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Bewertung der bakteriellen Virulenz mit dem C. elegans Liquid Toxicity Assay

February 26th, 2026

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Abstract

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Quelle: Chen, Y., et al. Bewertung von Virulenz und Pathogenese der Aeromonas-Infektion in einem Caenorhabditis elegans-Modell. J. Vis. Exp. (2018).

Dieses Video demonstriert den C. elegans Liquid Toxicity Assay mit Aeromonas, eine Methode zur Bewertung bakterieller Virulenz durch Messung des Überlebens von Würmern in einer nährstoffarmen flüssigen Umgebung. Der Test zeigt stammspezifische Pathogenität anhand des Ausmaßes der durch Toxinen verursachten Schäden und Sterblichkeit bei C. elegans.

Protocol

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1. C. elegans Liquid Toxicity Assay mit Aeromonas

HINWEIS: Um eine Verunreinigung zu vermeiden, sollten Schritte in einer laminaren Flusshaube durchgeführt werden.

  1. Am Tag nach dem Aussäen der L1-Würmer auf der ENGM (Enriched nematode growth medium) Platte, verteilt mit E. coli OP50, nehmen Sie jeweils eine einzelne Kolonie jeder der vier Aeromonas-Stämme und E. coli OP50 und kultivieren Sie mit jeweils 5 ml LB-Brühe bei 37 °C für 16 Stunden.
    HINWEIS: Im Protokoll wurden folgende Bakterienstämme verwendet: E. coli OP50, die normale Nahrungsquelle von C. elegans. A. dhakensis AAK1, das erste vollständig sequenzierte pathogene klinische A. dhakensis-Isolat . A. hydrophila A2-066, A. veronii A2-007 und A. caviae A2-9307121 sind repräsentativ klinische Isolate des National Cheng Kung University Hospital.  
    HINWEIS: Zur Herstellung eines angereicherten NGM (ENGM) lösen Sie 3 g NaCl, 5 g bakterielles Pepton, 1 g Hefeextrakt und 30 g Agar in 1 L deionisiertes Wasser. Autoklav bei 121 °C für 20 Minuten. Warte, bis es auf 55 °C in einem Wasserbad abgekühlt ist, und gib 1 ml 1 M CaCl2, 1 ml 1 M MgSO4, 1 ml 5 % Cholesterin in Ethanol und 25 ml Phosphatpuffer hinzu. Wirbeln, um gut zu mischen.
  2. Misse die Absorption von OD600 der Bakterienbrühe.
  3. Zentrifugiere die bakterielle Brühe bei 3.500 x g für 15 Minuten, um die LB-Brühe zu entfernen. Die Bakterien wieder suspendieren und die Bakterienbrühe mit S-Medium auf OD600 = 3,0 anpassen. Fügen Sie 195 μL bakterielle Brühe in S-Medium zu mindestens 8 Brunnen einer 96-Well-Platte hinzu.
    HINWEIS: Die Zusammensetzung des S-Mediums: Zur Herstellung eines S-Mediums wird vor der Anwendung 40 mL S-Basal, 0,4 ml 1 M Kaliumcitrat, 0,4 ml Spurmetalllösung, 0,12 ml 1 M CaCl2, 0,12 ml 1 M MgSO4, 40 μL 5 % Cholesterin in Ethanol und 1 ml 8 mM FudR vor der Verwendung gemischt.
  4. Waschen Sie die L4-Würmer auf der ENGM-Platte mit E. coli OP5 mit M9-Medium ab. Stellen Sie die Schneckenlösung auf eine Konzentration von 5 Würmern pro μL ein und geben Sie 5 μL der Wurmlösung zu jedem Brunnen der 96-Bohrloch-Platte. Stellen Sie sicher, dass es etwa 25 Würmer pro Brunnen gibt.
  5. Inkubieren Sie die 96-Well-Platte auf einem Shaker bei 200 U/min bei 25 °C.
  6. Zähle die Anzahl der lebenden und toten Würmer nach 24, 48 und 72 Stunden. Berechnen Sie die Überlebensraten jedes Bohrlochs mit folgender Formel: (Lebende Würmer/Gesamtwürmer) × 100%.
  7. Zeichne ein Streudiagramm mit der täglichen Datenberechnung.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Shaker-BrutkastenYIH DERLM-570RBakterieninkubation
NaClSIGMA31434Zubereitung von Kulturmedium
MgSO₄SIGMAM7506Zubereitung von Kulturmedium
AgarDifco214530Zubereitung von Kulturmedium
CaCl₂SIGMAC1016Zubereitung von Kulturmedium
CholesterinSIGMAC8503Zubereitung von Kulturmedium
EthanolSIGMA32205Zubereitung von Kulturmedium
KOHSIGMAP5958Zubereitung von Kulturmedium
6 cm PetriplatteALPHA PLUS46Agarplatten-Vorbereitung
96-Well-PlatteFALCON353072Flüssigkeitstest
Bakterielles PeptonAffymetrix/USBAAJ20048P2Zubereitung von Kulturmedium
HefeextraktSIGMA92144Zubereitung von Kulturmedium
Zitronensäure•H₂OSIGMAUm 1909Zubereitung von Kulturmedium
Tri-Kaliumcitrat•H₂OSIGMA104956Zubereitung von Kulturmedium
FudRSIGMA1271008Zubereitung von Kulturmedium
Dinatrium EDTASIGMAE1644Zubereitung von Kulturmedium
TryptonSIGMA16922Zubereitung von Kulturmedium
MikroskopsystemNikonEclipase Ti invertiertMikroskopbildgebung
Wissenschaftliche CCD-KameraQImagingRetiga-2000R Fast 1394Mikroskopbildgebung

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Tags

C elegans Liquid Toxicity AssayBacterial Virulence EvaluationAeromonas Infection ModelWorm Survival MeasurementNutrient Limited MediumMultiwell Plate IncubationLive Worm CountingStrain Specific PathogenicityToxin Induced DamageCaenorhabditis elegans Model

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