1. Isolierung frischer Streptomyces venezuelae-Sporen und Herstellung des verbrauchten Kulturmediums
- 30 ml Maltose-Hefeextrakt-Malzextrakt (MYM) Medium, ergänzt mit 60 μl R2 Spurenelementlösung (TE), mit 10 μl Sporen des Stammes SV60 [attBφBT1::p SS209 (PdivIVA-divIVA-mcherry PftsZ-ftsZ-ypet)] impfen. Für ein gleichmäßiges Wachstum und eine gleichmäßige Sporulation der Zellen verwenden Sie einen Kolben mit Schotter oder einen Kolben, der eine Feder enthält, um eine ausreichende Belüftung zu ermöglichen.
- Kultivieren Sie die Zellen für 35-40 Stunden bei 30 °C und 250 U/min.
- Untersuchen Sie die Zellen mit einer flüssigkeitsgelagerten Phasenkontrastmikroskopie. Zu diesem Zeitpunkt sind Myzelfragmente und Sporen sichtbar.
- Zentrifugieren Sie 1 ml Zellen in einer Tischzentrifuge bei 400 x g für 1 Minute, um das Myzel und größere Zellfragmente zu pelletieren.
- Etwa 300 μl Überstand, der eine Sporensuspension enthält, in ein neues 1,5-ml-Röhrchen umfüllen und auf Eis legen. Bewahren Sie das restliche Kulturmedium auf
- Die Sporen 1:20 in MYM-TE verdünnen (Endkonzentration: 0,5-5 x 107 Sporen/ml) und bis zur Verwendung auf Eis legen.
HINWEIS: Obwohl die genauen Bedingungen, die die Sporulation bei Streptomyces auslösen, nicht verstanden werden, stimuliert die Verwendung von verbrauchtem MYM-TE-Medium, einschließlich aller unbekannten extrazellulären Signale aus einer sporulierenden Kultur, die Sporulation. - 10 ml des restlichen Kulturmediums werden filtriert, um verbrauchtes MYM-TE zu erhalten, das frei von Sporen und Myzelfragmenten ist. Verwenden Sie einen sterilen 0,22-μm-Spritzenvorsatzfilter und geben Sie verbrauchtes MYM-TE in ein steriles 15-ml-Röhrchen.
- Halten Sie das vorbereitete verbrauchte MYM-TE einige Tage lang bei 4 °C, wenn zusätzliche Experimente mit ähnlichen Wachstumsbedingungen durchgeführt werden sollen.