Methodenartikel

Gold-Immunfärbung von exosomalen Schnitten: Eine Technik zur Visualisierung diagnostischer Marker im exosomalen Lumen

30. April 2023

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Quelle: Jung, M. K., Mun, J. Y. Probenvorbereitung und Bildgebung von Exosomen durch Transmissionselektronenmikroskopie. J. Vis. Exp. (2018)

In diesem Video demonstrieren wir die Goldimmunfärbung von Biomarkern, die im Lumenbereich von ultradünnen exosomalen Schnitten lokalisiert sind. Diese Technik ermöglicht die frühzeitige Diagnose von Krankheiten durch Visualisierung von Zielmolekülen innerhalb der Exosomen, die von den erkrankten Zellen sezerniert werden.

Protokoll

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

>1. Immunfärbung von Exosomenschnitten und Bildgebung

  1. Bereiten Sie 60 nm ultradünne Schnitte eines Exosomenblocks mit einem Ultramikrotom vor und sammeln Sie sie auf einem Nickelgitter
  2. .
  3. Inkubieren Sie die Gitter in 50 μl Tropfen 0,02 M Glycin für 10 Minuten, um die freien Aldehydgruppen zu löschen.
  4. Dreimal 10 Minuten lang 10 μl DW einspülen. 1 h lang bei Raumtemperatur in PBS mit 1 % BSA inkubieren.
  5. Inkubieren Sie die Gitter 1 h lang in 50-100 μl Tropfen Anti-KRS-Antikörper (1:100 in PBS mit 0,1 % BSA) (Falls erforderlich, sollte dieser Schritt bei 4 °C über Nacht durchgeführt werden.)
  6. Waschen Sie die Gitter mit fünf separaten Tropfen (50 μl) PBS mit 0,1 % BSA für jeweils 10 Minuten.
  7. Die Gitter werden für 1 h in Tropfen des Sekundärantikörpers überführt (Anti-Kaninchen-IgG, konjugiert mit 10 nm Goldpartikeln (1:100) in PBS mit 0,1 % BSA).
  8. Waschen Sie die Gitter alle 10 Minuten mit fünf separaten Tropfen (50 μl) PBS mit 0,1 % BSA.
  9. Doppelfärbung mit 2% Uranylacetat für 20 min unter dunklen Bedingungen bzw. mit Reynolds Bleicitrat für 10 min.
  10. Betrachten Sie die Gitter unter Transmissionselektronenmikroskopie bei 80 kV.
  11. Klicken Sie auf "Erfassen" und dann auf "Datei" und dann auf "Speichern unter" im CCD-Kamerasystem unter dem TEM bei 80 kV. Die Belichtungszeit folgte den automatischen Einstellungen.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Uranylacetat ems Artikel-Nr.: 22400Gefährliche Chemikalie
Bleicitrat ems Nr.: 17900
Transmissionselektronenmikroskopie Hitachi Nr. H7600
Kupfer-Gitter ems G200-Cu
Glycin Sigma Artikel-Nr.: 022K5404
Phosphatpuffer Kochsalzlösung Sigma Nr. P4417
Rinderserumalbumin Aurion Artikel-Nr.: 25557
Gereinigter Anti-Human-Antikörper CD274 (B7-H1, PD-L1)BioLegende Artikel-Nr.: 329710Ganzer Berg Immumogold
Aufgereinigte Maus IgG2b, κ Isotyp Strg BioLegende401202Ganzes Berg-Immumogold (Kontrolle)
2. Anti-Maus-IgG-konjugiertes 9-11 nm Goldpartikel Sigma Nr. G7652
Paraformaldehyd emsNr. 19210

Nachdrucke und Genehmigungen

Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden

Genehmigung beantragen

Schlagwörter

Exosome ImmunostainingGold Nanoparticle LabelingTransmission Electron MicroscopyExosome Section PreparationPrimary Antibody IncubationSecondary Antibody BindingGlycine QuenchingBlocking Buffer TreatmentUranyl Acetate StainingLead Citrate Contrast

Verwandte Artikel