Methodenartikel

Isolierung von Nierenzellen an der Maus: Eine Technik zur Isolierung und Erzeugung einer Primärkultur von tubulären Nierenepithelzellen

30. April 2023

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Quelle: Ding, W. et al. Isolierung, Charakterisierung und extrazelluläre Flussanalyse mit hohem Durchsatz von primären renalen tubulären Epithelzellen der Maus. J. Vis. Exp. (2018)

In diesem Video demonstrieren wir die Schritte zur Isolierung und Reinigung von tubulären Nierenepithelzellen für eine breite Palette von molekularbiologischen und Zellkulturstudien.

Protokoll

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Alle Verfahren, an denen Tiermodelle beteiligt sind, wurden vom lokalen institutionellen Tierpflegeausschuss und dem Tierprüfungsausschuss von JoVE überprüft.

>1. Gewebeverarbeitung und Isolierung primärer tubulärer Zellen

  1. Entfernen Sie die Nierenkapseln und das Mark, hacken Sie beide Nieren in winzige Stücke und inkubieren Sie sie in 10 ml eines Verdauungspuffers in einem 37 °C Ofen mit sanfter Rotation für 5 Minuten.
  2. Entfernen Sie unverdautes Nierengewebe, indem Sie den Puffer durch einen 70-μm-Filter leiten. Fügen Sie 10 ml Nährmedium hinzu, um die Verdauung zu stoppen.
  3. Um röhrenförmige Zellen zu sammeln, zentrifugieren Sie die gefilterte Zellsuspension bei 50 x g für 5 min, um das erste Pellet zu sammeln. Übertragen Sie den Überstand in ein neues Röhrchen und fügen Sie 5 ml Kulturmedium hinzu, zentrifugieren Sie es 5 Minuten lang bei 50 x g, um sicherzustellen, dass alle röhrenförmigen Zellen im zweiten Pellet gesammelt werden. Die Zentrifugation erfolgt mit einer niedrigeren Drehzahl, um hauptsächlich schwere Tubuli zu pelletieren. Später, nachdem sich die Zellen von der Isolierung erholt haben, wird die reine röhrenförmige Kultur während der Subkulturen mit einer höheren Geschwindigkeit zentrifugiert.
  4. Das erste Pellet wird in 20 ml Nährmedium resuspendiert und 5 Minuten lang bei 50 x g zentrifugiert, um das dritte Pellet zu sammeln.
  5. Das zweite und dritte Pellet werden in 1 ml Nährmedium resuspendiert. Mischen Sie 10 μl der Zellsuspension mit 10 μl Trypanblau, laden Sie die Mischung in Kammer A eines Zählobjektträgers und erfassen Sie die Lebensfähigkeit der Zellen mit dem automatischen Zellzähler.
  6. Bis zu 107 Zellen (eine heterogene Population) auf eine einzelne 60-mm-Schale, die mit Kollagen vorbeschichtet ist, aussäen und die röhrenförmigen Zellen über Nacht anheften lassen.

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Offenlegungen

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Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Kollagen I Rattenprotein, Schwanz ThermoFisher Scientific A1048301
Kollagenase Typ II Worthington LS004176
Nierenepithelzellen 2 Kit PromoCell Nr. C-26130
TC10 automatisierter Zellzähler Bio-Rad Artikel-Nr.: 506BR2119
Wachstumsmedium für

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Schlagwörter

Renal Tubular Epithelial CellsMouse Kidney IsolationCollagenase DigestionTissue FiltrationLow Speed CentrifugationCollagen Coated CulturePrimary Cell CultureTrypan Blue StainingCell Seeding ProtocolRenal Cortex Preparation

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