Methodenartikel

Quantifizierung des bakteriellen Ausscheidungs zur Bewertung des Infektionsübertragungspotenzials bei Drosophila

216 Ansichten

30. Januar 2026

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Siva-Jothy, J. A. et al., Orale bakterielle Infektion und Ausscheidung bei Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (2018)

Dieses Video demonstriert das Verfahren zur Überwachung der bakteriellen Ausscheidung bei Drosophila, indem eine infizierte Fliege über mehrere nahrungshaltige Röhren übertragen, abgeschiedene Bakterien wiedergewonnen und lebensfähige Kolonien durch serielle Verdünnung und Panzerung quantifiziert werden.

Protokoll

  1. Messung des bakteriellen Ausscheidens
    1. Missen Sie den Haarausfall zusammen mit der inneren Last.
    2. Nach der Infektion werden einzelne Fliegen in 1,5-mL-Mikrozentrifugenröhren mit ~50 μL Lewis-Medium für 24 Stunden übertragen.
    3. Entfernen Sie die Fliegen für die interne Ladungsmessung und waschen Sie die Schläuche mit 100 μL 1x PBS (phosphatgepufferter Kochsalzlösung), indem Sie 3 Sekunden lang stark vortexieren.
    4. Messen Sie die CFUs (koloniebildende Einheiten) in dieser Wäsche, indem Sie auf LB (Luria-Bertani) Nährstoffagar plattieren.
    5. Nach der Infektion werden einzelne Fliegen in 1,5-mL-Mikrozentrifugenröhren mit ~50 μL Lewis-Medium für 24 Stunden übertragen.
    6. Die Fliegen werden für weitere 24 Stunden in neue Mikrozentrifugenröhren mit ~50 μL Lewis-Medium übertragen. Waschen Sie die kontaminierten Röhrchen mit 100 μL 1x PBS, indem Sie 3 Sekunden lang stark vortexieren.
    7. Messen Sie die CFUs in dieser Wäsche, indem Sie sie auf LB-Nährstoffagar anrichten.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
PhiolenSarstedt Ltd.58.49Polystyrol-Flachbasisrohr 75 mm x 23,5 mm, 23 ml
AgarSigma-AldrichA7002Agar, Asche 2,0–4,5 %
Brauner ZuckerBidvest66032Hellbrauner, weicher Zucker
MaisTaubenfarm Bio-Maismehl
FermipanhefeBidvest96360Trockene, sofortige Hefe
PetrischalenFisher Scientific UK Ltd.15788517X600 Petrischale 90 x 16,2 mm steriler Dreifachventil
Eppendorf-Tube (1,5 ml)Sarstedt Ltd.72.690.001Sarstedt Mikroröhren-Konus-Sockel-Schubkappe 1,5 ml Standardneutralleiter
EthanolVWR International Ltd.20821.33ETHANOL ABSOLUTE ANALAR NP ACS/R.PE - Analytische Qualität
LB-Brühe, MillerFisher Scientific UK Ltd.BP1426Enthält 10g Trypton, 5g Hefeextrakt, 10g Natriumchlorid pro Liter
96-Bohrloch-MikroplattenScientific Laboratory Supplies Ltd.353072Falcon 96 Gut klare, flachbodenige, TC-behandelte Polystyrolzellkultur-Mikroplatte mit sterilem Deckel
VortexFisherbrand Whirlimixer 75W 50-6-Hz 220-240V
10 μL PipettenspitzenGreiner Bio-one Inc741015Ganz schön im Gilson-Stil. Graduiert, entleert, Nachfüllung, 960 Teile
200 μL PipettenspitzenGreiner Bio-one Inc741065Ganz schön im Gilson-Stil. Graduiert, entleert, Nachfüllung, 960 Teile
1000 μL PipettenspitzenGreiner Bio-one Inc741045Ganz schön im Gilson-Stil. Graduiert, entleert, Nachfüllung, 960 Teile
20 μL gefilterte PipettenspitzenGreiner Bio-one Inc774288Filterspitze im Gilson-Stil. Durchsichtig, blaues Rack, Einzelpackung, R/Dnase-frei, 10 Racks mit 96 Stück
200 μL gefilterte PipettenspitzenGreiner Bio-one Inc739288Filterspitze im Gilson-Stil. Durchsichtig, blaues Rack, Einzelpackung, R/Dnase-frei, 10 Racks mit 96 Stück
1000 μL gefilterte PipettenspitzenGreiner Bio-one Inc740288Filterspitze im Gilson-Stil. Clear, Rack Blue, Single Packed, R/Dnase frei, 10 Racks mit 60 Stück

Nachdrucke und Genehmigungen

Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden

Genehmigung beantragen

Schlagwörter

Drosophila melanogasterserielle Verd nnungKoloniez hlungTransfer des FuttermittelsQuantifizierung lebensf higer Bakteriendarmkolonisierender PathogenAusplattieren auf N hragarVortex Mischen in PBS

Verwandte Artikel