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Methodenartikel

Assay zur Nachahmbarkeit der Blut-Hirn-Schranke: Ein In-vitro-Assay zur Beurteilung der Durchlässigkeit von BHS-Nachahmung gegenüber Tracermolekülen

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30. April 2023

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Le Joncour, V. et al. Vorhersage der In-vivo-Nutzlastabgabe unter Verwendung einer Blut-Hirn-Tumor-Schranke in einer Schale. J. Vis. Exp. (2019)

Dieses Video beschreibt einen Permeabilitätsassay zur Bewertung der Permeabilität der in vitro Blut-Hirn-Schranke mit Natriumfluoresceinmolekülen.

Protokoll

  1. Messung der MHK-Durchlässigkeit
    figure-protocol-1

    1. Die passive Diffusion des kleinmolekularen Fluoreszenzfarbstoffs Natriumfluorescein (Na-Fl) über die Zeit vom Blut zur Gehirnseite der Inserts ermöglicht die Berechnung der Permeabilitätswerte nach folgender Formel:
      Dabei ist dFwell der in der Vertiefung zu einem bestimmten Zeitpunkt gemessene Fluoreszenzwert abzüglich des Autofluoreszenzwerts des Zellkulturmediums, dT ist die Zeit in Sekunden, A ist die Oberfläche der Barriere in Quadratzentimetern und dFinsert ist der Fluoreszenzwert, der zum gleichen Zeitpunkt im Einsatz gemessen wird, abzüglich des Autofluoreszenzwerts des Mediums).
    2. Sammeln Sie 100 μl des Mediums sowohl aus der Blut- als auch aus der Gehirnseite des BBTB-Nachahmers und übertragen Sie jedes dieser Moleküle für nachfolgende Fluoreszenzmessungen auf eine separate schwarze 96-Well-Platte mit flachem Boden. Verwenden Sie das Normalmedium als Rohling, um die Autofluoreszenz zu korrigieren.
    3. Bereiten Sie 2,5 mL Na-Fl (50 μM) pro Vertiefung in EBM- vor. Die Na-Fl-Lösung auf 37 °C vorwärmen. Ersetzen Sie das Medium von der Blutseite der Einsätze durch das Medium, das Na-Fl enthält. Starten Sie einen Timer, sobald das Medium ausgetauscht wird.
    4. Sammeln Sie vorsichtig 100 μl Medium sowohl aus dem Blut als auch von der Gehirnseite der Einsätze nach 5, 30, 60 und 120 Minuten. Übertragen Sie jede Probe in separate Vertiefungen der schwarzen 96-Well-Platte.
    5. Tauschen Sie daher die aufgefangenen Medien aus den Einlegern aus, um das Volumengleichgewicht zwischen beiden Seiten zu erhalten. Legen Sie die Einsätze zwischen jeder Probenentnahme wieder in den Inkubator, um die Temperaturschwankungen zu minimieren.
    6. Quantifizieren Sie die Fluoreszenz aus den gesammelten Proben mit einem Platten-Reader, bei dem der Filter auf 480/560 nm eingestellt ist (Anregung bzw. Emission).
      Anmerkung: Die Fluoreszenz von der Gehirnseite ist zum Zeitpunkt von 5 Minuten nahezu nicht nachweisbar. Hohe Werte im Vergleich zum Rohling deuten auf ein Leck/eine Beschädigung der Membran des Einsatzes oder der Barriere hin; Schließen Sie diese daher von weiteren Analysen aus. Die erwarteten Na-Fl-Permeabilitätswerte für den BBTB sollten im Bereich von 10–5 bis 10–6 cm/s liegen (Tabelle 1).

Tabelle 1: Werte der Natrium-Fluorescein (Na-Fl)-Permeabilität (in Zentimetern pro Sekunde), bestimmt in vitro in den angegebenen Co-Kultursystemen und in vivo in NMRI-Nacktmäusen. Daten aus einem repräsentativen Experiment (n = 3 Mäuse).

kg kg kg kg kg Uhr kg kg kg kg kg kg kg kg kg Uhr Uhr Uhr
Murine BBTB-NachahmungbEND3bEND3+HIFko AsbEND3+GBbEND3+HIFko As+GBim lebenden Organismus
Permeabilität (10–6 cm/s)27,636,7426,810,835,57
SD (10–6 cm/s)3,453,017,992,652,19
Menschliche BBTB-NachahmungHuAR2THuAR2T+hIAsHuAR2T+GBHuAR2T+hIAs+GB
Permeabilität (10–6 cm/s)104,9247,489,0848,24
SD (10–6 cm/s)27,114.3210.2113.07

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Offenlegungen

Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Material und Reagenz
10 mL serologische PipetteThermoFisher Scientific170361
ABM Basalmedium, 500 mLLonzaNr. CC-3187Für primäre menschliche Astrozyten. ABM+: enthält alle Zusatzstoffe aus der Ergänzungsmischung. ABM-: alle Zusatzstoffe außer rhEGF und FBS
Basal Medium EagleThermoFisher Scientific21010046BME-1
Dulbecco's Modifizierter Eagle's Medium/Nährstoff F-12 SchinkenGibcoArtikel-Nr.: 21331-020Spezifisch für die Kultur der vom Patienten stammenden Kugeln, die in unserem Labor isoliert wurden, kann für andere Gliomzelllinien variieren
Greiner CELLSTAR 96 Well Platten SSigma-AldrichGreiner 655090Schwarze Polystyrol-Vertiefungen mit flachem Boden (mit mikroklarem Boden)
Fluorescein-NatriumsalzSigma-AldrichNr. F6377
FLUOstar Omega Mikroplatten-ReaderBMG Labtech
Zellen
bEND3ATCCCRL-2299Kultiviert in: DMEM (1 g/l Glukose), ergänzt mit 10 % FBS, 5 ml L-Glutamin und 5 mL Penicillin/Streptomycin
HIFko immortalisierte Maus-AstrozytenIsoliert im Labor von Dr. Gabriele Bergershttps://doi.org/10.1016/ S1535-6108(03)00194-6Kultiviert in: BME-1, ergänzt mit 5 % FBS, 5 mL 1 M HEPES, 5 mL 100 mM Natriumpyruvat, 3 g D-Glucose und 5 mL Penicillin/Streptomycin
HuAR2TIsoliert im Labor von Dr. Dagmar Wirthhttps://doi.org/10.1089/ ten.tea.2009.0184Kultiviert in: EBM-2 mit SupplementMix
Normale primäre Astrozyten des MenschenLonzaNr. CC-2565Kultiviert in: ABM mit SingleQuots

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