| Transgene Arabidopsis-Linien | | | Park, E., Lee, H. Y., Woo, J., Choi, D. & Dinesh-Kumar, S. P. Raumzeitliche Überwachung von Pseudomonas syringae-Effektoren über Typ-III-Sekretion unter Verwendung von geteilten fluoreszierenden Proteinfragmenten. Pflanzenzelle. 29 (7), 1571-1584 (2017) |
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| CYTO-sfGFP1-10 | ABRC | CS69831 | |
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| NU-sfGFP1-10 | ABRC | CS69832 | |
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| PT-sfGFP1-10 | ABRC | CS69833 | |
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| MT-sfGFP1-10 | ABRC | CS69834 | |
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| PX-sfGFP1-10 | ABRC | CS69835 | |
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| ER-sfGFP1-10 | ABRC | CS69836 | |
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| GO-sfGFP1-10 | ABRC | CS69837 | |
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| PM-sfGFP1-10 | ABRC | CS69838 | |
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| Organellen-zielgerichtetes sfGFP1-10OPT-Plasmid | | | Park, E., Lee, H. Y., Woo, J., Choi, D. & Dinesh-Kumar, S. P. Raumzeitliche Überwachung von Pseudomonas syringae-Effektoren über Typ-III-Sekretion unter Verwendung von geteilten fluoreszierenden Proteinfragmenten. Pflanzenzelle. 29 (7), 1571-1584 (2017) |
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| CYTO-sfGFP1-10 | Addgene | 97387 | |
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| NU-sfGFP1-10 | Addgene | 97388 | |
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| PT-sfGFP1-10 | Addgene | 97389 | |
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| MT-sfGFP1-10 | Addgene | 97390 | |
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| PX-sfGFP1-10 | Addgene | 97391 | |
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| ER-sfGFP1-10 | Addgene | 97392 | |
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| GO-sfGFP1-10 | Addgene | 97393 | |
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| PM-sfGFP1-10 | Addgene | 97394 | |
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| ER-sfKirsche1-10 | Addgene | 97403 | |
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| ER-sfYFP1-10 | Addgene | 97404 | |
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| CYTO-sfCFP1-10 | Addgene | 97405 | |
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| sfGFP11-getaggter Gateway-kompatibler Vektor für T3SS-basiertes Effektor-Abgabesystem | Park, E., Lee, H. Y., Woo, J., Choi, D. & Dinesh-Kumar, S. P. Raumzeitliche Überwachung von Pseudomonas syringae-Effektoren über Typ-III-Sekretion unter Verwendung von geteilten fluoreszierenden Proteinfragmenten. Pflanzenzelle. 29 (7), 1571-1584 (2017) |
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| pBK-GW-1-2 | Addgene | 98250 | pAvrRpm1:GW:HA-sfGFP11:AvrRpm1t; Beständig gegen Kanamycin (25 μg/ml) |
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| pBK-GW-1-4 | Addgene | 98251 | pAvrRpm1:GW:HA-2xsfGFP11:AvrRpm1t; Beständig gegen Kanamycin (25 μg/ml) |
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| pBK-GW-2-2 | Addgene | 98252 | pAvrRpm1:AvrRPM1sp:GW:HA-sfGFP11:AvrRpm1t; Beständig gegen Kanamycin (25 μg/ml) |
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| pBK-GW-2-4 | Addgene | 98253 | pAvrRpm1:AvrRPM1sp:GW:HA-2xsfGFP11:AvrRpm1t; Beständig gegen Kanamycin (25 μg/ml) |
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| pBG-GW-1-2 | Addgene | 98254 | pAvrRpm1:GW:HA-sfGFP11:AvrRpm1t; Beständig gegen Gentamycin (25 μg/ml) |
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| pBG-GW-1-4 | Addgene | 98255 | pAvrRpm1:GW:HA-2xsfGFP11:AvrRpm1t; Beständig gegen Gentamycin (25 μg/ml) |
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| pBG-GW-2-2 | Addgene | 98256 | pAvrRpm1:AvrRPM1sp:GW:HA-sfGFP11:AvrRpm1t; Beständig gegen Gentamycin (25 μg/ml) |
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| pBG-GW-2-4 | Addgene | 98257 | pAvrRpm1:AvrRPM1sp:GW:HA-2xsfGFP11:AvrRpm1t; Beständig gegen Gentamycin (25 μg/ml) |
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| Bakterienstämme | | | |
