100 μl PBS injiziert, so dass die Zellen bei 2,5 x 10⁵ Zellen/ml resuspendiert werden. Bewahren Sie die Zellsuspensionen bis zur Injektion auf Eis auf.
      HINWEIS: Es ist wichtig, die Zeitspanne zwischen der Trypsinisierung der Zellen und der Schwanzveneninjektion auf etwa 1 Stunde zu begrenzen.
3. Injizieren Sie 4T1-Zellen aus Schritt 1.2.5 über die laterale Schwanzvene wie folgt in Mäuse:
   1. Mischen Sie die Zellen in einer Haube in der Tierhaltung vorsichtig, aber gründlich, indem Sie das Röhrchen umdrehen oder eine 1-ml-Spritze verwenden, um sicherzustellen, dass sie gleichmäßig resuspendiert werden. Stellen Sie immer sicher, dass die Zellen resuspendiert sind, bevor Sie die Spritze laden.
   2. Laden Sie eine 1-ml-Luer-Lock-Spritze mit Zellsuspension und stoßen Sie überschüssige Luftblasen aus. Platzieren Sie eine 1/2 Zoll große 30-Gauge-Nadel mit der Abschrägung nach oben auf die Spritze und stoßen Sie Luftblasen aus.
   3. Legen Sie die Maus vorsichtig in einen Nagetierfixierer.
   4. Die seitlichen Schwanzvenen sollten sichtbar und erweitert sein. Wenn nicht, kneifen Sie vorsichtig den Ansatz des Schwanzes zusammen und tauchen Sie den Schwanz in warmes Leitungswasser, um die Venen zu erweitern.
      Anmerkung: Eine Erweiterung der Venen kann auch erreicht werden, indem der Mäusekäfig unter eine Heizlampe und/oder auf ein Heizkissen gelegt wird.
   5. Verwende ein Alkoholtuch, um den Schwanz zu reinigen. Führen Sie die Nadel mit der abgeschrägten Seite nach oben in die Schwanzvene ein und injizieren Sie 100 μl Zellsuspension.
      Anmerkung: Wenn die Nadel richtig in die Vene eingeführt wird, sollte sie leicht nach vorne und hinten gleiten, und es sollte kein Widerstand entstehen, wenn der Kolben gedrückt wird. Erfolgreiche Injektionen sollten auch zu einer "Rötung" führen, bei der die blaue Farbe der Vene nach der Injektion für einige Sekunden weiß wird.
4. Entfernen Sie langsam die Nadel und üben Sie mit einer sterilen Gaze Druck auf die Injektionsstelle aus, um Blutungen zu stoppen.
5. Setzen Sie die Maus wieder in den Käfig ein und überwachen Sie sie 15 Minuten lang, um eine vollständige Wiederherstellung zu gewährleisten. Mäuse sollten 3x wöchentlich auf Anzeichen von Schmerzen oder Beschwerden untersucht werden.
6. Überwachen Sie die Bildung und das Wachstum von Mäusen auf Metastasierung und -wachstum für 3-6 Wochen (abhängig von Zelllinie und Mausstamm) mit einem In-vivo-Bildgebungsgerät für lebende Tiere (siehe Schritte 1.5 und 1.6).