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Puffer und Medien
Bereiten Sie für MAPS-Experimente die folgenden Puffer und Medien vor:- Puffer A (150 mM KCl, 20 mM Tris-HCl pH 8, 1 mM MgCl2 und 1 mM DTT)- Puffer E (250 mM KCl, 20 mM Tris-HCl pH 8, 12 mM Maltose, 0,1 % Triton, 1 mM MgCl2 und 1 mM DTT)
Vorbereitung der Säule
VORSICHT: Achten Sie darauf, das Amyloseharz nicht trocknen zu lassen. Verschließen Sie die Säule bei Bedarf mit einer Endkappe. Bereiten Sie alle Lösungen vor, bevor Sie mit der Affinitätsreinigung beginnen.
- Stellen Sie eine Chromatographiesäule in ein Säulengestell.
- Entfernen Sie die Säulenspitze und waschen Sie die Säule mit Reinstwasser.
- 300 μl Amyloseharz zugeben.
- Waschen Sie die Säule mit 10 mL Puffer A.
- Verdünnen Sie 1.200 pmol MBP (Maltose-bindendes Protein)-MS2-Protein in 6 ml Puffer A und laden Sie es in die Säule.
- Waschen Sie die Säule mit 10 mL Puffer A.
MS2-Affinitätsreinigung (Abbildung 1)
- Laden Sie das Zelllysat in die Säule.
HINWEIS: Bewahren Sie 1 ml des Zelllysats (Rohextrakt, CE) auf, um die Gesamt-RNA zu extrahieren und eine Northern-Blot- und Transkriptomanalyse durchzuführen. - Sammeln Sie die Durchflussfraktion (FT) in einem sauberen Auffangröhrchen.
- Waschen Sie die Säule 3 Mal mit 10 mL Puffer A. Sammeln Sie die Waschfraktion (W).
- Eluieren Sie die Säule mit 1 mL Puffer E und sammeln Sie die Elutionsfraktion (E) in einem 2 mL Mikroröhrchen.
- Bewahren Sie alle gesammelten Fraktionen bis zur RNA-Extraktion auf Eis auf oder frieren Sie sie für die spätere Verwendung bei -20 °C ein.