Methodenartikel

Isolierung kleiner regulatorischer RNA-gebundener bakterieller Ziel-RNA mittels Affinitätsreinigung

29. August 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Quelle: Mercier, N., et. al., MS2-Affinity Purification Coupled with RNA Sequencing in Gram-Positive Bacteria. J. Vis. Exp. (2021)

Dieses Video zeigt die Isolierung von MS2-markierter kleiner regulatorischer RNA (sRNA), die an ihre bakterielle Ziel-RNA gebunden ist, mittels Affinitätsreinigung mit einer Fusion des Maltose-bindenden Proteins (MBP) und des MS2-Hüllproteins, das auf Amyloseharz immobilisiert ist.

Protokoll

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Puffer und Medien

Bereiten Sie für MAPS-Experimente die folgenden Puffer und Medien vor:- Puffer A (150 mM KCl, 20 mM Tris-HCl pH 8, 1 mM MgCl2 und 1 mM DTT)- Puffer E (250 mM KCl, 20 mM Tris-HCl pH 8, 12 mM Maltose, 0,1 % Triton, 1 mM MgCl2 und 1 mM DTT)

Vorbereitung der Säule

VORSICHT: Achten Sie darauf, das Amyloseharz nicht trocknen zu lassen. Verschließen Sie die Säule bei Bedarf mit einer Endkappe. Bereiten Sie alle Lösungen vor, bevor Sie mit der Affinitätsreinigung beginnen.

  1. Stellen Sie eine Chromatographiesäule in ein Säulengestell.
  2. Entfernen Sie die Säulenspitze und waschen Sie die Säule mit Reinstwasser.
  3. 300 μl Amyloseharz zugeben.
  4. Waschen Sie die Säule mit 10 mL Puffer A.
  5. Verdünnen Sie 1.200 pmol MBP (Maltose-bindendes Protein)-MS2-Protein in 6 ml Puffer A und laden Sie es in die Säule.
  6. Waschen Sie die Säule mit 10 mL Puffer A.

MS2-Affinitätsreinigung (Abbildung 1)

  1. Laden Sie das Zelllysat in die Säule.
    HINWEIS: Bewahren Sie 1 ml des Zelllysats (Rohextrakt, CE) auf, um die Gesamt-RNA zu extrahieren und eine Northern-Blot- und Transkriptomanalyse durchzuführen.
  2. Sammeln Sie die Durchflussfraktion (FT) in einem sauberen Auffangröhrchen.
  3. Waschen Sie die Säule 3 Mal mit 10 mL Puffer A. Sammeln Sie die Waschfraktion (W).
  4. Eluieren Sie die Säule mit 1 mL Puffer E und sammeln Sie die Elutionsfraktion (E) in einem 2 mL Mikroröhrchen.
  5. Bewahren Sie alle gesammelten Fraktionen bis zur RNA-Extraktion auf Eis auf oder frieren Sie sie für die spätere Verwendung bei -20 °C ein.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
figure-results-1

Abbildung 1. Schematische Darstellung des MAPS-Protokolls, angepasst an Staphylococcus aureus. Von der Plasmidkonstruktion bis zur Datenanalyse.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
1.5 mL MikrozentrifugenröhrchenSarstedt72.690.001
15 mL ZentrifugenröhrchenFalcon352070
2 mL MikrozentrifugenröhrchenStarstedt72.691
250 mL KulturkolbenDominique Dutscher2515074Bakterienkulturen
50 mL ZentrifugenröhrchenFalcon352051Kulturzentrifugation
AmyloseharzNew England BioLabsE8021SMS2-Affinitätsaufreinigung
pMBP-MS2Addgene65104MS2-MBP Herstellung
Poly-Prep ChromatographiesäuleBioRad7311550MS2-Affinitätsreinigung

Nachdrucke und Genehmigungen

Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden

Genehmigung beantragen

Schlagwörter

MS2 Affinit tsreinigungRNA SequenzierungMaltose BindungsproteinAmylose HarzMS2 H llproteinZelllysatDurchflussfraktionElutionspuffer

Verwandte Artikel