Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Organotypischen Kultur der GFP-exprimierenden Maus Embryonen für Real-time Imaging der peripheren Nerven Outgrowth

15.6K Aufrufe

DOI:

10.3791/2309

29. März 2011

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir präsentieren eine Methode zur organotypischen Schnitten der Mitte der Schwangerschaft Maus-Embryonen für die Kultivierung und Zeitraffer-Bildgebung von peripheren Nerven Auswuchs vorzubereiten.

Zusammenfassung

Für viele Zwecke ist der Anbau von Maus-Embryonen ex vivo als organotypischen Schnitten wünschenswert. Zum Beispiel verwenden wir eine transgene Maus-Linie (tauGFP), in dem die verbesserte Version des grün fluoreszierenden Protein (EGFP) exklusiv in allen Neuronen des sich entwickelnden zentralen und peripheren Nervensystems 1 ist ausgedrückt, so dass die Möglichkeit, beide Filme die Innervation das Vorderbein und diesen Prozess mit pharmakologischen und genetischen Techniken 2 zu manipulieren. Die wichtigsten Parameter für die erfolgreiche Kultivierung solcher Scheiben Kulturen ist die Methode, mit der die Scheiben sind vorbereitet. Nach umfangreichen Tests von einer Vielzahl von Methoden, die wir gefunden haben, dass ein Vibratom die bestmögliche Gerät, um die Embryonen, so dass sie routinemäßig in einer Kultur, die Lebensfähigkeit über einen Zeitraum von mehreren Tagen und vor allem zeigt, Ergebnis Scheibe ist, entwickelt sich in einem Alter, -spezifischen Art und Weise. Für Mitte der Schwangerschaft Embryonen, schließt dies die normale Folge der Spinalnerven aus dem Rückenmark und Spinalganglien, um ihre Ziele in der Peripherie und die richtige Bestimmung des Skelett-und Muskelgewebe.

In dieser Arbeit präsentieren wir eine Methode für die Verarbeitung von ganzen Embryonen embryonale Tag (E) E10 bis E12 in 300 bis 400 Mikrometer Scheiben für den Anbau in einem Standard-Gewebekultur-Inkubator, der für Studium kann bis zu zwei Tage nach slice Vorbereitung. Entscheidend für den Erfolg dieses Ansatzes ist die Verwendung eines Vibratom jedem Agarose eingebettete Embryo in Scheiben schneiden. Dies ist durch den Anbau der Scheiben auf Millicell Kultur Membran-Einsätze auf ein kleines Volumen Medium platziert, wodurch eine Schnittstelle Kultur Technik gefolgt. Ein Wurf mit einem Durchschnitt von 7 Embryonen routinemäßig produziert mindestens 14 Scheiben (2-3 Scheiben von dem Vorderbein Region pro Embryo), das leicht variiert je nach Alter der Embryonen sowie die Dicke der Scheiben. Über 80% der kultivierten Scheiben zeigen Nerven Auswuchs, der througout der Anzucht 2 gemessen werden kann. Repräsentative Ergebnisse mit dem tauGFP Mauslinie demonstriert.

Protokoll

Teil 1: Vorbereitung für das Schneiden und Kultivieren.

  1. Bereiten 10-cm-Zellkulturplatten mit Slicing (DMEM, 25% 1x HBSS, 25% fötalem Rinderserum, 0,5% Glucose, 1 mM Glutamin, 2,5 mM HEPES, pH 7,3) und 3-cm Millicell-CM 0,4-um Kultur Membran-Einsätze und halten in Brutschrank bei 37 ° C und 5% CO 2.
  2. Hitze bis 4% Agarose für niedrigen Schmelzpunkt in PBS in der Mikrowelle und lassen Sie ihn auf Heizplatte, so dass es bei etwa 37 ° C bleibt
  3. Füllen Sie 10-cm bakteriologischen Petrischalen mit PBS (140 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 10 mM Na 2 HPO 4, 1,8 KH 2 PO 4) und auf Eis stellen.
  4. S....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

In einem umfassenden Vergleich von Methoden zur embryonalen Scheibe Kulturen der Mitte der Schwangerschaft Maus-Embryonen (E10 - E12) vorzubereiten, haben wir beobachtet, dass eine Vibratom ohne Frage stellt die zuverlässigsten Ergebnisse sowohl in Bezug auf die allgemeine Rentabilität der Kulturen und die Reproduzierbarkeit der den Nerv Auswuchs Muster. Im Gegensatz dazu bereit Scheiben mit einem McIlwain Gewebe Chopper 3 erwies sich als völlig lebensfähig. Wir hatten ursprünglich eine Guillotine-Methode

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Danksagungen

Die Autoren bedanken sich die ursprüngliche Quelle für die Idee zu schneiden Kultur auf Maus-Embryonen 5 durchführen. Wir möchten Joachim Kirsch für die großzügige wissenschaftliche Unterstützung und Anna Degen anerkennen für die Tätigkeit als unser Mädchen für alles bei den Dreharbeiten. Und der Universität Heidelberg (Exzellenzcluster Cellular Networks): Diese Arbeit wurde von der Deutschen Forschungsgemeinschaft (Sonderforschungsbereich 488, Teilprojekt B7/B9 Deutsche Forschungsgemeinschaft) gefördert.

....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
HBSS 10xGIBCO, von Life Technologies14180
PräparationswerkzeugeFine Science Toolsverschiedene
L.M.P.-AgaroseInvitrogen15517-022
Whatmann-PapierWhatman, GE Healthcare3030917
Verkürzte, feuerpolierte Pipetten
DMEMGIBCO, von Life Technologies41966
FBSGIBCO, von Life Technologies10270-106
Pen StrepGIBCO, von Life Technologies15140
L-Glutamin 100xGIBCO, von Life Technologies25030
VibratomMicrom InternationalHM 650 V
FluoreszenzmikroskopOlympus CorporationBX61WI
analySISSoft Imaging System
Millicell-CM-EinlagenEMD MilliporePICMORG 50
10-cm-KulturschalenGreiner Bio-One633171
LOCTITE 406Henkel Corp142580
RasierklingenThermo Fisher Scientific, Inc.keine
StereomikroskopNikon InstrumentsSMZ800
HEPESCarl Roth Gmbh9105.2
GlukoseSigma-AldrichG7021
x4-ObjektivOlympus CorporationPL-Serie
x10-ObjektivOlympus CorporationUPLFL –PH-Serie
FilterOlympus CorporationU-MNIBA2
CCD-KameraSoft Imaging SystemSIS F-View II
Ausstattung für beheizte KammerLeica MicrosystemsCTI-Controller 3700 und Inkubator S #11531171

Referenzen

  1. Tucker, K. L., Meyer, M., Barde, Y. A. Neurotrophins are required for nerve growth during development. Nat Neurosci. 4, 29-37 (2001).
  2. Brachmann, I., Jakubick, V. C., Shaked, M., Unsicker, K., Tucker, K. L. A simple slice culture system for the imaging of nerve development in....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

GFP ExpressionVibratom SchnittgebungAuswachsen von SpinalnervenFluoreszenzmikroskopieTauGFP MausGewebekulturbrautomatMillicell MembranenBildgebung peripherer Nerven