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| Agrobacterium tumefaciens GV3101 | | | Csaba Koncz und Jeff Schell, Der Promotor des TL-DNA-Gens 5 steuert die gewebespezifische Expression von chimären Genen, die von einem neuartigen binären Agrobacterium-Vektor getragen werden. Mol Gen Genet. 204,383-396 (1986); Beständig gegen Gentamycin (50 μg/ml) und Rifampicin (50 μg/ml) |
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| Pseudomonas syringae pv. Tomaten CUCPB5500 | | | Kvitko, B. H. et al. Deletionen im Repertoire von Pseudomonas syringae pv. Tomaten-DC3000-Typ-III-Sekretionseffektorgene zeigen funktionelle Überlappungen zwischen den Effektoren. PLoS Pathog. 5 (4) (2009).; Beständig gegen Rifampicin (100 μg/ml) |
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| Medienkomponenten | | | |
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| Keimmedien für Pflanzen | | | 2.165g/L Murashige & Skoog Pulver, 10 g/L Saccharose in Wasser geben. Auf pH 5,8 einstellen und 2,2 g/L Phytagel hinzufügen. Automatisch kalben. |
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| Murashige & Skoog Medium inkl. Vitamine | Duchefa Biochemie | Nr. M0222 | Bei 4 °C lagern. |
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| Saccharose | Duchefa Biochemie | Nr. S0809 | |
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| Gattung Phytagel | Sigma-Aldrich | Nr. P8169 | |
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| LB Medien | | | 10 g/l Trypton, 5 g/l Hefeextrakt, 10 g/l NaCl zum Wasser geben. Für feste Medien 15 g/L Mikro-Agar hinzufügen. Autoklav. Lassen Sie die Lösung auf 55 °C abkühlen und fügen Sie bei Bedarf ein Antibiotikum hinzu. |
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| Trypton | BD Biowissenschaften | 211705 | |
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| Hefeextrakt | BD Biowissenschaften | 212750 | |
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| NaCl | Duchefa Biochemie | Nr. S0520 | |
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| Mikro-Agar | Duchefa Biochemie | M1002 | |
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| King's B Medien | | | 10 g/L Protease Pepton #2, 1,5 g/L wasserfreies K2HPO4, 15 g/L Agar in Wasser. Autoklav. Auf 55 °C abkühlen lassen und sterile 15 ml/L Glycerin, 5 ml/L MgSO4 in das Medium geben. Füge bei Bedarf Antibiotika hinzu. |
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| Proteose Pepton | BD Biowissenschaften | 212120 | |
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| Wasserfreies K2HPO4 | Sigma-Aldrich | 1551128 Alleinstellungsmerkmal | |
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| Glycerin | Duchefa Biochemie | Nr. G1345 | |
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| MgSO4 | Sigma-Aldrich | M7506 | |
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| Bacto Agar | BD Biowissenschaften | 214010 | |
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| Mannitol-Glutamat (MG) flüssige Medien | | | Fügen Sie 10 g/l Mannitol, 2 g/l L-Glutaminsäure, 0,5 g/l KH2PO4, 0,2 g/l NaCl und 0,2 g/l MgSO4 dem Wasser hinzu. Auf pH 7 einstellen |
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| Mannit | Duchefa Biochemie | Nr. M0803 | |
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| L-Glutaminsäure | Duchefa Biochemie | Nr. G0707 | |
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| KH2PO4 | Sigma-Aldrich | NIST200B | |
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| Infiltrations-Puffer | | | 10 mM MES (2-(N-Morpholino)-ethansulfonsäure), 10 mM MgCl2, 150 μM Acetosyringon. pH-Wert 5,6; Bereiten Sie vor Gebrauch einen frischen Puffer vor. |
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| MES | Duchefa Biochemie | M1503 | Bereiten Sie 100 mM (pH 5,6) Brühe in Wasser vor. Filter sterilisieren. |
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| MgCl2 | Sigma-Aldrich | M8266 | Bereiten Sie 100 mM Brühe in Wasser vor. Autoklav. |
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| Acetosyringon | Sigma-Aldrich | D134406 | Bereiten Sie 150 mM Material in DMSO vor. |
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| Geräte/Materialien für konfokale Mikroskope | | | |
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| 710 konfokales Laserscanning-System | Carl Zeiss | | |
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| Axio observer Z1 inverses Mikroskop | Carl Zeiss | | |
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