Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Wundassay zur Bewertung der Migrationskapazität von murinen Myoblasten in Co-Kultur

1.2K Aufrufe

⸱

8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Toubat, O. et al., Modellierung der parakrinen nichtkanonischen Wnt-Signalgebung in vitro. J. Vis. Exp. (2021).

Dieses Video beschreibt einen berührungslosen Co-Kultur-Wundheilungsassay, um die Migrationskapazität von murinen Myoblasten zu bewerten. Dies hilft, die signalsendenden und signalempfangenden Komponenten der parakrinen nicht-kanonischen Wnt-Signalwechselwirkungen in vitro zu verstehen.

Protokoll

1. Untersuchung von Wunden:

(Abbildung 1 zeigt das schematische Modell des Assays)

  1. Lassen Sie die O9-1-Zelleinsätze und die C2C12-Zellkammer-Wells im Inkubator anhaften und proliferieren, bis beide Zellen eine Konfluenz von ~70-80 % erreicht haben, bevor Sie mit diesem Teil des Protokolls fortfahren. Wenn Zellen >90 % konfluent wachsen, fahren Sie nicht mit dem Scratch-Assay fort, da sich die Zellen lediglich von der Vertiefung lösen.
  2. Erwärmen Sie 1x PBS und C2C12 Medium, indem Sie sie in ein 37 °C warmes Wasserbad legen.
  3. Entfernen Sie das überstehende Medium aus der C2C12-Kammervertiefung un....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

figure-results-1
Abbildung 1: Schematisches Modell des Assays.Schritt 1 umfasst die in vitro Expansion von C2C12-Myoblasten und NCCs mit Hilfe von STO-Feeder-Zellen. Schritt 2 umfasst die Beschichtung von NCCs und C2C12-Zellen im Kokultursystem. Schritt 3 umfasst den Wundassay, der in darunter liegenden C2C12-Zellen durchgeführt wird, um die zelluläre Migrationskapazität zu bewerten. Schritt 4 umfasst die.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
C2C12 murine Myoblasten-Zelllinie ATCCCRL-1772
Kammer-Schiebesystem, 4-fachThermoFisher Scientific154526
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM), hoher Glukosegehalt (4,5 g/L), Lglutamin (2 mM) Corning10-017-CVLagerung bei 4 °C
Graduierte und sterile Pipettenspitzen, 10 μLUSA WissenschaftlichTel.: 1111-3810
O9-1 Neuralleisten-Zelllinie Millipore SigmaArtikel-Nr.: SCC049
Phosphatpuffer-Kochsalzlösung (PBS), 1x, ohne Calcium und Magnesium, pH 7,4Corning21-040-CVLagerung bei 4 °C
Falcon permeable Halterung für 24-Well-Platte mit 0,4 μM transparenter PET-MembranCorning353095
Fötales RinderserumFisher Scientific W3381ELagerung in 50 mL Aliquots bei -20 °C
Zeiss inverses Lichtmikroskop Axio Vert.A1Carl Zeiss AG
Zen lite 2012 Mikroskopie-SoftwareCarl Zeiss AGBildgebungssoftware

Weitere Artikel entdecken

WundheilungsassayMyoblastenmigrationCo-KultursystemNeuralleistenzellenparakrine SignalübertragungCell-Scratch-Assaymikroskopische Bildgebungkontaktfreie Co-KulturWnt-Signalweg