1. Heterologe Expression der His-markierten Rizintoxin-A-Kette (RTA) in Escherichia coli
- Transformieren Sie Escherichia coli (E. coli)-Zellen mit dem Expressionsplasmid pET24-RTA(His)6 oder dem leeren Vektor pET24a(+) mit Standard-Elektroporationsprotokollen. Zellen, die das leere Plasmid enthalten, dienen als negative Kontrolle.
- Nach der Auswahl positiver Klone auf kanamycinhaltigen (100 μg/mL) LB (Lysogeny Fellh) Platten inokulieren Sie Zellen, die das RTA-Expressionsplasmid oder den leeren Vektor enthalten, in 5 mL LBKan-Medium (LB-Medium mit 100 μg/mL Kanamycin) und inkubieren bei 37 °C und 220 U/min für 24 Stunden.
- Ergänzen Sie 1 L LBKan-Medium mit 5 ml Vorkultur und inkubieren Sie die Zellen bei 37 °C und 220 U/min, bis die Zellen einen OD600 von 0,8–1,0 (ca. 3–4 Stunden) erreicht haben. Anschließend wird die Kulturtemperatur auf 28 °C reduziert und eine 1 M Isopropyl-β-D-1-thiogalactopyranosid (IPTG)-Lagerlösung in H2O hergestellt.
- Induzieren Sie die RTA-Expression des E. coli , indem Sie IPTG zu einer Endkonzentration von 1 mM hinzufügen.
- Nach 3,5 Stunden bei 28 °C und 220 U/min werden die Zellen durch Zentrifugation bei 10.000 x g und 4 °C für 10 Minuten entnommen, das Pellet zweimal mit 5 mL Bindungspuffer (500 mM NaCl, 10 mM Imidazol und 20 mM KH2PO4, pH = 7,4) bei 10.000 x g und 4 °C für 10 Minuten gewaschen, und das Pellet in einem 5-mL-Bindungspuffer neu suspendieren.
ANMERKUNG: Das Protokoll kann in diesem Stadium pausiert werden, und Zellen können mehrere Tage bei 80 °C gelagert werden.